
- •Часть I
- •§ I. А) Оборудование рабочего места.
- •§ 7. Метод люминесцентной микроскопии.
- •§ I. Устройство электронного микроскопа.
- •§2. Методы электронно-микроскопического препарирования.
- •§3. Методы получения ультратонких срезов
- •§ 4. Демонстрация ультратонких срезов бактериальных клеток в электронном микроскопе.
- •§ 5. Описание метода микроскопии в темном поле см. В методических указаниях к 4 практическому занятию.
- •§ 2. Посмотреть под микроскопом препарат-мазок из культуры бактерий, имеющих жгутики, и зарисовать. Препарат окрашен по методу Бениньетти.
- •§ 3. Окраска по Граму (в модификации Синева) производят следующим образом. Из исследуемого материала готовят тонкий препарат-мазок, высушивают его на воздухе и фиксируют на пламени спиртовки.
- •§ 4. Окраска зерен волютина по Нейссеру.
- •§ 5. Окраска капсул по методу Бурри-Гинса.
- •§ 3. Метод микроскопии в темном поле.
- •§ 6. В препарате-мазке, окрашенном метиленовым синим, обратить внимание на форму дрожжевых клеток, наличие почковидных выпячиваний, а также на внутреннее строение клеток.
- •3Анятие 5
- •§ 9. Сделать посев отпечатков пальцев руки на пластинки мпа и среды Эндо.
- •§ 4. Результаты посева на среды пестрого ряда зарегистрировать в таблице.
- •§ 5. Приготовить взвесь почвы в Физиологическом растворе. С помощью пастеровской пипетки засеять 1-2 капли взвеси на среду Тароцци.
- •§ 4. А) Определение дифтерийного экзотоксина реакцией преципитации в агаре.
- •§ 7. Демонстрация различных методов заражения экспериментальных животных:
- •§ I. Макроскопическое изучение культур стафилококков на кровяном мпа. Зарисовать картину гемолиза.
- •§ 2. Демонстрация инструментария, посуды, разбор правил пересылки материала для исследования в бактериологические лаборатории.
- •§ 5. Опыт действия лизоцима на Micrococcus lysodeikticus.
- •§ I. Определение ld50 по методу Рида и Менча. Ld50 - количество микроорганизмов (бактерий, вирусов), вызывающих гибель 50 % зараженных животных.
- •§ 3. Приготовить корпускулярные антигены из культур водного вибриона и кишечной палочки. Для этого:
- •§ 4. Методы иммунизации животных и получения иммунных сывороток:
- •§ 5. Реакция агглютинации:
- •§ I. Разбор методов приготовления 0- и н-антигенов.
- •§ 5. Определение титра агглютинирующей сыворотки. Для опыта необходимо иметь:
- •§ I. Учесть окончательный результат реакции агглютинации и определить титр испытуемой агглютинирующей сыворотки. Результаты опыта отметить в таблице, схема которой дана ниже.
- •§ 5. Для постановки реакции преципитации необходимо иметь:
- •§ 6.Реакция преципитации в агаре.
- •§2. Реакция лизиса.
- •§ 4. Реакция фагоцитоза. Постановка опсоно-фагоцитарной реакции.
- •§5. А)Прямой иммунофлуоресцентный метод.
- •§ I. А). Опыт трансдукции.
- •Часть II. Вирусология
- •§ I. Зарисовать феномен бактериофагии на плотной питательной среде.
- •§ 2. Для титрования бактериофага используются различные методы. Наиболее точным является метод агаровых слоев, предложенный Графа. Сущность этого метода состоит в следующем.
- •§ 3. А). Элементарные тельца (вирионы) вируса оспы (тельца Пашена) в препаратах, окрашенных по Морозову, выглядят в виде мелких точек круглой или удлиненной формы, темно-коричневого цвета.
- •§ 4. Методы заражения животных разнообразны: внутрибрюшинный, внутривенный, внутримышечный, интраназальный, заражение в мозг и другие.
- •§ 6. С помощью камеры Горяева подсчитают количество клеток в 1 мл. Клетки считают по всей камере под малым увеличением микроскопа . Количество клеток в 1 мл вычисляют по формуле:
- •3. Методы микробиологической диагностики вирусных заболеваний
- •3Анятие 3
- •1. Вирусологические:
- •2. Эпидемиологические:
- •§ 3. Для диагностики вирусных гепатитов могут быть использованы методы:
- •Часть III
- •§1.Зарегистрировать в таблице результаты реакции Райта. Сформулировать и записать вывод: указывают ли результаты реакции на наличие заболевания бруцеллезом у данного больного?
- •§5.Рассмотреть невооруженным глазом и под малым увеличением микроскопа колонии сибиреязвенных палочек (вакцинный штамм сти).
- •§ 2,3. Поставить реакцию агглютинации с монорецепторными 0- и н-сыворотками, принимая во внимание биохимические свойства выделенной культуры. Результаты зарегистрировать в тетрадь.
- •§ 1. Произвести макро- и микроскопическое исследование подозрительных колоний (бесцветные, прозрачные). Посеять подозрительную колонию на скошенный мпа и среды "пестрого ряда".
- •§ 1. Поставить реакцию агглютинации на стекле выделенной культуры кишечной палочки с поливалентными ок-сыворотками:
- •§1. Демонстрация роста анаэробов на средах Виллиса-Хоббс, Тароцци, Вильсон-Блера, Цейсслера, на молоке.
- •§1. Промикроскопировать готовые препараты-мазки из культуры коклюшной палочки с окраской по Граму и зарисовать.
- •§2. Разбор методов микробиологической диагностики коклюша: бактериологического и серологического. Дифференциация коклюшной и паракоклюшной палочек.
- •§2. Промикроскопировать готовые препараты-мазки туберкулезных бактерий, окрашенных по Цилю-Нильсену. Препараты зарисовать.
- •§3. Демонстрация роста туберкулезных бактерий на глицериновом бульоне, яичной среде Петраньяни и других средах.
- •§7. Ознакомление с составом и назначением следующих иммунопрепаратов: туберкулин Коха, очищенный туберкулин ррd-l, вакцина бжп.
- •§1. Произвести учет результатов определения биохимической активности коринебактерий и пробы на токсигенность.
- •§1. Промикроскопировать и зарисовать готовые препараты-мазки риккетсий. По Романовскому-Гимза риккетсии окрашены в красный цвет.
- •§2. Разбор и демонстрация реакции агглютинации с риккетсиозным антигеном (взвесь убитых формалином риккетсий). Результаты реакции зарегистрировать.
§ I. А). Опыт трансдукции.
К I мл 3-часовой бульонной культуры реципиента Е.соli1ас— добавляют в таком же количестве трансдуцирующий фаг, выделенный из культуры Е. соli 1ас, в концентрации 106-107 . Смесь инкубируют при 370 в течение часа, после чего 0,1 мл высевают на среду Эндо. В качестве контроля на среду Эндо высевают также культуру Е.соli lас+ (реципиент без шага). Посевы ставят на сутки в термостат. Учет результатов производят по числу выросших окрашенных колоний.
б) Опыт конъюгации.
Сущность опыта заключается в том, что от донорных клеток путем конъюгации передаются гены, контролирующие способность синтезировать треонин и лейцин, клеткам-реципиентам, ауксотрофным по этим аминокислотам.
В качестве донора используется культура Е.coli Hfr с генотипом tre+, lei+ , met-,strs, (strs- чувствительность к стрептомицину). Реципиентом служит культура Е. coli F-с генотипом tre-, lei-, met+, strr (strr - устойчивость к стрептомицину) .
Для выделения рекомбинантов используют солевую среду М-9 со стрептомицином, содержащую глюкозы 1.0 г; стрептомицина - 200 ед/мл; NH4Cl- 1,0 г; NaС1- 0,5 г;Na2HРO4 - 6,0 г; КH2PO4- 3,0 г;Mg2SO4-0,2 г; дистиллированной воды - 170 л. Для тех же целей может быть использована плотная среда. В этом случае к указанному составу добавляется 20,0 г. агар-агара.
На этой среде могут расти только рекомбинанты. Культуры донор-ного и реципиентного штаммов не растут на данной среде, так как первая ауксотрофна по метионину и чувствительна к стрептомицину, а вторая ауксотрофна по треонину и лейцину.
Постановка опыта: к 2 мл 3-часовой бульонной культуры реципиента добавляют I мл 3- часовой бульонной культуры донора. Смесь инкубируют в течение 30 минут при 37° . Затем смесь разводят в 100 и 1000 раз и засевают разведения в объеме 0,1 мл на селективную среду для выделения рекомбинантов. В качестве контроля на такую же среду засевают культуры донора и реципиента в том же объеме. На следующие сутки регистрируют результаты опыта. В пробирках с посевом рекомбинанта наблюдается помутнение среды. В средах с посевами донорной и реципиентной культур роста нет. Аналогичным образом регистрируют результаты посевов на плотных средах.
Просмотреть посевы культур донора, реципиента и рекомбинантов на минимальной среде со стрептомицином. Обратить внимание на рост культуры рекомбинантов. Культуры донора и реципиента не растут на данной среде, так как культура донора ауксотрофна по метионину и чувствительна к стрептомицину, а культура реципиента ауксотрофна по треонину и лейцину. Чашки с посевом зарисовать.
Результаты опыта трансдукции
Рост лактозопозитивных колоний на среде Эндо
Рис.1 Опыт
Рис.2 Контроль
Результаты опыта по конъюгации.
Рост на голодной среде со стрептомицином.
Рис.3 Донор
Рис.4 Рекомбинант
Рис.5 Реципиент
Контрольные вопросы
Что такое ген?
Что таков мутации спонтанные и индуцированные?
Каков молекулярный механизм мутации?
Какие вы знаете мутагены?
Что такое ауксотрофы? Как получают ауксотрофные штаммы бактерий?
Каков механизм генетических рекомбинаций?
Что такое трансформация?
Что такое трансдукция и какими свойствами обладает трансдуцирующий фаг?
Что такое конъюгация бактерий? Как она осуществляется?
Как производят картирование хромосом?
Что такое плазмида?
Какие известны классы плазмид?
Каковы основные свойства плазмид?
Какие существуют типы генетического контроля лекарственной устойчивости у бактерий?
Каковы основные функций F-фактора?
В чем заключается механизм конъюгации бактерий?
Что такое бактериоцины?
Каковы основные свойства Соl -плазмид?
Какими свойствами обладают R-плазмиды?
Как определяют конъюгативные свойства плазмид?
Как получают рекомбинантные молекулы ДНК?
Что такое генетический вектор?
Как у бактерий можно обнаружить плазмиды?
В каких направлениях могут быть использованы достижения генной инженерии?
Приложение к занятию 13
Определение понятия ген
Ген - универсальная организующая структурная единица живой материи, которая благодаря содержащейся в ней закодированной информации обеспечивает единство и многообразие всех форм существования жизни, ее непрерывность и эволюцию.
Ген - основной носитель и хранитель жизни, а его продукт - белок - способ ее существования (А.И.Коротяев, Т.В.Малышева).
Основные формы обмена генетическим материалом у бактерий
1.Конъюгация - обмен хромосомными и плазмидными генами путем установления контакта между донорной и реципиентной клетками с помощью донорных ворсинок.
Механизм конъюгации контролируется конъюгативными (донорными) плазмидами.
2.Трансдукция - перенос генов от донорной клетки в реципиентную с помощью фагов.
3.Сексдукция - перенос генов от донорной клетки в реципиентную с помощью F-фактора (полового фактора).
4.Трансформация - поглощение компетентными клетками внеклеточной ДНК.
5.Трансфекция - поглощение протопластами свободной фаговой ДНК.
Плазмиды -наипростейшие живые существа, лишенные белковой оболочки и представленные только совокупностью организованных генов, определяющих их специфические свойства, наследственность, а также дополнительные признаки, которыми они наделяют клеткуносителя.
Плазмиды подразделяются на конъюгативные, т,е. способные к самопереносу, и неконъюгативные, перенос которых осуществляется конъюгативными плазмидами.
Передача плазмид среди бактерий происходит как по вертикали, так и по горизонтали, обеспечивая их эпидемическое распространение.
Специфические функции плазмид
1.Саморепликация.
2.Конъюгативность, или способность к самопереносу (у конъюгативных плазмид).
3.Мобилизуемоеть, или способность к мобилизации на перенос конъюгативными плазмидами (у неконъюгативных плазмид).
4.Контроль явления несовместимости.
5.Контроль явления поверхностного исключения.
6.Контроль числа копий на хромосому клетки - хозяина.
7.Контроль стабильности поддержания и распределения между дочерними клетками.
8.Способность наделять клетку-хозяина дополнительными важными селективными свойствами. Фенотипические проявления этих свойств определяют класс плазмид.
Классы плазмид
КЛАСС |
ФУНКЦИЯ |
F-плазмиды |
Донорные функции |
R-плазмиды |
Устойчивость к лекарственным препаратам |
Col-плазмиды |
Синтез колицинов |
Ent-плазмиды |
Синтез энтеротоксинов и факторов адгезии |
Hly-плазмиды |
Синтез гемолизинов |
Биодеградативные плазмиды |
Разрушение различных органических соединений |
Inc – группы, выявленные среди плазмид энтеробактерий.
Группа |
Прототипная плазмида |
Группа |
Прототипная плазмида |
IncB |
TPI13 |
IncIα (IncII, IncIβ) |
R64 |
IncC |
R40a (pIP40a) |
IncI2 |
TP114 |
IncD |
R711b |
IncIγ |
R621a |
IncE |
pJa4620 |
IncIδ |
R821a |
IncFI тип 1 |
F |
IncIε |
R805a |
IncFI тип 2 |
R162 |
IncJ |
R391 |
IncFI тип 3 |
TP181 (FIme) |
IncK |
R387 |
IncFII |
R1 |
IncM |
R446b |
IncFIII |
ColB-K98 |
IncN |
N3 (RN3) |
IncFIV |
R124 |
IncP |
RP4 |
IncFV |
pIe509 |
IncQ |
R678 |
IncFVI |
Hly-P212 |
IncT |
Rts-1 |
IncFVII |
pAP38 |
IncU |
RA3 |
IncFVIII |
pAP43 |
IncV |
R753 |
IncFIX |
pAP42 |
IncW |
S-a |
IncFX |
pAP19-1 |
IncX |
R6K |
IncG |
Rms149 |
IncY |
φAmp-PlCm |
IncH1 |
R27 (TP117) |
IncZ |
pIE544 |
IncH2 |
R478 |
Inc9 |
R71a |
IncH3 |
MIP233 |
|
|
Примечание: Inc – группа соответствует биологическому виду.
Рис.6 Молекулярная организация плазмиды pKMI0I.
Конъюгативная плазмида pKM101 IncN группы является производной плазмиды R46, у которой утрачена область генов, контролирующая устойчивость к антибиотикам. Широко используется для изучения механизмов генетической регуляции плазмидных функций.