- •9.1. Синтез глицеролфосфата и жирных кислот.
- •Синтез жирных кислот
- •9.2. Синтез ацилглицеринов и фосфолипидов.
- •9.3. Распад жиров и фосфолипидов.
- •От образовавшегося b-оксиацил-КоА-производного жирной кислоты отщепляется водород. Эту реакцию катализирует фермент 3-оксоацил-КоА-дегидрогеназа (1.1.1.35), имеющий в активном центре кофермент над:
- •9.4. Превращение жирных кислот в углеводы.
- •9.5. Синтез и превращения других липидов
- •Вопросы для повторения:
- •10.1. Синтез аминокислот.
- •10. 2. Превращения и распад аминокислот.
- •10.3. Связывание избыточного аммиака в растениях.
- •Синтез мочевины
- •10.4. Усвоение растениями азота мочевины при некорневых подкормках.
- •10.5. Восстановление нитратного азота в растениях.
- •10.6. Биохимические процессы симбиотической азотфиксации.
- •10.7. Строение и функции нуклеиновых кислот.
- •Нуклеотидный состав днк и рнк
- •Генетическая роль и строение днк
- •13. Содержание и соотношение азотистых оснований
- •Виды рнк и их строение
- •10.8. Генетический код.
- •10.9. Синтез днк.
- •10.10. Cинтез рнк.
- •10.11. Синтез белков и нуклеотидов.
- •Синтез нуклеотидов
- •10.12. Процессы распада нуклеиновых кислот, нуклеотидов и белков.
- •Распад белков.
- •Лекция 9. Биохимические основы качества растительной продукции.
- •11.1. Фенольные соединения.
- •Полимерные фенольные соединения
- •Меланины
- •11.2. Терпеноидные соединенияи эфирные масла.
- •11.3. Алкалоиды и гликозиды сельскохозяйственных растений.
- •Модульная единица 12. Биохимические основы формирования качества растительной продукции.
- •12.1. Биохимические основы формирования качества растительной продукции.
- •Зерновые злаковые культуры
- •15. Фракционный состав белков зерна злаковых культур
- •17. Действие азотных удобрений на урожайность
- •Зернобобовые культуры.
- •18. Содержание незаменимых аминокислот в белках зерна
- •19. Влияние удобрений на урожайность и качество зерна сои
- •Масличные культуры
- •22. Действие удобрений на урожайность и качество семян подсолнечника
- •Картофель
- •23. Влияние различных форм калийных удобрений на урожай
- •Корнеплоды
- •24. Влияние удобрений на содержание сахаров в корнеплодах
- •Кормовые травы
- •Овощные культуры
- •Плодово-ягодные культуры
Лекция 6. Обмен липидов.
Аннотация. Излагаются механизмы синтеза, превращений и распада основных групп липидов в организмах. Даются особенности действия ферментов и ферментных комплексов, катализирующих эти биохимические реакции. Указывается локализация реакций синтеза и превращений конкретных липидов. Рассматриваются биохимические механизмы превращения липидов в углеводы и включения продуктов распада липидов в дыхательные реакции.
Ключевые слова. Синтетаза жирных кислот, ацилпереносящие белки, ацетил-кофермент А, пропионилкофермент А, малонилкофермент А, метилмалонилкофермент А, оксигеназы (десатуразы), глицеролфосфатацилтрансферазы, ЦДФ-этаноламин, ЦДФ-холин, липазы, α-окисление жирных кислот, β-окисление жирных кислот, карнитин, глиоксилатный цикл, глиоксисомы, глюконеогенез, фосфолипазы, циклоартенол.
Рассматриваемые вопросы:
Синтез глицеролфосфата и жирных кислот.
Синтез ацилглицеринов и фосфолипидов.
Распад жиров и фосфолипидов.
Превращение жирных кислот в углеводы.
Синтез и превращения других липидов.
Модульная единица 9. Обмен липидов.
Цели и задачи изучения модульной единицы. Изучить биохимические механизмы синтеза и превращений основных групп липидов. Научить студентов использовать знания по обмену липидов для прогнозирования биохимических процессов в растениях при обосновании технологий выращивания сельскохозяйственных культур и оценке качества растительной продукции.
9.1. Синтез глицеролфосфата и жирных кислот.
Главными запасными формами липидов растений являются жиры, которые интенсивно синтезируются в хлоропластах, семенах и плодах. Особенно много накапливается жиров в семенах масличных растений. Изучение биохимических процессов в созревающих семенах масличных растений показало, что увеличение в них содержания жиров сопровождается понижением концентрации сахаров. При введении в созревающие семена сахаров, меченных радиоактивным изотопом углерода 14С, радиоактивная метка довольно быстро обнаруживалась в составе ацилглицеринов жира. Это послужило доказательством, что синтез жира осуществляется из углеводов. В дальнейшем было выяснено, что непосредственными предшественниками в синтезе ацилглециринов жира являются активированные формы жирных кислот и фосфорилированный глицерин, которые образуются из продуктов углеводного обмена.
Синтез глицеролфосфата.Исходными веществами для синтеза глицеролфосфата служат продукты фотосинтеза и дыхания 3-фосфоглице-риновый альдегид и фосфодиоксиацетон. Они образуются в цикле Кальвина при фотосинтезе, на стадии гликолиза при дыхании, а также в реакциях пентозофосфатного цикла. Непосредственно глицеролфосфат синтезируется в результате восстановления фосфодиоксиацетона ферментомглицерол-3-фосфатдегидрогеназой:
Н / С=О СН2ОН СН2ОН |
| | СНОН
DС=О + НАД×Н
+Н+ ¾®СНОН
+ НАД+ |
| | СН2О(Р) СН2О(Р) СН2О(Р) 3-фосфогли- фосфодиокси- цериновый
ацетон глицерол-3-фосфат альдегид
Синтезированный из углеводных продуктов глицерол-3-фосфат затем используется для синтеза ацилглицеринов жира, фосфолипидов и гликолипидов.
Синтез жирных кислот
В опытах по изучению синтеза жирных кислот в созревающих семенах масличных растений выяснено, что наиболее легко они образуются из производных уксусной кислоты. На этой основе было сформулировано предположение, что жирные кислоты синтезируются в результате реакций конденсации двууглеродных органических соединений. В дальнейшем с использованием меченных 14С биохимических предшественников было показано, что основным органическим соединением, непосредственно участвующем в синтезе жирных кислот, является ацетилкофермент А, который образуется как продукт дыхательных реакций или реакций распада липидов и аминокислот.
На первом этапе происходит активирование ацетилкофермента А путем превращения его в малонилкофермент А. Эту реакцию катализирует фермент ацетил-КоА-карбоксилаза (6.4.1.2), содержащий в активном центре группировку биотина. В состав фермента также входят катионы Mn2+. Карбоксилирование ацетил-КоА сопряжено с гидролизом АТФ:
СН3–С~S–КоА+СО2+Н2О+АТФ ¾®НООС–СН2–С~S–КоА+АДФ + Н3РО₄
|| ||
О О
ацетил-КоА малонил-КоА
В дальнейшем процесс синтеза жирной кислоты осуществляется с участием мультиферментного комплекса, называемого синтетазой жирных кислот. Ферментный комплекс растворён в жидкой фазе цитозоля и в его центральной части находятся молекулы специфического белка, способного присоединять и переносить ацильные остатки в ходе синтеза жирной кислоты. Этот белок получил название ацилпереносящего белка (АПБ). К одному из сериновых остатков ацилпереносящего белка через остаток фосфорной кислоты присоединена группировка витамина пантотеновой кислоты, с которой связан остаток тиоэтаноламина. В связи с тем, что остаток тиоэтаноламина содержит активную тиоловую группу, ацилпереносящий белок сокращённо обозначают HS-АПБ. С помощью АПБ поддерживается рост цепи синтезируемой жирной кислоты и её переход от одного фермента к другому в пределах мультиферментного комплекса. Строение ацилпереносящего белка можно представить в виде следующей схемы:
Н Н НО СН3 ОН
| | | | |
НS–СН2–СН2–N–С–СН2–СН2–N–С–С–С–СН2–О–Р–О–Ser–АПБ
|| || | | ||
О О Н СН3 О
тиоэтаноламин пантотеновая кислота
Под действием фермента АПБ-ацетилтрансферазы (2.3.1.38) остаток уксусной кислоты от ацетил-КоА переносится на АПБ:
(2)
СН–С~S–КоА + НS–АПБ ¾® СН3–С~S–АПБ + НS–КоА
|| ||
О О
ацетил-КоА ацетил-АПБ
С участием другого фермента АПБ-малонилтрансферазы (2.3.1.39) на АПБ также переносится остаток малоновой кислоты от малонил-КоА:
(3)
НООС–СН2–С~S–КоА + НS–АПБ ¾® НООС–СН2–С~S–АПБ + НS–КоА
|| ||
О О
малонил-КоА малонил-АПБ
В следующей реакции, происходящей в мультиферментном комплексе синтезы жирных кислот, под действием фермента 3-оксоацил-АПБ-синтазы (3.3.1.41) происходит образование из двууглеродного и трёхуглеродного радикалов ацетил-АПБ и малонил-АПБ четырёхуглеродного фрагмента, соединённого с АПБ. При этом в ходе реакции молекула малонил-КоА декарбоксилируется и в качестве продукта данного превращения выделяется та же молекула СО2, которая вошла в состав малонил-КоА в результате карбоксилирования ацетил-КоА: (4)
СН₃–С~S–АПБ + НООС–СН2–С~S–АПБ®СН3–С–СН2–С~S–АПБ + СО2 + НS-АПБ
|| || || ||
О О О О
ацетил-АПБ малонил-АПБ ацетоацетил-АПБ
Таким образом, карбоксилирование ацетил-КоА можно рассматривать как реакцию активирования ацетильного радикала для переноса на соответствующий акцептор, котор
ый представляет собой ацильный радикал, соединённый с АПБ в ферментном комплексе синтетазы жирных кислот.
Образовавшееся 3-оксоацилпроизводное далее подвергается восстановлению под действием фермента 3-оксоацил-АПБ-редуктазы (1.1.1.100), который использует в качестве донора электронов и протонов восстановленные динуклеотиды НАДФ×Н. В результате восстановительной реакции синтезируется 3-оксипроизводное:
(5)
СН3–С–СН2–С~S–АПБ + НАДФ×Н+Н+®СН3–СН–СН2–С~S–АПБ+НАДФ+
|| || | ||
О О ОН О
ацетоацетил-АПБ 3-оксибутирил-АПБ
Как мы уже знаем, источниками образования восстановленных динуклеотидов НАДФ×Н служат фотосинтетическое фосфорилироввание или реакции пентозофосфатного цикла.
В следующей реакции от 3-оксибутирил-АПБ отщепляется молекула воды с образованием a,b-ненасыщенного производного кротонил-АПБ. Данное превращение катализирует фермент кротонил-АПБ-гидратаза (4.2.1.58):
(6)
СН3–СН–СН2–С~S–АПБ ® СН3–СН=СН–С~S–АПБ + Н2О
| || ||
ОН О О
3-оксибутирил-АПБ кротонил-АПБ
Ненасыщенное производное восстанавливается ферментом еноил-АПБ-редуктазой (1.3.1.10), который использует в качестве донора электронов и протонов восстановленные динуклеотиды НАДФ×Н:
(7)
СН3–СН=СН–С~S–АПБ+НАДФ×Н+Н+®СН3–СН2–СН2–С~S–АПБ+НАДФ+
|| ||
О О
кротонил-АПБ бутирил-АПБ
На следующем этапе синтеза жирной кислоты бутирил-АПБ становится акцептором ацетильного радикала, переносимого от малонил-АПБ, в результате осуществляется уже синтез шестиуглеродного 3-оксоацил-АПБ. Затем происходят реакции 5-7, в ходе которых синтезируется восстановленное шестиуглеродное производное гексаноил-АПБ. Затем оно также становится акцептором ацетильного радикала, переносимого от малонил-АПБ, снова повторяются реакции 5-7, дающие уже восьмиуглеродное восстановленное производное, связанное с АПБ. По аналогичной схеме указанные реакции повторяются до тех пор, пока не синтезируется полностью углеводородная цепь жирной кислоты, которая далее вследствие ослабления связи с АПБ переносится на кофермент А:
R–С~S–АПБ + НS–КоА®R–С~S–КоА + НS–АПБ
|| ||
О О
ацил-АПБацил-КоА
Длина синтезированной углеводородной цепи жирной кислоты определяется природой ферментного комплекса синтетазы жирных кислот, а в свою очередь природа ферментного комплекса зависит от генотипа организма. Как мы видим, в указанных выше реакциях синтез жирной кислоты происходит в результате переноса на восстановленный акцептор двууглеродного фрагмента от малонил-АПБ, имеющего трёхуглеродный радикал. При этом каждый такой перенос сопровождается выделением СО2. Вначале акцептором двууглеродного фрагмента служит ацетил-АПБ, затем бутирил-АПБ, гексаноил-АПБ и т.д. В общем виде ход удлинения углеродной цепи жирной кислоты в процессе её синтеза можно показать в виде следующей схемы:
С2+ С3 ¾®С4 + С1
С4 + С3 ¾®С6+ С1
С6+ С3 ¾®С8+ С1и т. д.
Согласно такой схеме синтеза в образующихся жирных кислотах всегда содержится чётное число углеродных атомов.
Учитывая, что исходным веществом для синтеза жирных кислот является ацетил-КоА и на отдельных этапах синтеза используются молекулы АТФ (при образовании малонил-КоА), восстановленных динуклеотидов НАДФ×Н и воды, можно записать суммарное уравнение синтеза насыщенной жирной кислоты на примере пальмитиновой кислоты:
8СН3–С~S–КоА + 7АТФ + 14НАДФ×Н + 14Н++ Н2О¾®
||
О
→ СН3(СН₂СН₂)7СООН + 8НS–КоА + 7АДФ + 7Н3РО4 + 14НАДФ+
В ходе синтеза молекулы пальмитиновой кислоты семь раз осуществляется перенос на акцептор двууглеродного фрагмента от малонил-АПБ, при образовании каждой молекулы которого происходит гидролиз АТФ. При этом на каждом этапе процесса удлинения углеводородной цепи жирной кислоты дважды повторяются реакции восстановления с участием восстановленных динуклеотидов НАДФ×Н.
У растений, животных и бактерий преобладают жирные кислоты с чётным числом углеродных атомов. Однако, в клетках некоторых бактерий в значительном количестве синтезируются жирные кислоты с нечётным числом углеродных атомов. Это обусловлено тем, что в клетках бактерий наряду с ацетилкоферментом А важным ключевым метаболитом является пропионилкофермент А, который вместо ацетил-КоА может связываться с ацилпереносящим белком и вступать во взаимодействие с малонил-АПБ, образуя пятиуглеродное 3-оксопроизводное:
СН3–СН2–С~S–АПБ+НООС–СН2–С~S–АПБ®СН3–СН2–С–СН2–С~S–АПБ+НS–АПБ
|| || ↓ || ||
О О СО₂ О О
пропионил-АПБ малонил-АПБ 3-оксопентаноил-АПБ
Затем пятиуглеродное 3-оксопроизводное восстанавливается, проходя такие же стадии превращений, которые представлены в реакциях 5-6 синтеза жирных кислот с участием ферментного комплекса синтетазы жирных кислот. Восстановленный пятиуглеродный фрагмент далее становится акцептором нового двууглеродного фрагмента от малонил-АПБ, после чего снова проходят восстановительные реакции, приводящие к синтезу семиуглеродного восстановленного фрагмента, который снова становится акцептором следующего двууглеродного фрагмента и т.д. Из представленного механизма синтеза видно, что на конечном этапе образуется восстановленная углеводородная цепь жирной кислоты с нечётным числом углеродных атомов. Синтез жирной кислоты с нечётным числом углеродных атомов можно представить в виде следующей схемы:
С3 + С3 ® С5 + С1
С5 + С3 ® С7 + С1
С7 + С3 ® С9 + С1 и т.д.
В составе некоторых разновидностей липидов бактерий, птиц и растений найдены жирные кислоты, имеющие боковые ответвления в их углеродной цепи. Как установлено, такие жирные кислоты могут синтезироваться с участием в качестве акцептора двууглеродных фрагментов разветвлённых ацильных производных, образующихся при распаде аминокислот с разветвлённой углеродной цепью – валина, лейцина, изолейцина:
О О О
// // //
СН3–СН–С~S–КоА СН3–СН–СН2–С~S–КоА СН3–СН2–СН–С~S–КоА
| | |
СН3 СН3 СН3
производное валина производное лейцина производное изолейцина
Универсальным донором разветвлённых ацильных радикалов при синтезе жирных кислот является пропионилкофермент А, который, под-вергаясь карбоксилированию, превращается в метилмалонилкофермент А:
СН3
|
СН3–СН2–С~S–КоА+СО2+Н2О+АТФ®НООС–СН–С~S–КоА+АДФ+Н3РО4
|| ||
О О
пропионил-КоА метилмалонил-КоА
Затем ацильный радикал метилмалонил-КоА переносится на ацилпереносящий белок ферментного комплекса синтетазы жирных кислот и участвует далее в синтезе жирных кислот в качестве донора разветвлённого ацильного радикала:
СН3 СН3
| |
СН3–СН2–С~S–АПБ+НООС–СН–С~S–АПБ ® СН3–СН2–С–СН–С~S–АПБ+НS–АПБ
|| || ↓|| ||
О О СО2О О
пропионил-АПБ разветвлённое 3-оксопроизводное
После восстановления разветвлённого оксопроизводного образуется восстановленный ацильный радикал, имеющий боковое метильное ответвление у второго углеродного атома. Он далее служит акцептором следующего двууглеродного фрагмента с боковым метильным радикалом, донором которого служит метилмалонил-АПБ. Таким образом, с участием метилмалонильного радикала после каждого акта удлинения ацильного радикала углеродная цепь синтезируемой жирной кислоты удлиняется на два углеродных атома, а у каждого чётного углеродного атома имеется боковой метильный радикал.
Если к исходному акцептору с радикалом Rпроисходит последовательное присоединение четырёх двууглеродных фрагментов с боковым метильным радикалом и на каждом этапе их присоединения осуществляется восстановление полученных 3-оксопроизводных, строение синтезированной жирной кислоты можно записать в виде следующей формулы:
О
8 7 6 5 4 3 2 1//
R–СН–СН2–СН–СН2–СН–СН2–СН–С~S–АПБ
| | | |
СН3 СН3 СН3 СН3
В составе растительных жиров и липидов клеточных мембран преобладают ненасыщенные жирные кислоты. Они синтезируются из насыщенных кислот путём их дегидрогенизации в аэробных условиях, то есть с участием кислорода. В анаэробных условиях происходит синтез насыщенных кислот. Кроме кислорода, важнейшими соединениями, необходимыми для синтеза ненасыщенных жирных кислот, являются восстановленные динуклеотиды НАДФ×Н. На свету в образовании ненасыщенных кислот участвует ферредоксин.
Процесс дегидрогенизации насыщенных жирных кислот катализиру-ют ферменты оксигеназы, которые также называютдесатуразами. Различают два вида десатуразIиII. Десатуразы первого типа имеются в клетках растений, животных, грибов, простейших организмов. Они локализованы в цитозоле и способны инициировать образование олеиновой кислоты из стеариновой, образующей соединение с коферментом А – стеароил-КоА:
О О
// //
СН3(СН2)16С~S–КоА+НАДФ×Н+Н++О2®СН3(СН2)7СН=СН(СН2)7С~S–КоА+НАДФ+
↓
Стеароил-КоА 2Н₂О олеоил-КоА
Синтез полиненасыщенных жирных кислот в клетках растений осуществляют десатуразы II, локализованные в эндоплазматическом ретикулуме, так как они образуются с участием полирибосом, связанных с мембранами эндоплазматического ретикулума. В клетках человека и животных превращения олеоил-КоА в линолеоил-КоА не происходит, поэтому полиненасыщенные жирные кислоты (линолевая, липоленовая) для этих организмов являются незаменимыми компонентами пищи.
Линолевая кислота, имеющая две двойные связи, образуется в результате дегидрогенизации олеоил-КоА по такому же механизму, как и синтез олеоил-КоА из стеароил-КоА. Далее по указанному механизму происходит дегидрогенизация линолеоил-КоА с образованием линоленоил-КоА. У животных в клетках печени в результате дегидрогенизации линолеоил-КоА синтезируется производное арахидоновой кислоты–арахидоноил-КоА.
В связи с тем, что для синтеза ненасыщенных жирных кислот необходимы кислород и восстановленные динуклеотиды НАДФ×Н, при их недостатке образование данных кислот ослабляется. Так, например, происходит в условиях повышенных температур, когда снижается растворимость СО2в жидкой физиологической среде. При избыточном азотном питании увеличивается доля восстановленных динуклеотидов НАДФ×Н, затрачиваемых на восстановление нитритов и синтез аминокислот, и меньше участвует в дегидрогенизации насыщенных жирных кислот, вследствие чего синтез ненасыщенных жирных кислот уменьшается.