
- •Робочий план
- •Самостійна робота студентів:
- •Контрольні запитання:
- •Література:
- •Лабораторна робота 2
- •«Імунограма»
- •Самостійна робота студентів:
- •Контрольні запитання:
- •Завдання на виконання:
- •Лейкоцитарна формула крові щурів
- •Контрольні запитання:
- •Література:
- •Лабораторна робота 4
- •«Кількісне визначення антитіл методом локального гемолізу в гелі»
- •Самостійна робота студентів:
- •Контрольні запитання:
- •Література:
- •Лабораторна робота 5
- •«Дослідження фагоцитарної ланки імунітету (початок). Вивчення кисень залежної бактерицидності фагоцитів в нст-тесті»
- •Самостійна робота студентів:
- •Контрольні запитання:
- •Література:
- •Лабораторна робота 6
- •«Дослідження фагоцитарної ланки імунітету (закінчення). Вивчення поглинальної здатності фагоцитів»
- •Самостійна робота студентів:
- •Контрольні запитання:
- •Література:
- •Лабораторна робота 7
- •«Імунодіагностика. Підбір імунокоригуючих препаратів»
- •Самостійна робота студентів:
- •Контрольні запитання:
- •Література:
- •Лабораторна робота 8
- •«Підсумкове заняття» План:
- •Самостійна робота студентів:
- •Література:
- •Лабораторна робота 9
- •«Захист курсової роботи»
Лабораторна робота 5
(4 години)
«Дослідження фагоцитарної ланки імунітету (початок). Вивчення кисень залежної бактерицидності фагоцитів в нст-тесті»
Мета роботи: вивчити явище фагоцитозу, навчитися визначати поглинальну та перетравлювальну здатності фагоцитів.
План:
1. Відкриття фагоцитозу І.І. Мечніковим. Основні поняття.
2. Клітинні основи фагоцитозу: полі- та мононуклеарні фагоцити.
3. Класична схема і механізми фагоцитарних реакцій.
4. Хемотаксис.
5. Адгезія фагоцитів до об’єкта фагоцитозу.
6. Активація фагоцитів при адгезії і розпластовуванні.
7. Занурення частинки.
8. Формування фаголізосоми.
9. Лізис і розщеплення фагоцитованих часточок.
Матеріали та обладнання: кров людини чи лабораторних тварин (гепаринізована), добова агарова культура E. coli (5×108 кл/мл), добова агарова культура E. coli знешкоджена нагріванням (109 кл/мл), 2% розчин натрію лимоннокислого, гепарин, 0,1% розчин нітросинього тетразолію, 5% розчин формаліну, 0,9%-ий розчин NaCl, середовище 199, фарба Мая-Грюнвальда, скляні пробірки об’ємом 1 – 2 см3, знежирені предметні скельця, термостат, центрифуга лабораторна (до 3000 об/хв), центрифужні пробірки, зрівноважувачі для пробірок, пастерки, гумові груші №1, самплери на 0,1 мл та наконечники до них.
Самостійна робота студентів:
Завдання №1. Вивчення поглинальної здатності фагоцитів.
1. До пробірки з антикоагулянтом (0,2 мл 2% розчину натрію лимоннокислого або 0,2 мл гепарину в концентрації 50 од/мл) вносять 0,1 мл крові, ретельно перемішують.
2. Додають 0,05 мл зависини тест-мікробної культури. Як тест-мікроб використовують добову агарову культуру Е. соlі (або іншу придатну мікробну культуру) у фізіологічному розчині в концентрації 500 млн мікробних тіл в 1 мл (5×108 кл/мл).
3. Витримують у термостаті за 37°С упродовж 30 хв.
4. Центрифугують при 2000 – 3000 об/хв 15 хв до розшарування рідини на верхній (плазма), нижній (еритроцити) та середній (лейкоцити) шари.
5. Пастерівською піпеткою відсмоктують середній шар і роблять мазок.
6. Мазок підсушують на повітрі 2 – 3 год.
7. Фіксують фарбою-фіксатором Мая-Грюнвальда упродовж 2 – 3 хв. Фарбу змивають дистильованою водою, мазки підсушують на повітрі та залишають до наступного заняття.
Завдання №2. Вивчення перетравлювальної здатності фагоцитів.
1. До пробірок №1 та №2 вносять 0,2 мл антикоагулянту(0,2 мл 2% розчину натрію лимоннокислого або 0,2 мл гепарину в концентрації 50 од/мл).
2. До пробірки №1 з антикоагулянтом вносять 0,1 мл крові, 0,2 мл середовища 199 і 0,1 мл 0,1% розчину нітросинього тетразолію (спонтанний НСТ-тест).
3. До пробірки №2 з антикоагулянтом вносять 0,1 мл крові, 0,2 мл середовища 199 і 0,1 мл 0,1 зависини E. coli знешкодженої нагріванням (1 млрд кл/мл) (стимульований НСТ-тест).
4. Проби ретельно перемішують.
5. Проби інкубують у термостаті за 37ºС упродовж 30 хв.
6. Після закінчення інкубування до пробірки №1 додають 3,0 мл дистильованої води для гемолізу еритроцитів. Добре перемішують.
7. Після закінчення інкубування до пробірки №2 додають 0,2 мл 5% розчину формаліну. Ретельно перемішують. Пробу залишають на 10 – 15 хв за кімнатної температури. Через 15 хв додають 3,0 мл дистильованої води. Пробу добре струшують.
8. Проби центрифугують при 1500 об/хв упродовж 5 – 7 хв.
9. Надосадову рідину зливають, до осаду додають 0,1 мл фіз. розчину і вміст пробірки виливають на знежирене предметне скло.
10. Мазок підсушують на повітрі і залишають до наступного заняття.
11. Оформити протокол заняття, зробити висновки.