- •Государственное образовательное учреждение высшего
- •Р е ц е н з е н т ы:
- •Оглавление
- •Предстерилизационная подготовка
- •Профилактика имплантационной инфекции.
- •Понятие об антисептике. История асептики и антисептики.
- •Виды антисептики. Механическая антисептика. Понятие о первичной и вторичной хирургической обработке ран, принципы и этапы выполнения.
- •Химическая антисептика. Основные группы антисептических средств. Способы использования различных химических веществ. Различные виды местного и общего применения антисептиков.
- •Общая анестезия. Современные представления о механизмах общей анестезии. Классификация наркоза. Подготовка больных к анестезии, премедикация и ее выполнение.
- •Ингаляционный наркоз. Аппаратура и виды ингаляционного наркоза. Современные ингаляционные анестетические средства, мышечные релаксанты. Стадии наркоза.
- •Внутривенная анестезия. Основные препараты. Нейролептаналгезия.
- •Современный комбинированный интубационный наркоз. Последовательность его проведения и его преимущества. Осложнения наркоза и ближайшего посленаркозного периода, их профилактика и лечение.
- •Методика обследования хирургического больного. Общеклиническое обследование (осмотр, термометрия, пальпация, перкуссия, аускультация), лабораторные методы исследования.
- •Предоперационный период. Понятия о показаниях и противопоказаниях к операции. Подготовка к экстренным, срочным и плановым операциям.
- •Хирургические операции. Виды операций. Этапы хирургических операций. Юридические основы проведения операции.
- •Послеоперационный период. Реакция организма пациента на операционную травму.
- •Общая реакция организма на операционную травму.
- •Послеоперационные осложнения. Профилактика и лечение послеоперационных осложнений.
- •Кровотечения и кровопотеря. Механизмы кровотечений. Местные и общие симптомы кровотечений. Диагностика. Оценка тяжести кровопотери. Реакция организма на кровопотерю.
- •Временные и окончательные методы остановки кровотечения.
- •История учения о переливании крови. Иммунологические основы переливания крови.
- •Групповые системы эритроцитов. Групповая система ав0 и групповая система резус. Методы определения групп крови по системам ав0 и резус.
- •Значение и способы определения индивидуальной совместимости (ав0) и резус-совместимости. Биологическая совместимость. Обязанности врача, переливающего кровь.
- •Классификация неблагоприятных последствий гемотрансфузий
- •Водно-электролитные нарушения у хирургических больных и принципы инфузионной терапии. Показания, опасности и осложнения. Растворы для инфузионной терапии. Лечение осложнений инфузионной терапии.
- •Травмы, травматизм. Классификация. Общие принципы диагностики. Этапы оказания помощи.
- •Закрытые повреждения мягких тканей. Ушибы, растяжения, разрывы. Клиника, диагностика, лечение.
- •Травматический токсикоз. Патогенез, клиническая картина. Современные методы лечения.
- •Критические нарушения жизнедеятельности у хирургических больных. Обморок. Коллапс. Шок.
- •Терминальные состояния: предагония, агония, клиническая смерть. Признаки биологической смерти. Реанимационные мероприятия. Критерии эффективности.
- •Повреждения черепа. Сотрясение головного мозга, ушиб, сдавление. Первая медицинская помощь, транспортировка. Принципы лечения.
- •Травма груди. Классификация. Пневмоторакс, его виды. Принципы оказания первой медицинское помощи. Гемоторакс. Клиника. Диагностика. Первая помощь. Транспортировка пострадавших с травмой груди.
- •Травма живота. Повреждения органов брюшной полости и забрюшинного пространства. Клиническая картина. Современные методы диагностики и лечения. Особенности сочетанной травмы.
- •Вывихи. Клиническая картина, классификация, диагностика. Первая помощь, лечение вывихов.
- •Переломы. Классификация, клиническая картина. Диагностика переломов. Первая помощь при переломах.
- •Консервативное лечение переломов.
- •Раны. Классификация ран. Клиническая картина. Общая и местная реакция организма. Диагностика ранений.
- •Классификация ран
- •Виды заживления ран. Течение раневого процесса. Морфологические и биохимические изменения в ране. Принципы лечения «свежих» ран. Виды швов (первичный, первично - отсроченный, вторичный).
- •Инфекционные осложнения ран. Гнойные раны. Клиническая картина гнойных ран. Микрофлора. Общая и местная реакция организма. Принципы общего и местного лечения гнойных ран.
- •Эндоскопия. История развития. Области применения. Видеоэндоскопические методы диагностики и лечения. Показания, противопоказания, возможные осложнения.
- •Термические, химические и лучевые ожоги. Патогенез. Классификация и клиническая картина. Прогноз. Ожоговая болезнь. Первая помощь при ожогах. Принципы местного и общего лечения.
- •Электротравма. Патогенез, клиника, общее и местное лечение.
- •Отморожения. Этиология. Патогенез. Клиническая картина. Принципы общего и местного лечения.
- •Острые гнойные заболевания кожи и подкожной клетчатки: фурункул, фурункулёз, карбункул, лимфангоит, лимфаденит, гидроаденит.
- •Острые гнойные заболевания кожи и подкожной клетчатки: эризопелоид, рожа, флегмоны, абсцессы. Этиология, патогенез, клиника, общее и местное лечение.
- •Острые гнойные заболевания клетчаточных пространств. Флегмоны шеи. Аксилярная и субпекторальная флегмоны. Субфасциальные и межмышечные флегмоны конечнстей.
- •Гнойный медиастинит. Гнойный паранефрит. Острый парапроктит, свищи прямой кишки.
- •Острые гнойные заболевания железистых органов. Мастит, гнойный паротит.
- •Гнойные заболевания кисти. Панариции. Флегмоны кисти.
- •Гнойные заболевания серозных полостей (плеврит, перитонит). Этиология, патогенез, клиника, лечение.
- •Хирургический сепсис. Классификация. Этиология и патогенез. Представление о входных воротах, роли макро- и микроорганизмов в развитии сепсиса. Клиническая картина, диагностика, лечение.
- •Острые гнойные заболевания костей и суставов. Острый гематогенный остеомиелит. Острый гнойный артрит. Этиология, патогенез. Клиническая картина. Лечебная тактика.
- •Хронический гематогенный остеомиелит. Травматический остеомиелит. Этиология, патогенез. Клиническая картина. Лечебная тактика.
- •Хроническая хирургическая инфекция. Туберкулёз костей и суставов. Туберкулёзный спондилит, коксит, гонит. Принципы общего и местного лечения. Сифилис костей и суставов. Актиномикоз.
- •Анаэробная инфекция. Газовая флегмона, газовая гангрена. Этиология, клиника, диагностика, лечение. Профилактика.
- •Столбняк. Этиология, патогенез, лечение. Профилактика.
- •Опухоли. Определение. Эпидемиология. Этиология опухолей. Классификация.
- •1. Отличия доброкачественных и злокачественных опухолей
- •Местные различия злокачественной и доброкачественной опухоли
- •Основы хирургии нарушений регионарного кровообращения. Нарушения артериального кровотока (острые и хронические). Клиника, диагностика, лечение.
- •Некрозы. Сухая и влажная гангрена. Язвы, свищи, пролежни. Причины возникновения. Классификация. Профилактика. Методы местного и общего лечения.
- •Пороки развития черепа, опорно-двигательного аппарата, пищеварительной и мочеполовой систем. Врождённые пороки сердца. Клиническая картина, диагностика, лечение.
- •Паразитарные хирургические заболевания. Этиология, клиническая картина, диагностика, лечение.
- •Общие вопросы пластических операций. Кожная, костная, сосудистая пластика. Филатовский стебель. Свободная пересадка тканей и органов. Тканевая несовместимость и методы её преодоления.
Значение и способы определения индивидуальной совместимости (ав0) и резус-совместимости. Биологическая совместимость. Обязанности врача, переливающего кровь.
Пробы на индивидуальную совместимость крови донора и реципиента.
При проведении проб на индивидуальную совместимость выявляют, есть ли в плазме (сыворотке) реципиента антитела, направленные против эритроцитов донора, способные вызвать агглютинацию эритроцитов в сосудистом русле реципиента с последующим их гемолизом. Поскольку антитела, содержащиеся в плазме донорской крови, при переливании разводятся значительно большим объемом крови реципиента со снижением их титра, - обратные взаимоотношения (т.е. донорских антител к антигенам эритроцитов реципиента) в трансфузиологии не имеют клинического значения.
Проба на совместимость крови донора и реципиента на плоскости при комнатной температуре.
На белую пластинку со смачивающейся поверхностью наносят большую каплю (2-3 капли, взятые пипеткой) сыворотки или плазмы реципиента.
Добавляют к ней в 10 раз меньшую каплю крови донора.
Кровь донора смешивают с плазмой (сывороткой) реципиента, а пластинку покачивают в течение 1-2 минут. Затем оставляя ее в покое на 1-2 минуты.
Через 5 минут после начала реакции (после смешивания капель крови и плазмы) учитывают реакцию после добавления к смеси реагентов (крови и плазмы) капли физраствора.
Трактовка результатов.
На пластинке моделируется то, что может произойти в сосудистом русле реципиента. Если образуются хлопья агглютинатов, а смесь крови донора и плазмы (сыворотки) реципиента светлеет, - кровь этого донора этому реципиенту переливать нельзя, т.к. в плазме реципиента содержатся антитела против антигенов эритроцитов донорской крови. Если же смесь крови и плазмы остается красного цвета и агглютинаты не определяются,- это свидетельствует об отсутствии полных антител в плазме у реципиента, способных вызвать иммунное склеивание эритроцитов донорской крови. Следовательно, такую кровь этому, конкретному, донору, с плазмой которого мы манипулировали, - можно перелить.
Проба на совместимость крови донора и реципиента с 33% раствором полиглюкина (проба на резус-совместимость).
В пробирку помещают большую каплю плазмы (сыворотки) реципиента (2-4 капли, взятые пипеткой).
Добавляют маленькую каплю крови донора (соотношение объемов крови и плазмы 1:10)
К полученной смеси реагентов добавляют каплю 33% раствора полиглюкина.
Содержимое пробирки тщательно перемешивают, пробирку наклоняют, чтобы содержимое растеклось по ее стенкам, и медленно поворачивают вокруг вертикальной оси в течение 5 минут, обеспечивая наиболее полный контакт элементов содержимого пробирки друг с другом.
По истечении 5 минут в пробирку доливают 3-4 мл изотонического раствора хлорида натрия, а содержимое перемешивают, не взбалтывая.
Учитывают результаты, рассматривая содержимое пробирки невооруженным глазом или под лупой с 2-5–кратным увеличением.
Трактовка результатов.
При появлении хлопьев агглютинатов и осветлении жидкости в пробирке кровь донора несовместима с кровью этого реципиента. Если же жидкость в пробирке равномерно окрашена в красный цвет, а агглютинаты не выявляются, - можно сделать вывод об отсутствии в плазме у реципиента неполных антител против антигенов донорских эритроцитов, и, следовательно, кровь этого донора может быть перелита этому реципиенту.
Проба на совместимость с применением 10% раствора желатина (проба на резус-совместимость).
В пробирку помещают 1 каплю отмытых эритроцитов донора.
Добавляют к эритроцитам донора 2 капли подогретого 10% раствора желатина 2 капли сыворотки реципиента.
Тщательно перемешивают содержимое пробирки.
Помещают пробирку на 10 минут на водяную баню при температуре 46-48 градусов.
По истечении указанного времени добавляют в пробирку 5-8 мл изотонического раствора хлорида натрия и перемешивают содержимое пробирки переворачиванием (не взбалтывая).
Учитывают результаты невооруженным глазом или под лупой с 2-5- кратным увеличением.
Трактовка результатов.
Если реакция положительная, т.е. отмечается появление агглютинатов на фоне обесцвеченной жидкости, - эта донорская кровь данному реципиенту не может быть перелита. Если же жидкость в пробирке равномерно окрашена и хлопья агглютинатов не выявляются, - кровь донора совместима с кровью реципиента и может быть ему перелита.
Непрямая проба Кумбса.
При проведении этой пробы (очень высокочувствительной) эритроциты донора отмывают 8-10-кратным объемом изотонического солевого раствора, после чего центрифугируют, и в реакции используют эритроциты из осадка, т.е. эритроциты должны быть максимально освобождены от присутствия других клеточных элементов и плазмы.
Одну маленькую каплю (0,01 мл) отмытых эритроцитов донора помещают в пробирку.
Добавляют 3 капли сыворотки реципиента и тщательно перемешивают содержимое пробирки.
Пробирку помешают в термостат при температуре 37 градусов на 45 минут.
По истечении указанного времени инкубации в пробирку наливают 8-10-кратный объем изотонического солевого раствора (хлорида натрия) и перемешивают содержимое пробирки.
Центрифугируют пробирку до осаждения эритроцитов.
Процедуру отмывания повторяют 3-4 раза, каждый раз тщательно удаляя надосадочную жидкость.
К отмытым эритроцитам добавляют 4-5 капель изотонического раствора хлорида натрия для получения взвеси эритроцитов.
Одну каплю взвеси эритроцитов помещают на пластинку с белой смачивающейся поверхностью.
К взвеси эритроцитов на плоскости добавляют 1-2 капли антиглобулиновой сыворотки и перемешивают стеклянной палочкой.
Пластинку периодически покачивают в течение 10 минут.
Учитывают результат невооруженным глазом или под лупой с 2-5-кратным увеличением.
Трактовка результатов.
Если после добавления антиглобулиновой сыворотки к донорским эритроцитам, инкубированным с сывороткой реципиента, образуются агглютинаты с осветлением жидкости, - в крови реципиента имеются неполные антитела против резус-антигена или других изоантигенов эритроцитов донора, и поэтому такому реципиенту эта донорская кровь не может быть перелита. Если же агглютинации нет,- кровь данного донора совместима с кровью данного реципиента, и следовательно, - может быть ему перелита.
Ошибки при проведении проб на групповую, резус-принадлежность и индивидуальную совместимость.
В большинстве случаев ошибки и затруднения при проведении иммуносерологических исследований связаны с нарушением техники их проведения. Реже в качестве причин ошибочных заключений могут встречаться индивидуальные особенности исследуемой крови.
Во всех случаях получения сомнительных результатов необходимо повторить исследование с использованием реагентов других серий при точном соблюдении правил проведения пробы. При повторном получении сомнительных результатов образец крови следует послать на исследование в специализированную лабораторию.
Наиболее типичные причины ошибок и затруднений при проведении иммуносерологических исследований.
Использование некачественных реагентов (с истекшим сроком годности, помутневших, частично высохших и т.д.)
Нарушение температурных режимов проведения реакций. При проведении определения групповой принадлежности крови по системе АВО температура окружающей среды должна быть в пределах от 15 до 25 градусов Цельсия. При более низкой температуре возможно развитие неспецифической агглютинации, обусловленной холодовыми агглютининами, а при высокой температуре агглютинины альфа и бета снижают свою активность.
Нарушение правильных соотношений реагирующих сред. При проведении пробы с сыворотками (в случаях определения групповой принадлежности по системе АВО) отношение объемов крови и сыворотки должно быть 1:10, а при использовании моноклональных антител и проб с коллоидами (при определении резус-принадлежности) - 2-3:10. В противном случае агглютинация может оказаться незамеченной (из-за экранирования агглютинатов неагглютинированными эритроцитами или из-за малого количества агглютинатов).
Нарушение временных режимов проведения проб. Начало агглютинации (особенно при проведении проб с моноклональными антителами) бывает заметным в первые секунды от момента смешивания реагирующих сред, однако учет реакции должен проводиться в строго определенное время, т.к. иногда встречаются разновидности антигенов, обладающие слабой агглютинабельностью и дающие позднюю реакцию (разновидности агглютиногена А, реже - В).
Игнорирование необходимости проведения контрольных исследований (например, с сывороткой АВ(IV) группы при определении групповой принадлежности со стандартными геагглютинирующими сыворотками или проб с коллоидами при определении резус-принадлежности).
Повышенная агглютинабельность эритроцитов - может наблюдаться при тяжелых гнойных заболеваниях, ожогах, циррозах печени, аутоиммунных и гематологических заболеваниях.
Снижение агглютинабельности эритроцитов - нередко встречается при лейкозах.
Кровяной химеризм - очень редко встречающееся явление, имеющее место у разнояйцовых близнецов, при пересадке донорского костного мозга или после переливаний (вынужденных) иногруппной, но совместимой крови в больших объемах.
Предупреждение ошибочных результатов исследований заключается в строгом следовании существующим правилам определения групповой и резус-принадлежности, проб на совместимость с обязательным учетом характера заболевания и общего состояния реципиента.
Биологическая проба.
Биологическая проба проводится в обязательном порядке при переливаниях донорской крови, эритроцитсодержащих сред, плазмы, концентратов лейкоцитов, независимо от объема и скорости гемотрансфузии.
Биологическая проба проводится непосредственно перед трансфузией и заключается в 3-кратном переливании по 10-15 мл трансфузионной среды струйно или с максимальной скоростью (2-3 мл в мин.) с интервалами в 5 минут, во время которых осуществляют инфузию солевых растворов во избежание тромбирования иглы. Если во время проведения биологической пробы появляется хотя бы один из симптомов, свидетельствующих о несовместимости трансфузионной среды, ее переливание прекращают и проводят соответствующие мероприятия. К таким симптомам относятся озноб, боли в пояснице и внизу живота, чувство стеснения и боли в груди, тошнота, рвота, тахикардия, снижение артериального давления. Во время операции под общим обезболиванием признаками несовместимости могут быть усиление кровоточивости тканей, снижение артериального давления, увеличение тахикардии, выделение мочи, окрашенной в красный или бурый цвет (в случаях катетеризации мочевого пузыря).
Переливание крови. Показания и противопоказания к переливанию крови. Современные правила переливания крови по группам системы АВ0 и системы резус. Способы и техника переливания крови.
Показания к переливанию крови определялись известными механизмами её действия:
Заместительным.
Гемостатическим.
Иммуностимулирующим.
Дезинтоксикационным.
Используемым для парэнтерального питания.
Однако, как показал накопленный опыт, столь широкое использование гемотрансфузий далеко не всегда оказывалось эффективным, больше того, нередко оказывалось опасным: больной получал с кровью помимо эритроцитов нежизнеспособные лейкоциты, тромбоциты, белки, антигены и антитела.
Повторные переливания крови приводили к аллоиммунизации больных.
В настоящее время основным показанием к переливанию крови является острая массивная кровопотеря не менее 25 – 30 % ОЦК со снижением гемоглобина ниже 70 – 80 г / л , гематокрита – ниже 25 % и возникновением циркуляторных нарушений.
Кроме того, переливание крови показано при шоке и терминальных состояниях, в- редких случаях при обменных переливаниях при гемолитической болезни новорождённых, при операциях, сопровождающихся массивной кровопотерей.
Во всех других случаях следует использовать фракции крови или кровезаменители.
Противопоказания к гемотрансфузии.
Абсолютных противопоказаний к переливанию нет.
Относительные противопоказания:
Острое нарушение мозгового кровообращения.
Недостаточность кровообращения II ст. – III ст.
Гипертоническая болезнь III ст.
Печеночная и почечная недостаточность.
Активный (диссеминированный) туберкулёз лёгких.
Тяжёлая бронхиальная астма.
Аллергические заболевания.
Правила переливания крови.
В настоящее время переливание крови и её компонентов допускается только одноимённой группы и Rh – принадлежности.
В исключительных случаях (по жизненным показаниям) при отсутствии одногруппной крови или её компонентов допускается переливание эритромассы О(I) группы,Rh – отрицательной, но не более 500 мл (за исключением детей!).
При отсутствии одногруппной плазмы реципиенту может быть перелита плазма группы АВ(IV).
Врач, производящий переливание крови или её эритромассы, обязан:
Перед каждым переливанием определить группу крови и Rh – принадлежность реципиента.
Убедившись в пригодности донорской крови, и, заполнив систему, определить группу крови и Rh- принадлежность донора, согласовать с этикеткой на гемоконе.
Поставить пробу на индивидуальную совместимость крови реципиента и донора.
Поставить пробу на резус – совместимость.
Провести пробу на биологическую совместимость.
Остаток крови (10 – 15мл) в гемоконе после гемотрансфузии хранят в холодильнике 48 часов.
В течение 3 х часов после окончания гемотрансфузии у больного измеряют температуру, пульс и АД. На следующее утро производится анализ крови и мочи.
Каждое переливание крови, её фракций, а также кровезаменителей записывается в трансфузионный лист, который находится в истории болезни больного.
Способы и техника переливания крови:
Прямое переливание. Кровь переливается с помощью аппарата непосредственно из вены донора в вену реципиента без использования консерванта.
Из – за опасности инфицирования донора в настоящее время не используется.
Непрямое переливание. Донорская кровь консервируется в гемокон, или ампулу и хранится в холодильнике при t 0 + 4 0 С.
При необходимости используется для переливания без специального подогрева. Непрямое переливание крови и её фракций используется очень широко.
Реинфузия крови: переливание крови больного, излившейся в серозные полости (брюшную, плевральную), при закрытой травме или во время операции. Кровь забирается с помощью специального аппарата или, при отсутствии такого, в экстренных случаях, фильтруется через 8 слоёв марли, добавляется консервант и сразу переливается внутривенно.
Метод очень эффективен.
Противопоказания: повреждение полых органов, нахождение крови в серозной полости более 12 часов, гемолиз крови.
Аутотрансфузия крови. Используется в плановой хирургии, когда за несколько дней до операции у больного берут из вены 400 – 500 мл крови, добавляют консервант, после чего гемокон хранят в холодильнике, а во время операции переливают больному его собственную кровь.
Метод очень перспективен.
Противопоказание: исходная анемия у больного.
Обменные переливания крови – частичное или полное удаление крови из кровяного русла с одновременным возмещением таким же количеством донорской крови.
Показания: гемолитическая желтуха новорождённых, гемотрансфузионный шок, тяжёлые отравления. При этом удаляется и одновременно инфузируется кровь со скоростью 1000 мл за 15 – 20 минут.
Обменные переливания используются редко.
Способы введения крови:
В настоящее время преимущественно используется внутривенное переливание крови.
После постановки проб на совместимость кровь переливают чаще всего в кубитальную вену путём её пункции, реже – через специальную канюлю, поставленную в вену. При необходимости переливание больших обьёмов трансфузионных сред используют постоянный катетер, который ставится в центральную вену (чаще в подключичную).
Обычно используется капельное переливание со скоростью 40 – 60 капель в минуту.
При необходимости срочного замещения ОЦК может использоваться внутривенное струйное переливание крови.
Внутриартериальное нагнетание крови.
Показания: шок III – IV ст., терминальные состояния.
Кровь нагнетается в периферическую артерию, которая предварительно обнажается, под давлением 200 - 220 мм рт. ст. со скоростью 200 мл за 1,5 – 2 минуты. Вводимая под давлением кровь, раздражает ангиорецепторы и обеспечивает восстановление венечного кровотока.
Внутриартериальное, внутрисердечное нагнетание крови проводится очень редко, только в реанимационной практике и во время операций на грудной клетке.
Внутрикостное переливание крови.
В настоящее время практически не используется. Применялось при обширных ожогах, когда периферические вены были недоступны. Переливание проводится в грудину, подвздошную, пяточную кости со скоростью от 5 до 30 капель в минуту.
Помимо осложнений, связанных непосредственно с гемотрансфузией, возможно развитие остеомиелита.
Гемотрансфузионные осложнения, их профилактика, диагностика, принципы лечения. Профилактика гепатита, ВИЧ - инфекции.