16

Министерство здравоохранения Республики Беларусь

Гомельский государственный медицинский университет

Кафедра клинической лабораторной диагностики

Утверждено на заседании кафедры

Протокол №…. от……... 2004 года

Заведующий кафедрой,

______________

Санитарно-бактериологические исследования в лечебно-профилактических учреждениях. Контроль режима стерилизации и дезинфекции.

Учебно-методическое пособие для студентов

Автор: доцент кафедры, Ильинская Т.Н.

Гомель, 2004 год

Введение

Бактериологические лаборатории при лечебно-профилактических учреждениях выполняют анализы, необходимые для постановки и уточнения диагноза инфекционного заболевания. Результаты этих исследований помогают правильному выбору специфического лечения, возможности изменения курсов лечения, определению сроков выписки больного из инфекционной больницы. Кроме того, бактериологические лаборатории лечебных учреждений контролируют санитарно-гигиенический режим (обсеменённость различных объектов и воздуха) в лечебно-профилактических учреждениях с целью предотвращения внутрибольничных инфекций, или ограничения круга возбудителей ВБИ.

Цель: Получение знаний и практических навыков по вопросам cанитарно-бактериологического исследования в ЛПУ, изучение контроля режима стерилизации и дезинфекции.

Задачи:

• Знать правила проведения санитарно-бактериологического исследования в ЛПУ, периодичность.

• Знать мониторинг антибиотикорезистентных штаммов в хирургических отделениях.

• Знать нормативные документы по исследованию воздуха. Методы проведения исследования. Оценка полученных результатов.

• Знать правила и методы контроля стерильности перевязочных материалов, шовного материала.

• Знать нормативные документы по контролю режима дезинфекции.

• Знать нормативные документы и правила контроля работы аптек.

• Уметь проводить отбор проб и исследование их на обсемененность микроорганизмами.

Практические навыки:

• Отбор проб воздуха.

• Отбор проб воды.

• Забор смывов с хирургического инструментария, эндоскопического и наркозного оборудования

• Отбор проб дезинфицирующих растворов, дистиллированной воды, глазных капель, инъекционных растворов.

• Посев материала на селективные и неселективные среды.

• Отбор подозрительных колоний и выделение чистых культур.

• Идентификация по биохимическим свойствам

• Постановка реакции антибиотикочувсвительности.

• Оценка полученных результатов.

• Выдача заключения по проведенному исследованию.

Основные учебные вопросы:

1. Проведение санитарно-бактериологических исследований в лечебно-профилактическом учреждении. Задачи и цели. Контроль стерильности.

2. Исследования воздуха. Нормативные документы. Аспирационный метод. Седиметационный метод. Оценка результатов исследования. Контроль стерильности. Нормативные документы.

3. Контроль перевязочного материала. Контроль шовного материала. Контроль хирургического инструмента.

4. Контроль эндоскопического и наркозного оборудования. Оценка результатов исследования.

5. Контроль режима дезинфекции. Нормативные документы. Исследования смывов.

6. Контроль контаминации микроорганизмами дезинфицирующих средств.

7. Контроль работы бактерицидных ламп. Оценка результатов исследования.

8. Контроль работы аптек. Нормативные документы. Контроль дистиллированной воды. Контроль глазных капель, инъекционных растворов. Контроль сухих лекарственных веществ.

9. Контроль аптечной посуды, пробок, прокладок. Определение пирогенности стерильных растворов. Оценка результатов исследования.

Основная литература:

1. А.Н. Маянский Микробиология для врачей (очерки патогенетической микробиологии). Нижний Новгород: Изд-во НГМА, 1999.

2. Медицинская микробиология. Часть первая./ Под ред. А.М. Королюка и В.Б. Сбойчакова. –СПб., 1999. – 272с.

3. Медицинская микробиология./ Под ред. В.И. Покровского. –М.:ГЭОТАР МЕДИЦИНА, 1999.

4. Конспект лекций.

Дополнительная литература:

1. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология: Учебник для мед. вузов./ Под ред. А.И. Коротяева, С.А. Бабичева –СПб.: СпецЛит, 2000.

2. Справочник по клинической микробиологии./ Под. ред. В.В. Тец -СПб.: Стройлеспечать, 1994. – 224с.

3. Приказ №535 то 22апреля 1985 года.

Вспомагательные материалы по теме.

Контроль стерилизации.

7.1. Паровые, воздушные и газовые стерилизаторы, используемые ддя стерилизации изделий медицинского назначения, подлежат контролю. Контроль позволяет оперативно выявить несоответствие режимов стерилизации, вызванное техническими неисправностями аппаратов и нарушением технологии проведения стерилизации.

7.2. Контроль стерилизации предусматривает проверку параметров режимов стерилизации и оценку ее эффективности. Контроль режимов стерилизации проводят физическим (с помощью контрольно-измерительных приборов: термометров, манова-куумметров и др.), химическим (с использованием химических индикаторов) и бактериологическим (с использованием споровых форм тест-культур) методами.

Организация и порядок проведения контроля за стерилизацией изделий, медицинского назначения осуществляется согласно методическим указаниям МУ№ 90-9908 «Контроль качества стерилизации изделии медицинского назначения».

Самоконтроль работы стерилизаторов проводит персонал ЛПУ физическим и химическим методами - при каждой загрузке стерилизаторов, бактериологическим –ежемесячно. Специалисты санитарно-эпидемиологических учреждений проводят плановый контрольсогласно действующим нормативным документам.

7.3. Проверку температурного режима осуществляют с помощью максимальных термометров, которые помещают в контрольные точки стерилизаторов.

Для контроля температуры используют также химические индикаторы разразличных типов (наружные, внутренние, мультипараметрические, интеграторы), которые помещают в контрольные точки.

Медицинский персонал, использующий средства физического и химического контроля, регистрирует результаты контроля в журнале по форме №257/у.

Бактериологический контроль работы стерилизационной аппаратуры осуществляетсяс помощью биотестов, оценивающих гибель спор термоустойчивых микроорганизмов. Биотесты представляют собой дозированное количество спор тест-культуры на носителе (или в нём), помешенном в упаковку, которая предназначена для сохранения целостности носителя со спорами и предупреждения вторичного обсеменения после стерилизации. В качестве носителей можно использовать инсулиновые флаконы, ча-шечки из алюминиевой фольги (для паровых н воздушных стерилизаторов), а также диски из фильтровальной бумаги (для воздушных стерилизаторов). Упакованные био-тесты помешают в те же контрольные точки стерилизационной камеры, что и средства физическою и химического контроля.

7.4. Основанием для заключения об эффективности работы стерилизационной аппаратуры является отсутствие роста тест-культур при бактериологических исследованиях всех био-тестов в сочетании с удовлетворительными результатами физического и химического контроля.

Таблица 1. Контроль за работой дезинфекционных камер.

№ п/п	Направление контроля	Виды контроля
		Самоконтроль, осуществляемый персоналом учереждения	Метрологический и технический контроль	Госснадзор, осуществляемый санитарно-эпидемиологическими учереждениями.
1.	Техническая исправность дезинфекционного оборудования, приборов, систем подачи воды и пара	Ежедневно, визуально	За техническим состоянием и КИП в соответствии с договорами и сроками поверки, а также после монтажа и ремонта	Визуально при каждом обследовании
2.	Правильность загрузки и выгрузки вещей из дезинфекционных камер	Соблюдение установленных норм и правил при каждом сеансе		То же.
3.	Соблюдение режима обеззараживания	Визуально каждого сеанса по показаниям средств измерения температуры и бактериологических тестов	В соответствии с действующей нормативной документацией	Визуально при каждом обследовании с использованием средств измерения температуры и бактериологическизх тестов (1 раз в год)

Таблица 2. Контроль за стерилизацией медицинских изделий и соблюдением асептических условий в целях профилактики внутрибольничных инфекций.

№ п/п	Направление контроля	Виды контроля
		Самоконтроль, осуществляемый персоналом учреждения	Метрологический и технический контроль	Госснадзор, осуществляемый санитарно-эпидемиологическим учреждениями
1.	Качество предстерилизационной очистки	Ежедневно с использованием регламентированных проб		По эпидпоказаниям
2.	Комплектность наборов с учетом асептических условий применения	Проверка комплектации каждого набора		Визуально при каждом плановом обследовании и по показаниям
3.	Нормы и правила упаковки стерилизационных изделий и материала, загрузки стерилизацнонных коробок или стерилизаторов	Соблюдение установленных норм и правил		То же.
4.	Контроль за работой аппаратов и оборудования для предстерилизационной очистки и дезинфекции	Визуально каждого сеанса по показаниям КИП	За техническим состоянием и КИП в соответствии с договорами и сроками поверки, а также после монтажа и ремонта	Тоже.
5.	Контроль условий стерилизации обеспечиваемых персоналом обьекта надзора (работа стерилизатора, режим, упаковка, загрузка и т.д.)	Визуально каждого сеанса по показаниям КИП, химических индикаторов, бактериологических тестов (ежемесячно)	За техническим состоянием стерилизаторов и КИП в соответствии с договорами и сроками поверки, а также после монтажа и ремонта	При каждом плановом обследовании и по показаниям бактериологических тестов, средств измерения температуры. При каждом плановом обследовании выборочно проверяется не менее 25% от общего числа стерилизаторов (в течение года все 100%)
6.	Контроль стерильности медицинских изделий	Бактериологический не реже 1 раза в месяц		Бактериологический не реже 1 раза в квартал
7.	Контроль условия хранения за правнльностью использования стерильных изделий и материала	Ежедневно визуально		Визуально при каждом обследовании

Таблица 3 Стерилизация паровым методом (водяной насыщенный пар под избыточным давлением)

Режим стерилизации							Вид изделий, рекомендуемых к стерилизации данным методом	Вид упаковочного материала
Давление пара в стерилизационной камере Мпа (кгс/см2)		Температура стерилизации ˚С		Время стерилизационной выдержки, мин
Номинальное значение	Предельное отклонение	Номинальное значение	Предельное отклонение	При ручном и полуавтоматическом управлении не менее'	При автоматическом управлении
					Номинальное значение	Предельное отклонение
0,20 (2,0)	±0,02 (±0,2)	132	±2	20	20	+2	Изделия из коррозионностойких металлов, стекла, изделия из текстильных материалов, резин, лигатурный шовный материал	Стерилизационная коробка с фильтром или без фильтра, двойная мягкая упаковка из бязи, пергамент, бумага мешочная непропитанная, бумага упаковочная высокопрочная, бумага крепированнаякрепированная. стерилизационные упаковочные материалы фирмы «3М» (США)
6,11 (1.1)	±0.02 (=ь0.2)	120	+2	45	45	+3	Изделия из резин, отдельных видов пластмасс исключительно высокой плотности. ПВХ-пластикаты, лигатурный шовный материал.

Примечания:Время стерилизационной выдержки, соответствующее значению температуры стерилизации с учетом предельных отклонений температуры в загруженной стерилизацнонной камере, указано в паспорте на конкретную модель стерилизатора.

Конкретные виды зарубежных упаковочных материалов однократного применения, рекомендованные для стерилизации паровым методом, а также соответствующие сроки сохранения в них стерильности изделий указаны в методических документах по применению упаковок данных фирм.

Срок сохранения стерильности изделий простерилизованных в герметичной упаковке в пергаменте, бумаге мешочной пропитанной, бумаге мешочной влагопрочной, бумаге упаковочной высокопрочной, бумаге крепированной, стерилизационной коробке с фильтром — 20 суток, а в любой негерметичной упаковке и стерилизацноннои коробке без фильтра - 3 суток. Кратность использования пергамента, бумаги мешочной непропитанной, бумаги мешочной впагопрочной и бумаги крепированной — до 2-х раз, бумаги упаковочной высокопрочной (крафт) - до 3-х раз (с учетом их целостности).

Общие положения.

Бактериологические лаборатории санитарно-эпидемиологических и дезинфекционных станций проводят контроль не реже двух раз в год, бактериологические лаборатории лечебных учреждений контролируют санитарно-гигиенический режим (обсеменённость различных объектов и воздуха) один раз в месяц, а контроль стерильности инструментов, перевязочного материала, операционного белья, рук хирургов и кожи операционного поля (выборочно) – 1 раз в неделю.

Объектами исследования при проведении бактериологического контроля являются:

• Воздушная среда;

• Различные объекты внешней среды;

• Хирургический инструментарий;

• Шприцы, иглы;

• Системы переливания крови многократного использования;

• Зонды, катетеры, бужи, резиновые перчатки и др. изделия из резины и пластикатов;

• Хирургический шовный материал, подготовленный к использованию;

• Руки хирургов и кожа операционного поля.

Методика микробиологических исследований.

Исследование микробной обсеменённости воздушной среды.

Бактериологическое исследование воздушной среды предусматривает:

• Определение содержания микробов в 1м³ воздуха.

• Определение содержания золотистого стафилококка 1м³ воздуха.

Отбор проб для бактериологического исследования проводят в следующих помещениях:

• Операционных блоках;

• Перевязочных;

• Послеоперационных палатах;

• Отделениях и палатах интенсивной терапии и др. помещениях, требующих асептических условий.

Пробы воздуха отбирают аспирационным методом с помощью аппарата Кротова.

Скорость протягивания воздуха состовляет 25 л. в минуту. Количество пропущенного воздуха должно состовлять 100 литров для определения общего содержания бактерий и 250 литров для определения наличия золотистого стафилококка. Исследование воздуха седиментационным методом допускается в исключительных случаях.

Для определения общего содержания микробов в 1м³ воздуха забор проводят на 2% питательный агар. Посевы инкубируют при температуре 37˚С в течение 24 часов, затем оставляют на 24 часа при комнатной температуре, подсчитывают количество выросших колоний, и производят перерасчёт на 1м³ воздуха. В протоколе количество плесневых грибов указывают отдельно.

Примечание: при переносе аппарата Кротова из одного помещения в другое его поверхность обрабатывают дезинфицирующим раствором. Столик, внутренние стыки и крышку прибора с внутренней стороны протирают спиртом (70˚).

Для определения наличия золотистого стафилококка забор проб проводят на ЖСА. Чашки помещают в термостат при 37˚С на 24 часа и выдерживают ещё 24 часа при комнатной температуре. Колонии, подозрительные на стафилококк, подлежат обязательной микроскопии и дальнейшей идентификации.

С ЖСА снимают в первую очередь колонии стафилококка, которые образуют радужный венчик вокруг колонии (положительная лецитоветиллазная реакция), дальнейшему изучению подвергают также пигментированные колонии и с отрицательной лецитоветиллазной реакцией. Подозрительные колонии пересевают на чашки с кровяным или молочным агаром. Дальнейшее изучение их проводят по схеме.