Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Автореферат-Ермаковой+АВ-19_11_13-1

.pdf
Скачиваний:
13
Добавлен:
21.05.2015
Размер:
709.05 Кб
Скачать

 

40

 

 

 

 

 

 

)

40

 

 

 

 

 

 

Метан (ммоль/л)

10°С

 

20°С

а

 

Концентрация (ммоль/л

 

Пропионат

 

б

 

 

 

 

 

 

 

 

30

30°С

 

40°С

 

 

30

 

Ацетат

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

CH4

 

 

 

 

20

 

 

 

 

 

 

20

 

 

 

 

 

 

10

 

 

 

 

 

 

10

 

 

 

 

 

 

0

 

 

 

 

 

 

0

 

 

 

 

 

 

0

50

100

150

200

250

300

0

50

100

150

200

250

300

 

 

 

 

 

Время (сутки)

 

 

 

 

 

Время (сутки)

 

 

 

Рис. 2. Динамика окисления пропионата и образования метана консорциумом при разных

 

температурах. При 10, 20, 30 и 40°С (а) и 10°С (б).

 

 

 

 

 

 

 

Бутират-окисляющий консорциум функционировал в диапазоне температур от 10 до 30°С с оптимумом при 20–30°С. При 40°С окисление бутирата не происходило (рис. 3 а). Инкубирование при 10°С сопровождалось временным накоплением ацетата (рис. 3

б).

40

 

10°С

 

20°С

 

 

Концентрация (ммоль/л)

40

 

Бутират

 

 

 

 

 

 

 

а

 

 

 

 

 

б

 

30

 

30°С

 

40°С

 

30

 

Ацетат

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

CH4

 

 

 

 

20

 

 

 

 

 

 

20

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

10

 

 

 

 

 

 

10

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

0

 

 

 

 

 

 

0

 

 

 

 

 

 

ммольМетанл()/

50

100

150

200

250

300

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

0

 

0

50

100

150

200

250

300

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Время (сутки)

 

 

 

 

 

Время (сутки)

 

 

Рис. 3. Динамика окисления бутирата и образования метана консорциумом при разных

температурах. При 10, 20, 30 и 40°С (а). При температуре 10°С (б).

 

 

 

 

4.Исследование микробного разнообразия метаногенных синтрофных консорциумов методом денатурирующего градиентного гель-электрофореза

4.1.Исследование бактериальной составляющей пропионат- и бутиратокисляющих консорциумов

Анализ ПЦР-продуктов пропионат- и бутират-окисляющих консорциумов, после амплификации с универсальными бактериальными праймерами для ДГГЭ, показал наличие 5-7 полос в каждом консорциуме. Обращало на себя внимание различное расположение полос в образцах из пропионат- и бутират-окисляющих консорциумов, выращенных при 10 и 30°С (рис. 4 а, б; табл. 1, 2). Это свидетельствовало о различной

9

таксономической принадлежности бактерий, использующих пропионат или бутират и составляющих психроактивный и мезофильный консорциумы.

а

БК П10 П30

Рис. 4. ДГГЭ пропионат-окисляющего

б Б10 Б30

(а) и бутират-окисляющего (б)

 

 

консорциумов.

 

 

 

 

Бактериальный контроль (БК).

 

 

 

Пропионат-окисляющий консорциум,

 

 

 

выращенный при 10°С (П10) и 30°С

 

 

 

(П30).

 

 

 

 

Бутират-окисляющий

консорциум,

 

 

 

выращенный при 10°С (Б10) и 30°С

 

 

 

(Б30).

 

 

Путем амплификации генов 16S рРНК с универсальными бактериальными праймерами и последующим сиквенированием вырезанных после ДГГЭ полос, был получен ряд последовательностей, близких к генам 16S рРНК известных бактерий – пропионат-окислящей бактерии Smithella propionica (97%), бутират-окисляющей бактерии Syntrophomonas bryantii (96%), сахаролитикам Macellibacteroides fermentans

(98%) и Acetivibrio multivorans (81%). Кроме того, консорциумы содержали последовательности бактерий, родственных некультивируемым микроорганизмам, обнаруженным ранее в низкотемпературных природных (Арктика, Антарктика) и антропогенных (психрофильные анаэробные биореакторы, низкотемпературное нефтяное хранилище) местах обитания (табл. 1, 2).

Полученные результаты позволяют предположить, что ряд бактерий в исследованных нами консорциумах принадлежит к новым таксонам.

4.2.Исследование архейной составляющей консорциумов

Методом ДГГЭ с универсальными архейными праймерами нами была проанализирована архейная составляющая пропионат- и бутират-окисляющих консорциумов. В обоих консорциумах были выявлены последовательности гена 16S

рРНК Methanosaeta (99-100% сходства с M. concilii), Methanospirillum (97.5% сходства с M. hungatei) и Methanomethylovorans (98-99% сходства с M. hollandica). Полученные результаты позволили нам предположить, что археон со сходством последовательности гена 16S рРНК 97.5% с геном 16S рРНК M. hungatei может являться новым видом

Methanospirillum.

10

Таблица 1. Филогенетическое разнообразие представителей домена Bacteria пропионат-окисляющего синтрофного консорциума

Консорциум,

 

 

Таксоны в генбанке

% сходства

Источник выделения

температура

 

 

 

генов 16S

 

Номер

Ближайшие таксоны

 

инкубации

сиквенса в

 

рРНК

 

 

 

 

 

 

генбанке

 

 

 

Пропионат

AB447697

 

Тип Proteobacteria, семейство Syntrophaceae,

97

Анаэробный биореактор

10°С

 

 

Smithella propionica

 

 

 

CP002541

 

Тип Spirochaetes, семейство Spirochaetaceae,

90

Пресноводный осадок

 

 

 

Sphaerochaeta globosa str. Buddy, полный геном

 

 

 

EF034778

 

Домен Bacteria, клон

92

Лед Антарктического

 

 

 

 

 

озера

 

HE654006

 

Тип Firmicutes; семейство Syntrophomonadaceae;

96

Анаэробный биореактор

 

 

 

Syntrophomonas bryantii

 

 

 

HQ020488

 

Тип Bacteroidetes; семейство Porphyromonadaceae;

98

Психрофильный

 

 

 

Macellibacteroides fermentans

 

анаэробный биореактор

Пропионат

EU517557

 

Тип Firmicutes; семейство Clostridiaceae, клон

96

Метаногенное сообщество

30°С

 

 

 

 

нефтяного пласта

 

HQ183984

 

Тип Synergistetes; семейство Synergistaceae;

94

Свалочный ил

 

 

 

Aminobacterium sp., клон

 

 

 

GQ385405

 

Домен Bacteria, клон

98

Завод по опреснению воды

 

NR_042987

 

Тип Bacteroidetes; семейство Porphyromonadaceae;

99

Низкотемпературное

 

 

 

Petrimonas sulfuriphila штамм BN3

 

нефтяное хранилище

 

HE654006

 

Тип Firmicutes; семейство Syntrophomonadaceae;

96

Анаэробный биореактор

 

 

 

Syntrophomonas bryantii

 

 

 

HQ020488

 

Тип Bacteroidetes; семейство Porphyromonadaceae;

98

Психрофильный

 

 

 

Macellibacteroides fermentans

 

анаэробный биореактор

Таблица 2. Филогенетическое разнообразие представителей домена Bacteria бутират-окисляющего синтрофного консорциума

Консор-

 

Таксоны в генбанке

% сходства

Источник выделения

циум,

 

 

генов 16S

 

температура

Номер

Ближайшие таксоны

рРНК

 

инкубации

сиквенса в

 

 

 

 

генбанке

 

 

 

Бутират

HE654006

Тип Firmicutes; семейство Syntrophomonadaceae;

96

Анаэробный биореактор

10°С

 

Syntrophomonas bryantii

 

 

 

HQ020488

Тип Bacteroidetes; семейство

98

Психрофильный анаэробный

 

 

Porphyromonadaceae; Macellibacteroides

 

биореактор

 

 

fermentans

 

 

 

EF034778

Домен Bacteria, клон

99

Почва полярной Арктики

 

FJ645707

Тип Firmicutes; Proteocatella sphenisci штамм

97

Помет пингвина

 

 

PPP2Т(психротолерантная)

 

 

Бутират

HE659254

Домен Bacteria, клон

95

Ливневые сточные воды

30°С

AB447697

Домен Bacteria, клон

96

Низкотемпературный

 

 

 

 

анаэробный биореактор

 

HE654006

Тип Firmicutes; семейство Syntrophomonadaceae;

96

Анаэробный биореактор

 

 

Syntrophomonas bryantii

 

 

 

JF262039

Тип Firmicutes; семейство Clostridiaceae;

81

Анаэробный биореактор

 

 

Youngiibacter fragile штамм 232

 

 

 

FR749900

Тип Firmicutes; Семейство Ruminococcaceae;

81

Анаэробный биореактор

 

 

Acetivibrio multivorans

 

 

 

HQ020488

Тип Bacteroidetes; семейство

98

Психрофильный анаэробный

 

 

Porphyromonadaceae; Macellibacteroides

 

биореактор

 

 

fermentans

 

 

1

5.Выделение и описание нового гидрогенотрофного метаногена Methanospirillum stamsii sp. nov. штамм Pt1T

Из пропионат-окисляющего консорциума методом серийных разведений, использованием антибиотиков и получением отдельных колоний на твердой агаризованной среде была выделена и описана чистая культура первого психроактивного гидрогенотрофного метаногена из рода Methanospirillum Methanospirillum stamsii Pt1T. Основные диагностические признаки приведены ниже.

Клетки штамма имеют форму изогнутых палочек, размером 0.4–0.5 х 7.5–25 мкм. Клетки образуют нити, которые иногда достигают в длину от 25 до нескольких сотен мкм (рис. 5 а). Клетки штамма подвижны за счет пучка полярно расположенных жгутиков (рис. 5 б). При высеве на агар штамм образует колонии светло-желтого цвета. Штамм Pt1T является строгим анаэробом.

а

б

Рис. 5.

Микрофотография клеток

Methanospirillum stamsii

Pt1T. Шкала 10 мкм (а).

Электронная фотография жгутиков клеток

Methanospirillum stamsii

Pt1T. Шкала 0.4 мкм (б).

Штамм Pt1T растет в диапазоне температур от 5 до 37°С с оптимумом роста и метанообразования при 20–30°С (рис. 6 а). Диапазон рН для роста составляет 6.0–10.0 с оптимумом 7.0–7.5 (рис. 6 б). Рост штамма Pt1T детектируется в интервале от 0 до 0.3М NaCl. Оптимальный рост наблюдается в отсутствие NaCl в среде.

Максимальнаяскорость

 

10

 

 

метанообразования (ммоль/лв сутки)

8

 

а

6

 

 

4

 

 

2

 

 

0

 

 

0

5

10 15 20 25 30 35 40 45

 

 

 

 

Температура(oC)

Максимальнаяскорость

 

6

 

 

 

 

 

 

 

 

метанообразования (ммоль/лвсутки)

5

 

 

 

 

 

 

б

 

4

 

 

 

 

 

 

 

 

3

 

 

 

 

 

 

 

 

2

 

 

 

 

 

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

0

 

 

 

 

 

 

 

 

4

5

6

7

8

9

10

11

12

 

 

 

 

 

 

 

 

рН

 

 

 

 

Рис. 6. Максимальные скорости образования метана штаммом Pt1Т при разных температурах инкубации (а) и в средах при разном значении рН при температуре 25°С (б).

Штамм Pt1Т использует для роста смесь H2/СO2 (4:1). На ацетате, пирувате, метаноле,

13

этаноле, бутаноле и метиламинах (10 ммоль/л) не растет. На формиате (10 ммоль/л) наблюдается очень слабый рост. Ацетат (2 ммоль/л) и дрожжевой экстракт (1 г/л) оказывают стимулирующее действие на рост штамма. Штамм Pt1Т чувствителен к циклосерину и канамицину, однако резистентен к пенициллину, ампициллину, эритромицину, ванкомицину и рифампицину.

Филогенетический анализ, основанный на сравнении генов 16S рРНК исследуемого штамма и родственных организмов, показал низкий уровень сходства с Methanospirillum hungatei JF1T (97.5%) и еще более низкий уровень сходства с

Methanospirillum lacunae Ki8-1T (94%) (рис.7).

Рис. 7. Филогенетическое положение штамма Pt1Т на основании сравнения нуклеотидных последовательностей гена 16S рРНК методом ближайших соседей. Цифрами показаны значения индекса “bootstrap” более 50%. В корне дерева Methanobacteria (не показано).

Анализ, основанный на сравнении нуклеотидных последовательностей гена mcrA, также показал низкий уровень сходства с Methanospirillum hungatei JF1T (91%) и с Methanospirillum lacunae Ki8-1T (86%). Содержание Г+Ц пар оснований в ДНК 40 мол%. Уровень ДНК-ДНК гибридизации штаммов Methanospirillum stamsii Pt1Т и Methanospirillum hungatei JF1T составляет 39%. Совокупность физиологических и молекулярно-биологических характеристик штамма, позволяет отнести выделенный штамм к новому виду Methanospirillum stamsii Pt1Т (=DSM 26304Т, =VKM B-2808Т).

Ранее были выделены и описаны два вида метаногенов, относящихся к роду

Methanospirillum: Methanospirillum hungatei JF1T (Ferry et al., 1974) и Methanospirillum lacunae Ki8-1T (Iino et al., 2010). Представители этих видов являются мезофилами и не растут ниже 20°С (Methanospirillum hungatei) и 15°С (Methanospirillum lacunae). В

таблице 3 приведены сравнительные характеристики типовых штаммов рода

14

Methanospirillum. Штамм Pt1Т психроактивный – он имеет более низкий температурный предел и оптимум роста (табл. 3).

Таблица 3. Сравнительные характеристики штамма Pt1Т, M. lacunae Ki8-1T и M. hungatei JF1T

Характеристика

 

Pt1T

M. lacunae Ki8-1T

 

M. hungatei JF1T

Форма клеток

искривленные палочки

искривленные палочки

искривленные палочки

Ширина клеток (мкм)

0.4-0.5

 

0.5-0.6

 

0.4-0.5

Длина клеток (мкм)

 

7-25

 

11-25

 

7.4-10

Диапазон температур (°C)

5-37

 

15-37

 

25-50

Оптимум температуры (°C)

20-30

 

30

 

30-37

Диапазон pH

 

6.0-10.0

 

6.0-9.5

 

6.5-10.0

Оптимум pH

 

7.0-7.5

 

7.5

 

6.6-7.4

Диапазон NaCl (M)

 

0-0.3

 

0-0.2

 

0-0.2

Оптимум NaCl (М)

 

0

 

0

 

0

Субстраты:

 

 

 

 

 

 

H2/CO2

 

+

 

+

 

+

Формиат

 

±

 

+

 

+

Содержание Г+Ц (мол%)

40 (Tm)

 

45.3 (HPLC)

 

45 (Tm)

Источник выделения

биомасса реактора

почва

муниципальные сточные воды

 

 

 

 

 

 

 

6.Выделение и описание «Methanosarcina porcellina» sp. nov. штамм Pr1, Pr2T и их бактерии-спутника Sphaerochaeta sp. PS

Одной из задач нашего исследования было выделение психроактивных метаногенов из низкотемпературных мест обитания. Ранее Т.Н. Жилина и Г.А. Заварзин (1991) выделили из подмосковного болота штамм Methanosarcina sp. Z-7289, способный расти при температуре 6°С. Метаносарцина росла на ацетате, но не использовала Н2/СО2. Позже Паршиной и соавторами (1993) были получены накопительные культуры двух морфотипов метаносарцин из жидких стоков свинофермы, хранившихся в навозохранилище при среднегодовой температуре ниже 10°С, а также накопительная культура метаносарцины из донных осадков пресноводного озера. Все метаносарцины были способны расти при 1–5°С. Психроактивная сарцина, выделенная из донных осадков, названная Methanosarcina lacustris (Simankova et al., 2001), является единственной из десяти известных видов психроактивных метаногенов, выделенной из пресноводного источника и способной расти при температуре ниже 10°С на Н2/СО2. На данный момент ни один валидный психроактивный метаноген не был выделен из антропогенных мест обитания. Метаносарцины из свиного навоза представляют большой интерес, так как были обнаружены в низкотемпературном антропогенном месте обитания. Из накопительной культуры была выделена, но не описаны чистая

15

культура Methanosarcina sp. штамм Pr2 и монокультура Methanosarcina sp. штамм Pr1. В рамках настоящей работы автором диссертации методом серийных разведений, высевом на среду с агаром, пересевами с антибиотиками Methanosarcina sp. штамм Pr1 была выделена в чистую культуру.

6.1.Описание «Methanosarcina porcellina» sp. nov. Pr2T и штамма Рr1

Штаммы Pr1 и Pr2T растут в виде молочно-белых агрегатов на дне флаконов. Надосадочная жидкость остается прозрачной. Штамм Pr2Т образует более крупные агрегаты, чем штамм Pr1 (рис. 8 а), состоящие иногда из нескольких сотен плотно упакованных кокковидных клеток неправильной формы (рис. 8 б).

а

б

Рис. 8.

 

 

 

 

 

 

 

 

Микрофотография

 

 

Methanosarcina

sp.

 

 

штамм Pr1

(а)

и

 

 

Methanosarcina

 

 

 

porcellina”

штамм

 

 

Pr2Т (б). Шкала 10

мкм.

Размер кокков в агрегатах штамма Pr1 составляет 1.5–3.5 мкм в диаметре, а штамм Pr2Т образует кокки 0.5–1.5 мкм в диаметре. При взбалтывании агрегаты легко разрушаются, в результате чего культуральная жидкость становится тонкодисперсной и мутно-белого оттенка, а осадок сравнительно долго оседает. При высеве на агаризованную среду штаммы формируют колонии бледно-желтого цвета. Диаметр колоний штамма Pr1 составляет 0.4–1.0 мм, а штамма Pr2Т - 0.5–1.5 мм. Оба штамма - строгие анаэробы, чувствительные к канамицину и хлорамфениколу.

Штаммы растут на монометиламине, диметиламине, триметиламине, метаноле, но не используют формиат, ацетат, лактат, пируват, кротонат, бетаин, пропионат, бутират, этанол, 1-пропанол, 2-пропанол, 1-бутанол, 2-бутанол. Штамм Pr1, в отличие от штамма Pr2Т, обладает способностью к росту на смеси H2/CO2.

Температурный диапазон метанообразования для штамма Pr1 составляет 1–30°С, с оптимумом при 21°С (рис. 9 а). При температуре 1°С наблюдается длинная лаг-фаза и низкая скорость метанообразования. При 35°С метан не образуется. Штамм Pr2Т образует метан в пределах температур от 5 до 35°С, с оптимумом при 25–30°С (рис. 9 б). При температурах 1 и 40°С метанобразования не происходит.

16

 

Штамм Pr1 образует метан в интервале рН от 5.5 до 7.5 с оптимумом рН 6.0–7.2

(рис. 10 а). Штамм Pr2Т образует метан в диапазоне рН от 6.5 до 7.5 с оптимумом рН

6.8–7.2 (рис. 10 б).

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Максимальнаяскорость

7

 

 

 

 

 

 

 

Максимальнаяскорость метанообразования (ммоль/лв сутки)

8

 

 

 

 

 

 

 

 

6

 

 

 

 

 

 

а

7

 

 

 

 

 

б

 

 

5

 

 

 

 

 

 

 

6

 

 

 

 

 

 

 

 

4

 

 

 

 

 

 

 

5

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

4

 

 

 

 

 

 

 

 

3

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

3

 

 

 

 

 

 

 

 

2

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

2

 

 

 

 

 

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

метанообразования(ммоль/лвсутки) 0

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

0

 

 

 

 

 

 

 

 

 

0

5

10

15

20

25

30

35

40

0

5

10

15

20

25

30

35

40

 

 

 

Температура(°С)

 

 

 

 

 

Температура (°С)

 

 

 

 

Рис. 9. Максимальные скорости образования метана штаммами Pr1 (а) и Pr2Т (б) при разных

температурах культивирования в средах с триметиламином.

 

 

 

 

 

 

 

 

Максимальнаяскорость

 

6

 

 

 

 

 

а

Максимальнаяскорость

метанообразования (ммоль/лв сутки)

6

 

 

б

 

метанообразования (ммоль/лв сутки)

5

 

 

 

 

 

5

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

4

 

 

 

 

 

 

4

 

 

 

 

3

 

 

 

 

 

 

3

 

 

 

 

2

 

 

 

 

 

 

2

 

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

1

 

 

 

 

0

 

 

 

 

 

 

0

 

 

 

 

3

4

5

6

7

8

9

5

6

7

8

9

 

 

 

 

 

 

 

 

 

рН

 

 

 

 

 

 

 

рН

 

 

 

Рис. 10. Максимальные скорости образования метана штаммами Pr1 (а) и Pr2Т (б) при

культивирования в средах с разным значением рН.

 

 

 

 

 

 

 

Штаммы Pr1и Pr2Т образуют метан при солености среды менее 0.4М NaCl и 0.2М NaCl соответственно. Оптимальная скорость метанообразования обоих штаммов наблюдается при 0 NaCl в среде. В сравнении со штаммом Pr1, штамм Pr2Т обладает более узкими диапазонами рН, температуры и содержания NaCl для роста и метанообразования.

Филогенетический анализ нуклеотидных последовательностей гена 16S рРНК исследуемых штаммов показал 100% сходства друг с другом и 99.9% сходства с геном Methanosarcina lacustris ZSТ (рис. 11). Анализ последовательностей гена mcrA выделенных штаммов Pr1 и Pr2T также показал 100% сходства этих генов у обоих штаммов между собой и 99.5% сходства с геном mcrA типового штамма Methanosarcina lacustris ZSТ (подробнее в рукописи).

Содержание Г+Ц пар оснований в ДНК штамма Pr1 составляет 45.6 мол%, а у штамма Pr2Т - 43.8 мол%. Уровень ДНК-ДНК гибридизации штаммов Pr1 и Pr2Т с ближайшим родственным микроорганизмом Methanosarcina lacustris ZSТ составляет 53

17

и 42% сходства с, соответственно. Уровень ДНК-ДНК гибридизации штамма Pr1 со штаммом Pr2Т 79%.

Рис. 11. Филогенетическое положение штамма Pr1 и штамма Pr2Т на основании сравнения нуклеотидных последовательностей гена 16S рРНК методом ближайших соседей.

Штамм Methanosarcina sp. Pr1 был депонирован в международной коллекции (=VKM B-2807). Штамм Methanosarcina sp. Pr2Т был депонирован в международных коллекциях (=DSM 15218Т, =VKM B-2806Т).

Таблица 4. Сравнительные характеристики штаммов Pr1, Pr2Т и M. lacustris ZSТ

Характеристика

Штамм Pr1

Штамм Pr2Т

M. lacustris ZSТ

Морфология

агрегаты кокков

агрегаты кокков

агрегаты кокков

Размер кокков (мкм)

1.5-3.5

0.5-1.5

1.5-3.5

Т опт. (°С)

21

25-30

25

Т мин. – Т макс. (°С)

1-30

5-35

1-35

NaCl опт. (М)

0

0

0

NaCl мин. - NaCl макс. (М)

0-0.3

0-0.1

н.о.*

рН опт.

6.0-7.2

6.8-7.2

7.0

pH мин. - pH макс.

5.5-7.5

6.5-7.5

4.5-8.5

Субстраты:

 

 

 

Ацетат

-

-

-

Метиламины

+

+

+

Метанол

+

+

+

Н2/СО2

+

-

+

% сходства гена 16S рРНК:

 

 

 

M. lacustris ZSТ (%)

99.9

99.9

100

Pr2Т

100

100

-

% сходства по гену mcrA:

 

 

 

M. lacustris ZSТ (%)

99.5

99.5

100

Pr2Т

100

100

-

ДНК-ДНК гибридизация c:

 

 

 

M. lacustris ZSТ (%)

53

42

100

с Pr2Т

79

100

-

Содержание Г+Ц (мол%)

45.6

43.8

43.4

н.о. – не определяли

 

 

 

18