
- •Алгоритмы манипуляций по дисципдине «методы клинических лабораторных исследований»
- •1. Определение физических свойств мочи.
- •2. Определение цвета и прозрачности мочи (смотри алгоритм №1).
- •9. Приготовление осадка мочи для исследования по Нечипоренко:
- •10. Заполнение камеры Фукса-Розенталя для количественного метода исследования осадка мочи по Нечипоренко:
- •11. Приготовление осадка из мочи №3 для ориентировочного исследования.
- •12. Алгоритм приготовления препарата на дерматомикозы /ногти, волосы, кожа/:
- •13. Микроскопия препарата на дерматомикозы:
- •14. Определение группы крови с помощью цоликлонов:
- •15. Определение резус-фактора с помощью цоликлона:
- •16. Алгоритм дезинфекции планшета для определения групп крови.
- •17. Определите длительность кровотечения капиллярной крови по Дуке:
- •18. Подсчитайте количество эритроцитов в камере Горяева:
- •19. Подсчитайте количество лейкоцитов в камере Горяева:
- •20. Алгоритм морфологической характеристики эритроцитов.
- •21. Вычислите цветовой показатель:
- •27. Идентификация яиц гельминтов в готовом препарате кала.
- •28. Определение физического свойства ликвора.
- •29. Фиксация мазка крови.
- •30. Снятие показания соэ.
- •Алгоритмы выполнения манипуляций по дисциплине: «Основы биохимии с методами клинико-биохимических исследований»
- •Измерение на stat fax в режиме стандарта
- •Алгоритм определения концентрации различных веществ колориметрическими методами.
- •Правила работы с дозаторами. Основные режимы дозирования.
- •Определение активированного частичного (парциального) тромбопластинового времени (ачтл или аптв).
- •I Коагулометрический вариант
- •II Мануальный вариант
- •Алгоритм построения калибровочного графика и определения протромбина по Квику у больного по предложенным данным.
- •Ход исследования
- •Построение калибровочного графика для определения концентрации общего белка в пробе.
- •Построение калибровочного графика для определения общего белка сыворотки крови
- •Алгоритм проведения обеззараживания и мытья кювет
- •Алгоритм проведения обеззараживания и мытья пробирок после работы с сывороткой, плазмой или мочой
- •Алгоритм проведения обеззараживание рабочей поверхности стола после загрязнения его биоматериалом.
Алгоритм определения концентрации различных веществ колориметрическими методами.
Порядок определения концентрации различных аналитов колориметрическими группами методов одинаковый, несмотря на разные принципы методов, поэтому достаточно составить общий алгоритм.
Из пробирок с цветными комплексами, стоящими на лотке в штативе, надо выбрать пробирки с опытной, стандартной, холостой пробами (бланком) того аналита, который указан в задании.
Провести измерение (и запись) абсорбции (экстинкции) или концентрации в зависимости от режима измерения и на измерительном приборе, указанном в задании.
Провести обеззараживание кювет, пробирок, резиновых перчаток, отработанного материала.
Отключить прибор.
Рассчитать концентрацию аналита, если измерение проводилось в режиме абсорбции (экстинкции) и затем вписать результат в бланк исследования или сразу вписать результат в бланк, если измерение проводилось в режиме стандарт.
Оценить полученные результаты, применяя терминологию
Правила работы с дозаторами. Основные режимы дозирования.
Основные режимы дозирования: прямое, обратное, многократное дозирование. Прямое дозирование – весь забранный объём жидкости сбрасывается за один полный ход поршня, оно подходит для дозирования водных растворов. Обратное дозирование – в наконечник набирается объём жидкости больший по сравнению с необходимым. По окончании дозирования в наконечнике остаётся остаточный объём жидкости, который нивелирует погрешность, связанную с образованием пены. Этот способ дозирования используется для биологических, вязких и пенящихся жидкостей, а также дозирования очень малых объемов. Многократное дозирование предполагает повторяющиеся операции дозирования идентичных объемов жидкости. В этом случае используют электронные дозаторы, что позволяет повторять дозирование после однократного заполнения наконечника.
Определение активированного частичного (парциального) тромбопластинового времени (ачтл или аптв).
I Коагулометрический вариант
В кювету коагулометра внести 0,1 мл. исследуемой плазмы и прогреть её при 37о С в течение 1 минуты
В кювету добавить 0,1 мл АПТВ-реагента, имеющего комнатную температуру
Через 3 минуты добавить 0,1мл раствора хлорида кальция (прогретого до 37о С), и зарегистрировать время свёртывания
II Мануальный вариант
В пробирку внести 0,1 мл исследуемой плазмы, добавить в ту же пробирку 0,1 АПТВ-реагента.
Пробирку встряхнуть, поместить её в термостат с прозрачными стенками
Через 3 минуты к смеси добавить 0,1мл раствора хлорида кальция (прогретого до 37о С) и включить секундомер.
Каждые 10 – 15 секунд пробирку необходимо доставать из термостата, наклонять в почти горизонтальное положение и наблюдать образование сгустка. Как только сгусток образуется, надо без промедления, выключить секундомер (этот пункт следует проделывать достаточно быстро; палец одной руки должен находиться на кнопке секундомера, а другой рукой надо доставать пробирку).
Алгоритм построения калибровочного графика и определения протромбина по Квику у больного по предложенным данным.
На ось абсцисс (ось времени свёртывания в секундах) готовой сетки для определения протромбина по Квику откладывают время свёртывания в секундах плазмы, с различной степенью разведения (неразведённой, разведённой в 2,4,8 раз) и восстанавливают перпендикуляры.
На оси ординат (ось протромбина по Квику в процентах) отмечают процент разведения плазмы находят точки пересечения времени свёртывания плазмы с различной степенью разведения с процентом протромбином по Квику
Точки пересечения соединяют с целью получения калибровочной кривой (прямой)
На оси абсцисс отмечают время свёртывания плазмы больного и восстанавливают перпендикуляр на калибровочную прямую (кривую)
По оси ординат находят процент протромбина по Квику
Результат исследования вносят в бланк анализа
Проводят оценку результата, применяя терминологию
Определение протромбинового времени по Квику.