
- •Содержание
- •§ 2. Краткий исторический очерк возникновения и развития отечественной токсикологической химии
- •Глава I. Общие вопросы химико-токсикологического анализа
- •§ 1. Объекты химико-токсикологического анализа. Вещественные доказательсва
- •§ 2. Особенности химико-токсикологического анализа
- •§ 3. Осмотр объектов исследования и определение некоторых их свойств
- •§ 4. Предварительные пробы в химико-токсикологическом анализе
- •§ 5. План химико-токсикологического анализа
- •§ 6. Организация органов судебно-медицинской и судебно-химической экспертизы в ссср
- •§ 7. Эксперт-химик
- •§ 8. Правила судебно-химической экспертизы вещественных доказательств
- •§ 9. Акт судебно-химической экспертизы вещественных доказательств
- •§ 10. Некоторые вопросы терминологии в токсикологической химии
- •§ 11. Классификация ядовитых и сильнодействующих веществ в токсикологической химии
- •Глава II. Отравления и некоторые вопросы токсикокинетики ядов
- •§ 1. Отравления и их классификация
- •§ 2. Пути поступления ядов в организм
- •§ 3. Всасывание ядов в организме
- •§ 4. Распределение ядов в организме
- •§ 5. Связывание ядов в организме
- •§ 6. Выделение ядов из организма
- •§ 7. Факторы, влияющие на токсичность химических соединений
- •§ 8. Методы детоксикации
- •§ 9. Метаболизм чужеродных соединений
- •§ 10. Окисление чужеродных соединений
- •§ 11. Восстановление чужеродных соединений
- •§ 12. Гидролиз чужеродных соединений
- •§ 13. Дезалкилирование, дезаминирование и десульфирование чужеродных соединений
- •§ 14. Другие метаболические превращения
- •§ 15. Реакции конъюгации
- •§ 16. Посмертные изменения лекарственных веществ и ядов в трупах
- •§ 17. Разложение биологического материала после наступления смерти
- •§ 18. Изменение ядов при разложении трупов
- •Глава III. Методы анализа, применяемые в токсикологической химии
- •§ 1. Метод экстракции
- •§ 2. Микрокристаллоскопический анализ
- •§ 3. Метод микродиффузии
- •Глава IV. Ядовитые и сильнодействующие вещества, изолируемые из биологического материала перегонкой с водяным паром
- •§ 1. Аппараты для перегонки с водяным паром
- •§2. Влияние рН среды на перегонку химических соединений с водяным паром
- •§ 3. Перегонка ядовитых веществ с водяным паром из подкисленного биологического материала
- •§ 4. Перегонка ядовитых веществ с водяным паром из подкисленного, а затем из подщелоченного биологического материала
- •§ 5. Фракционная перегонка веществ, содержащихся в дистиллятах
- •§ 6. Синильная кислота
- •§ 7. Формальдегид
- •§ 8. Метиловый спирт
- •§ 9. Этиловый спирт
- •§ 10. Изоамиловый спирт
- •§ 11. Ацетон
- •§ 12. Фенол
- •§ 13. Крезолы
- •§ 14. Хлороформ
- •§ 15. Хлоралгидрат
- •§ 16. Четыреххлористый углерод
- •§ 17. Дихлорэтан
- •§ 18. Реакции, позволяющие отличить хлорпроизводные друг от друга
- •§ 19. Тетраэтилсвинец
- •§ 20. Уксусная кислота
- •§ 21. Этиленгликоль
- •Глава V. Ядовитые и сильнодействующие вещества, изолируемые из биологического материала подкисленным этиловым спиртом или подкисленной водой
- •§ 1. Развитие методов выделения алкалоидов и других азотистых оснований из биологического материала
- •§ 2. Влияние рН среды на изолирование алкалоидов и других азотистых оснований из биологического материала
- •§ 3. Влияние состава извлекающих жидкостей на изолирование алкалоидов и других азотистых основании из биологического материала
- •§ 4. Влияние подкисленной воды и подкисленного спирта на извлечение примесей, переходящих в вытяжки из биологического материала
- •§ 5. Очистка вытяжек из биологического материала от примесей
- •§ 6. Экстракция алкалоидов и других токсических веществ из вытяжек
- •§ 7. Обнаружение ядовитых веществ, изолируемых подкисленной водой или подкисленным этиловым спиртом
- •§ 8. Количественное определение токсических веществ, изолированных подкисленной водой или подкисленным спиртом
- •§ 9. Метод выделения токсических веществ, основанный на изолировании их этиловым спиртом подкисленным щавелевой кислотой
- •§ 10. Метод выделения токсических веществ, основанный на изолировании их водой, подкисленной щавелевой кислотой
- •§ 11. Метод выделения токсических веществ, основанный на изолировании их водой, подкисленной серной кислотой
- •§ 12. Барбитураты и методы их исследования
- •§ 13. Барбамил
- •§ 14. Барбитал
- •§ 15. Фенобарбитал
- •§ 16. Бутобарбитал
- •§ 17. Этаминал-натрий
- •8.Обнаружение этаминала-натрия по уф- и ик-спектрам.
- •§ 18. Бензонал
- •§ 19. Гексенал
- •§ 20. Производные ксантина
- •§ 21. Кофеин
- •§ 22. Теобромин
- •§ 23. Теофиллин
- •§ 24. Наркотин
- •§ 25. Меконовая кислота
- •§ 26. Меконин
- •§ 27. Ноксирон
- •§ 28. Салициловая кислота
- •§ 29. Антипирин
- •§ 30. Амидопирин
- •§ 31. Фенацетин
- •§ 32. Хинин
- •§ 33. Опий и омнопон
- •§ 34. Морфин
- •§ 35. Кодеин
- •§ 36. Папаверин
- •§ 37. Галантамин
- •§ 38. Анабазин
- •§ 39. Никотин
- •§ 40. Ареколин
- •§ 41. Кониин
- •§ 42. Атропин
- •§ 43. Скополамин
- •§ 44. Кокаин
- •§ 45. Стрихнин
- •§ 46. Бруцин
- •§ 47. Резерпин
- •§ 48. Пахикарпин
- •§ 49. Секуренин
- •§ 50. Эфедрин
- •§ 51. Аконитин
- •§ 52. Новокаин
- •§ 53. Дикаин
- •§ 54. Аминазин
- •§ 55. Дипразин
- •§ 56. Тизерцин
- •§ 57. Хлордиазепоксид
- •§ 58. Диазепам
- •§ 59. Нитразепам
- •§ 60. Оксазепам
- •§ 61. Апоморфин
- •§ 62. Дионин
- •§ 63. Промедол
- •Глава VI. Вещества, изолируемые из объектов минерализацией биологического материала
- •§ 1. Связывание «металлических ядов» биологическим материалом
- •§ 2. Методы минерализации органических веществ
- •§ 3. Сухое озоление и сплавление органических веществ
- •§ 4. Окислители, применяемые для минерализации органических веществ
- •§ 5. Отбор и подготовка проб биологического материала для минерализации
- •§ 6. Разрушение биологического материала азотной и серной кислотами
- •§ 7. Разрушение биологического материала хлорной, азотной и серной кислотами
- •§ 8. Разрушение биологического материала пергидролем и серной кислотой
- •§ 9. Дробный метод и систематический ход анализа «металлических ядов»
- •§ 10. Маскировка ионов в дробном анализе
- •§ 11. Реактивы, применяемые в дробном анализе «металлических ядов» для маскировки ионов
- •§ 12. Реакции, применяемые в химико-токсикологическом анализе для обнаружения ионов металлов
- •§ 13. Соединения бария
- •§ 14. Соединения свинца
- •§ 15. Соединения висмута
- •§ 16. Соединения кадмия
- •§ 17. Соединения марганца
- •§ 18. Соединения меди
- •§ 19. Соединения мышьяка
- •§ 20. Соединения серебра
- •§ 21. Соединения сурьмы
- •§ 22. Соединения таллия
- •§ 23. Соединения хрома
- •§ 24, Соединения цинка
- •§ 25. Соединения ртути
- •§ 26. Количественное определение «металлических ядов» в минерализатах
- •§ 27. Количественное определение ртути
- •§ 28. Экстракционно-фотоколориметрическое определение меди
- •Глава VII. Вещества, изолируемые из биологического материала настаиванием исследуемых объектов с водой
- •Минеральные кислоты и щелочи
- •§ 1. Серная кислота
- •§ 2. Азотная кислота
- •§ 3. Соляная кислота
- •§ 4. Гидроксид калия
- •§ 5. Гидроксид натрия
- •§ 6. Аммиак
- •§ 7. Нитриты
- •Глава VIII. Ядохимикаты и методы их химико-токсикологического анализа
- •§ 1. Классификация ядохимикатов
- •§ 2. Гексахлорциклогексан (гхцг)
- •§ 3. Гептахлор
- •§ 4. Фосфорсодержащие органические соединения и методы их анализа
- •§ 5. Хлорофос
- •§ 6. Карбофос
- •§ 7. Метафос
- •§ 8. Карбарил
- •§ 9. Гранозан
- •Глава IX. Вещества, определяемые непосредственно в биологическом материале
- •§ 1. Оксид углерода (II)
- •§ 2. Спектроскопический метод обнаружения оксида углерода (II) в крови
- •§ 3. Химические методы обнаружения оксида углерода (II) в крови
- •§ 4. Количественное определение оксида углерода (II) в крови
- •Приложение 1. Приготовление реактивов
- •Приложение 2. Приготовление хроматографических пластинок
- •Список рекомендуемой литературы
§ 26. Количественное определение «металлических ядов» в минерализатах
Все
объявления
ЯндексДирект
Дать объявление
Растворители в различной фасовке
Растворители 646,ацетон, у-спирит, скипидар,лак НЦ и БТ, краски МА и ПФ,в/э
www.chemservice.ru
Для
количественного определения «металлических
ядов» в химико-токсикологическом анализе
применяются гравиметрические,
титриметрические и фотоколориметрические
методы. Большинство этих методик изложено
в методических указаниях, изданных
Главной судебно-медицинской экспертизой
Министерства здравоохранения СССР.
Описание этих методик приведено в работе
А. Н. Крыловой «Исследование биологического
материала на «металлические яды» дробным
методом» (М., Медицина, 1975).
Для количественного определения некоторых «металлических ядов» разработано по несколько методик, которые перечислены ниже.
Гравиметрический метод предложен для количественного определения бария(в виде осадка BaSO4).
Титриметрические методы, предложенные для количественного определения «металлических ядов», отличаются друг от друга применяемыми для этой цели титрованными растворами. Для количественного определения соединенийвисмута,свинца,меди,бария,кадмияицинкарекомендован комплексонометрический метод. Определениесвинцапроизводят с помощью иодометрического метода. Для количественного определениясеребрапредложен роданидометрический метод. Аргентометрический метод предложен для количественного определениямышьяка.
Большинство ионовметаллов, находящихся в минерализате (или в деструктате), определяют фотоколориметрическим методом. С этой целью в качестве реактивов применяютдитизон(для определенияртути,свинца,серебраи таллия), малахитовый илибриллиантовый зеленый(для определениясурьмыи таллия),дифенилкарбазид(для определения хрома), диэтилдитиокарбаматы (для определениямедии мышьяка),тиомочевину(для определения висмута). Фотоколориметрический метод определенияионовмарганцаоснован на переведении этихионоввперманганат.
Визуальные колориметрические методы (методы стандартных серий) рекомендованы для количественного определения ртутиимышьяка.Ртутьопределяют по интенсивности окраскисуспензииCu2[HgI4], амышьяк— по окраске индикаторных бумажек, пропитанных бромидом илихлоридомртути.
§ 27. Количественное определение ртути
Все
объявления
ЯндексДирект
Дать объявление
Низкотемпературные камеры
низкотемпературные морозильники с температурным режимом -24С, -55С, -85С
Адрес и телефон· www.winecoolers.ru
В
химико-токсикологическом анализе для
количественного определенияртутирекомендованы визуальный колориметрический
метод, основанный на реакции сиодидоммеди(I), и экстракционно-фотоколориметрический
метод, основанный на реакции сдитизоном.
Визуальный метод определения ртути, основанный на сравнении интенсивности окраскисуспензииCu2[HgI4] в исследуемой пробе с интенсивностью окраскисуспензиив стандартной серии, имеет ряд недостатков. Наличие частицсуспензиив окрашенныхрастворахмешает сравнению интенсивности их окрасок. Окраска этихрастворовзависит от величины частицсуспензии, скорости их оседания и т. д. Поэтому более точным и надежным является экстракционно-фотоколориметрический метод количественного определенияртути.
В качестве реактива для экстракционно-фотоколоримегрического определения ртути(II) применяютдитизон. В кислой среде при взаимодействииионовртути(II) срастворомдитизоиа вхлороформеили вчетыреххлористом углеродеобразуется однозамещенный дитизонат, имеющий оранжево-желтую окраску (λмакс = 485 нм). Оптическую плотность однозамещенного дигиюнатартути(II), находящегося в фазе органическогорастворителя, измеряют при помощи фотоэлектроколориметра или спектрофотометра.
Дитизонсионамиртути(II) может образовывать и двузамещенный дитизонатртути, имеющий пурпурно-красную окраску (λмакс= 515 нм). Этот дитизонат образуется в щелочной среде, а также при недостаткедитизона.
При фотоколориметрическом определении ртути(II) иионовнекоторых другихметалловиспользуются только однозамещенные дитизонаты с более интенсивной окраской и лучшейрастворимостьюв органическихрастворителях, чем двузамещенные.
В качестве реактива для экстракционно-фотоколориметрического определения ртутиприменяютраствордитизонавчетыреххлористом углеродеили вхлороформе.Растворимостьоднозамещенных дитизонатовметаллов, как и самогодитизона, вхлороформепримерно на порядок выше, чемрастворимостьвчетыреххлористом углероде.
При экстракционно-фотоколориметрическом определении ртути(II) водныйраствор, содержащий этиионы, необходимо несколько раз взбалтывать с новыми порциямирастворадитизонавчетыреххлористом углеродеили вхлороформе, а затем определять оптическую плотность объединенных вытяжек. Объединенные вытяжки дитизонатартути(II) вхлороформеили вчетыреххлористом углеродемогут содержать и некоторое количестводитизона, непрореагировавшего сортутью. Для освобождениярастворадитизонатартути(II) от несвязавшегосядитизонаобъединенные вытяжки взбалтывают со слабымраствором аммиакаили с 0,2 н.растворомгидроксида натрия, а затем сводой. При этом несвязавшийсядитизонпереходит в водную фазу.
Перед определением ртути(II) в соответствующих объектах строят калибровочный график, пользуясь перечисленными ниже реактивами ирастворами.
РЕАКТИВЫ И РАСТВОРЫ
1. Дитизон. 0,001 %-йрастворвхлороформеили в четыреххлорнстомуглероде(см. Приложение 1, реактив 12).
2. Серная кислота(2 н. раствор).
3. Аммиак. Разбавленныйраствор(к 190 млдистиллированной водыприбавляют 10 мл 25 %-го аммиака).
4. Хлороформсвежеперегнанный.
5. Стандартный растворртути. В мерную колбу вместимостью 1000 мл вносят 0,1080 гоксида ртути(II) (мол. масса 216,61), прибавляют 10 млводын 1 мл концентрированнойазотной кислоты. Послерастворенияоксида ртути(II) в колбу прибавляютдистиллированную водудо метки. В 1 мл полученного стандартногорастворасодержится 100 мкгртути.
Построение калибровочного графика.В ряд делительных воронок вносят по 1 мл 2 н.растворасерной кислотыи по 4 млводы. Затем в каждую делительную воронку прибавляют разные объемы стандартногораствора(0,05; 0,1; 0,3; 0,5; 0,7; 0,9; 1,0; 1,1 мл) и по 3 млрастворадитизонавхлороформе. Содержимое делительных воронок взбалтывают в течение 2 мин и оставляют делительные воронки на такое же время для разделения фаз. После этого в колбы вместимостью 50 мл отделяют хлороформный слой из каждой делительной воронки. Взбалтывание водной фазы с новыми порциями хлороформногорастворадитизона(по 3 мл) производят до тех пор, пока не перестанет изменяться зеленая окраска прибавленногорастворадитизона. Объединенные хлороформные вытяжки, содержащие дитизонатртути, переносят в делительные воронки, в которые прибавляют по 10 мл разбавленногораствора аммиака, и взбалтывают в течение 3 мин. Затем из каждой делительной воронки отделяют водную фазу, а хлороформный слой взбалтывают с 10 млводыв течение
3 мин. Промытые аммиакомиводойхлороформные вытяжки отделяют от водной фазы и переносят в мерные колбы вместимостью 50 мл. Объемы объединенных хлороформных вытяжек в этих колбах доводятхлороформомдо метки. Оптическую плотность полученных хлороформных вытяжек измеряют фотоэлектроколориметром ФЭК-56М в кювете с толщиной слояжидкости10 мм, пользуясь зеленым светофильтром, эффективная длина волны которого равна 490±10 нм. В качестверастворасравнения применяютхлороформ.
На основании результатов измерений оптической плотности дитизоната ртутистроят калибровочный график. Светопоглощение окрашенныхрастворовподчиняется закону Бера в пределах от 10 до 90 мкгртутив 50 мл конечного объема. Предел определения: 10 мкгртутив указанном конечном объеме.
Определение ртути в деструктате.Определениюртутив деструктате фотоколориметрическим методом, основанным на реакции сдитизоном, могут мешать даже незначительные количестваионовдругихметаллов, которые образовывают окрашенные соединения сдитизоном. Для устранения мешающего влияния этихионовприменяют маскирующие средства. В качестве маскирующих средств используютрастворыгидрохлорида гидроксиламинаилиаскорбиновой кислоты.
Для определения ртутив делительную воронку вносят 10 мл деструктата, прибавляют 1 мл 2 н.растворасерной кислоты, 4 млводы, 5 мл 10 %-горастворааскорбиновой кислотыи 3 мл 0,001 %-го хлороформногорастворадитизона. Содержимое делительной воронки взбалтывают в течение 2 мин и оставляют делительную воронку на такое же время для разделения фаз, а затем в колбу вместимостью 50 мл отделяют фазу органическогорастворителя. Водную фазу, оставшуюся в делительной воронке, взбалтывают с новыми порциями 0,001 %-го хлороформногорастворадитизона(по 3 мл) до тех пор, пока не перестанет изменяться зеленая окраска прибавленного хлороформногорастворадитизона. Объединенные хлороформные вытяжки переносят в делительную воронку, в которую прибавляют 10 мл разбавленногораствора аммиакаи взбалтывают в течение 3 мин, а далее поступают, как указано при описании способа построения калибровочного графика.
Расчет содержания ртутив биологическом материале производят по калибровочному графику, пользуясь формулой
где X — содержание ртутив 100 г биологического материала, мкг; А — количествортути, найденное по калибровочному графику, мкг; Б — объем деструктата, взятый для определенияртути, мл; В — общий объем деструктата, мл; Г — масса биологического материала, взятого на анализ, г.
В тех случаях, когда оптическая плотность окрашенного растворадитизонатартутиво взятой пробе деструктата выходит за пределы калибровочного графика, тогда необходимо повторить опыт, взяв для количественного определения меньший объем деструктата.
Разбавление хлороформомокрашенногораствора, оптическая плотность которого выходит за пределы калибровочного графика, может быть причиной получения неправильного результата количественного определенияртутив деструктате.