- •Алгоритмы манипуляций по дисципдине «методы клинических лабораторных исследований»
- •1. Определение физических свойств мочи.
- •2. Определение цвета и прозрачности мочи (смотри алгоритм №1).
- •9. Приготовление осадка мочи для исследования по Нечипоренко:
- •10. Заполнение камеры Фукса-Розенталя для количественного метода исследования осадка мочи по Нечипоренко:
- •11. Приготовление осадка из мочи №3 для ориентировочного исследования.
- •12. Алгоритм приготовления препарата на дерматомикозы /ногти, волосы, кожа/:
- •13. Микроскопия препарата на дерматомикозы:
- •14. Определение группы крови с помощью цоликлонов:
- •15. Определение резус-фактора с помощью цоликлона:
- •16. Алгоритм дезинфекции планшета для определения групп крови.
- •17. Определите длительность кровотечения капиллярной крови по Дуке:
- •18. Подсчитайте количество эритроцитов в камере Горяева:
- •19. Подсчитайте количество лейкоцитов в камере Горяева:
- •20. Алгоритм морфологической характеристики эритроцитов.
- •21. Вычислите цветовой показатель:
- •27. Идентификация яиц гельминтов в готовом препарате кала.
- •28. Определение физического свойства ликвора.
- •29. Фиксация мазка крови.
- •30. Снятие показания соэ.
- •Алгоритмы выполнения манипуляций по дисциплине: «Основы биохимии с методами клинико-биохимических исследований»
- •Измерение на stat fax в режиме стандарта
- •Алгоритм определения концентрации различных веществ колориметрическими методами.
- •Правила работы с дозаторами. Основные режимы дозирования.
- •Определение активированного частичного (парциального) тромбопластинового времени (ачтл или аптв).
- •I Коагулометрический вариант
- •II Мануальный вариант
- •Алгоритм построения калибровочного графика и определения протромбина по Квику у больного по предложенным данным.
- •Ход исследования
- •Построение калибровочного графика для определения концентрации общего белка в пробе.
- •Построение калибровочного графика для определения общего белка сыворотки крови
- •Алгоритм проведения обеззараживания и мытья кювет
- •Алгоритм проведения обеззараживания и мытья пробирок после работы с сывороткой, плазмой или мочой
- •Алгоритм проведения обеззараживание рабочей поверхности стола после загрязнения его биоматериалом.
15. Определение резус-фактора с помощью цоликлона:
Поместите каплю цоликлона «анти-Д» на тарелку или пластину.
Капля цоликлона должна быть в 10 раз больше капли исследуемой крови /цоликлон – 0,1мл, кровь – 0,01мл/.
Тщательно смешайте цоликлон с исследуемой кровью.
Наблюдайте реакцию от 2-5мин. Положительный результат выражается в агглютинации эритроцитов. При отрицательном результате капли остаются равномерно окрашенными в красный цвет и агглютинация в них не наблюдается.
16. Алгоритм дезинфекции планшета для определения групп крови.
Лунки планшета, в которых определяли группы крови, залейте 3% раствором хлорамина или другим дезинфицирующим средством, разрешенным для работы в вашей лаборатории, на 1 час.
Через 1 час смойте дезинфицирующее средство проточной водой.
Протрите планшету сухой ветошью.
17. Определите длительность кровотечения капиллярной крови по Дуке:
Подсчитайте количество капель крови на фильтровальной бумаге.
Полученный результат умножьте на 30сек.
Полученный результата сравните с нормой.
/Длительность кровотечения – показатель, характеризующий первичный тромбоцитарно-сосудистый гемостаз. Норма – от 2 до 4мин./.
18. Подсчитайте количество эритроцитов в камере Горяева:
К боковым полям камеры Горяева плотно притрите покровное стекло.
Стекло притирается легким нажимом на боковые края большими пальцами правой и левой руки до появления радужных колец Ньютона.
Заполните камеру Горяева с помощью стеклянной палочки или Пастеровской пипетки, предварительно тщательно перемешав жидкость в пробирке, чтобы взвесь форменных элементов была равномерной./При заполнении камеры жидкость не должна попадать в борозды и в камере не должно быть пузырьков воздуха/.
После заполнения камеры оставьте ее стоять на 1-2мин на предметном столике микроскопа, чтобы элементы крови осели на дно камеры и движение их прекратилось.
Настройте микроскоп для работы – подсчет ведите под малым увеличением опущенным конденсором и прикрытой диафрагмой.
Подсчитайте число эритроцитов в пяти больших квадратах, расположенных по диагонали, каждый из которых разграфлен на 16 малых квадратиков.
Полученное число эритроцитов умножьте на 10000 – получите количество эритроцитов в 1мм кубическом. В норме количество эритроцитов у женщин 3,9 – 4,7 на 10 в 12 степени на литр. У мужчин – 4,0 – 5, 0 на 10 в 12 степени на литр.
19. Подсчитайте количество лейкоцитов в камере Горяева:
К боковым полям камеры Горяева плотно притрите покровное стекло.
Стекло притирается легким нажимом на боковые края большими пальцами правой и левой руки до появления радужных колец Ньютона.
Заполните камеру Горяева с помощью стеклянной палочки или Пастеровской пипетки, предварительно тщательно перемешав жидкость в пробирке, чтобы взвесь форменных элементов была равномерной. /При заполнении камеры жидкость не должна попадать в борозды и в камере не должно быть пузырьков воздуха/.
После заполнения камеры оставьте ее стоять на 1-2мин на предметном столике микроскопа, чтобы элементы крови осели на дно камеры и движение их прекратилось.
Настройте микроскоп для работы – подсчет ведите под малым увеличением опущенным конденсором и прикрытой диафрагмой.
Подсчитайте число лейкоцитов в ста больших не разграфленных квадратах, которые располагаются по четыре квадрата.
Полученное число лейкоцитов умножьте на 50 – получите количество лейкоцитов в 1мм кубическом. В норме количество лейкоцитов в 1мм кубическом равно от 4-х до 9-ти тысяч, т.е. от 4 до 9х 10 в 9 степени на литр.