Бактерицидные свойства фагоцитов крови при сочетанной и ожоговой травмах. Учебное пособие

31

Таблица 4 - Индукторы синтеза ИЛ-8 (Кетлинский С.А., Симбирцев А.С., 2008)

Синтез ИЛ-8 активируется и другими медиаторами воспаления, например С1q компонентом комплемента и брадикинином (Кетлинский С.А.,

Симбирцев А.С., 2008; DeForge L.E. еt al., 1992; Xiao S. еt al., 2001).

Повреждение сосудов или активация эндотелия патогенами ведет к активации внутрисосудистого свертывания и микротромбообразованию. Синтез ИЛ-8 клетками эндотелия активируется тромбином и фибриногеном, продуктами деградации фибрина и фибриногена (Marin V. еt al., 2001). Отрицательными эндогенными регуляторами синтеза ИЛ-8 являются стероидные гормоны

(Mukaida N. еt al., 1994), ИФНα (Aman M. et al., 1993), ИЛ-10 (Standiford T.J. et al., 1996).

При тяжелой сочетанной травме Bogner V. et al. (2009) выявили изменения уровня ИЛ-8 в первые 90 минут после травмы и показали, что высокий уровень цитокина коррелировал с полиорганной недостаточностью, сепсисом и выживаемостью. Liener U.C. et al. (2002) также показали связь между тяжестью травмы и концентрацией ИЛ-8: при ISS≥32 уровень ИЛ-8 резко возрастал уже через 30 минут после травмы и сохранялся через 2 и 4 часа после инцидента. В течение следующих 20 часов наблюдалось постепенное снижение концентрации цитокина. У пострадавших с ISS≤32 значительных изменений в содержании ИЛ-8 не наблюдалось.

При тяжелой сочетанной травме вслед за первичной активацией клеток– продуцентов ИЛ-8 следует вторая волна его синтеза под влиянием эндогенных медиаторов, источниками которых являются сохраняющиеся очаги повреждения тканей. По нашим данным уровень ИЛ-8 у всех пострадавших с СТ, сопровождавшейся шоком II и III степени с положительным прогнозом исхода (ISS>20), при поступлении (30-90 мин. после травмы) превышал значение нормы. У пациентов без осложнений отмечен выраженный рост концентрации ИЛ-8 через 1 сутки после травмы в отличие от пациентов с гнойными осложнениями. Начиная с 3 суток наблюдения концентрация цитокина плавно снижалась у всех пациентов, приближаясь к нормальным значениям на 10 сутки после травмы (рис.11).

Об активирующем влиянии ИЛ-8 на бактерицидные свойства гранулоцитов свидетельствует выявленная положительная зависимость между содержанием ИЛ-8 и хемилюминесценцией НГ у пациентов с сочетанной травмой в различные сроки наблюдения (r=0,754, р< 0,05).

В то же время, по данным Гребнева А.Р. (2011), у пострадавших с тяжелой сочетанной травмой повышенное содержание ИЛ-8 в крови наблюдалось в первые сутки после травмы, а пик продукции – на 10-15 сутки. У пострадавших с тяжелой ожоговой травмой мы наблюдали иную динамику концентрации ИЛ-8 в крови: увеличение концентрации происходило через 1 сутки после травмы и было более выраженным у умерших пострадавших. Дальнейшее увеличение содержания цитокина в сыворотке крови наблюдалось только у пациентов с тяжелым сепсисом и летальным исходом и достигало максимума на 10 сутки наблюдения (рис. 12).

33

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Тяжёлые повреждения различной этиологии, сопровождающиеся развитием шока, создают предпосылки для снижения противоинфекционной защиты и генерализации инфекции, повышения проницаемости гистогематических барьеров, нарушения нейроэндокринных взаимодействий и расстройства обмена веществ. Эффективность противоинфекционной защиты в значительной степени зависит от фагоцитарной активности моноцитов и нейтрофильных гранулоцитов крови и эффективности различных этапов миелопоэза у пострадавших. Неспецифические механизмы быстрого распознавания патогенов и мобилизация бактерицидного потенциала нейтрофильных гранулоцитов при сочетанной и ожоговой травме реализуются посредством активации направленной миграции клеток, секреции протеолитических ферментов и эндогенных антимикробных пептидов, продукции активных форм кислорода. Интенсивность мобилизации микрофагоцитов из костного мозга зависит от тяжести повреждений, полученных пострадавшими, наличия патогенов, компетентности костномозгового кроветворения. Комплексный анализ тяжести механической и ожоговой травмы и лабораторных показателей функционального состояния фагоцитов крови пострадавших позволяет определять риск развития тяжелых гнойных осложнений и совершенствовать лечение пострадавших с сочетанной и ожоговой травмой.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1.Азолов В.В., Жегалов В.А., Дмитриев Г.И. Организация неотложной медицинской помощи при групповых и массовых ожогах // Нижегородский медицинский журнал. 2004. Приложение «Комбустиология». С. 29.

2.Акалович С.Т., Нашкевич Н.Н., Кудин А.П., Астапов А.А., Войтенок Н.Н. Содержание растворимого рецептора

TNFp55, альфа-дефенсинов и изоформ интерлейкина 8, IL-877 и IL-872 в крови детей // Медицинская Иммунология.- 2005, Т.7, № 5-6.- С. 575-578.

3.Арискина О.Б. Функциональная активность мононуклеаров и нейтрофильных гранулоцитов периферической крови как показатель эндогенной интоксикации при травматической болезни. - Автореф. диссерт. на соиск. уч.ст. к.б.н.,

СПб. - 2005. – 21 с.

4.Арутюнян А.В., Дубинина Е.Е., Зыбина Н.Н. Методы оценки свободнорадикального окисления и антиоксидантной системы организма. Методические рекомендации.- СПб., 2000.- 103 с.

5.Багненко С.Ф. Пивоварова Л.П., Малышев М.Е., Арискина О.Б., Осипова И.В., Чикин А.Е., Ганин А.С. Иммунологические маркеры воспаления и сепсиса при сочетанной механической травме // Инфекции в хирургии .- 2012.-.Т.10. - № 1.-С22-27.

6.Белоконева К.П. Прогностическое значение лактоферрина и цитокинов в оценке неблагоприятных исходов у больных с Q-образующим инфарктом миокарда, умерших от острой сердечной недостаточности // Кардиология:

Новости, мнения, обучение.- 2016. - №3(10). – С. 75-82.

7.Будихина А.С., Пинегин Б.В. Дефензины - мультифункциональные катионные пептиды человека // Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2008. -№2.- С. 31–40.

8.Владимиров Ю.В., Азизова О.А. Свободные радикалы в живых системах // Итоги науки и техники. Биофизика.

–М:ВИНИТИ, 1991. – Т.29 – 180 с.

9.Галкин А.А., Демидова В.С. Нейтрофилы и синдром системного воспалительного ответа // Раны и раневые инфекции. Журнал им. проф. Б.М. Костюченка.- 2015.- №2.-С.25-31.

10.Гребнев А.Р. Особенности течения травматической болезни при тяжелой сочетанной травме с повреждением конечностей при применении тактики многоэтапного хирургического лечении // Автореф. диссерт. к.м.н.- Спб.-2011.- 24с.

11.Гусев Е.Ю. Зотова Н.В., Журавлева Ю.А., Черешнев В.А. Физиологическая и патогенетическая роль рецепторов

–мусорщиков у человека. // Медицинская иммунология.- 2020.- Т.22.- №1.- С.7-48.

12.Гэллин Джон И. (John J. Gallin) ГЛАВА 56, С. 122-134.-Нарушение функции фагоцитарной системы / Внутренние болезни - Книга 2 - Е. Браунвальд, К. Дж. Иссельбахер, Р. Г. Петерсдорф, 1993.

34

13. Долгушин И.И. Роль нейтрофилов в регуляции антимикробной резистентности// Вестн. Российской Академии Медицинских наук. – 2002. - № 3. – С. 16-21.

14.Доценко В.Л. Нешкова Е.А., Ругенс Э., Йохансен X., Блохина Т.Б., Яровая Г.А. Действие лейкоцитарной эластазы на высокомолекулярный кининоген плазмы крови человека в присутствии альфа-1-протеиназного ингибитора. анализ протеолитической деградации // Вопросы медицинской химии. – 2001.- Т. 47, №1.- С. 55-71.

15.Жаркова М.С. Сочетание белков и пептидов системы врожденного иммунитета и соединений различной химической природы в реализации их антибиотических свойств. Автореф. диссерт. на соискание к.б.н., СПб., 2016. – 222с.

16.Закирова А.Н., Мингазетдинова Л.Н., Камилов Ф.Х. Антиоксидант церулоплазмин: влияние на перекисное окисление липидов, гемореологию и течение стенокардии // Терапевт. архив. -1994. Т. 66. - № 9. - С. 24 - 28.

17.Зенков Н.К., Ланкин В.З., Меньщикова Е.Б. Окислительный стресс: Биохимический и патофизиологический аспекты. М.: МАИК «Наука/Интерпериодика», 2001.-.343 с.

18.Кетлинский С.А., Симбирцев А.С. Цитокины.- СПб.: ООО «Издательство Фолиант», 2008.- 552с.

19.Киселева Е.П. Новые представления о противоинфекционном иммунитете // Инфекции и иммунитет. – 2011.-

.№11.- С.9-14.

20.Ковальчук Л.В. Ганковская Л.В., Лавров В.Ф., Баркевич О.А., Лотте В.Д. Противогерпетический эффект комплекса природных цитокинов и противомикробных пептидов // Медицинская иммунология. - 2004. – Т.6, - № 3-5. - С. 234.

21.Кокряков В.Н., Ковальчук Л.В., Алешина Г.М., Шамова О.В. Катионные противомикробные пептиды как молекулярные факторы иммунитета: мультифункциональность //Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. – 2006. - № 2. – С. 98-105.

22.Крутиков М.Г. Фармакокинетика антибактериальных препаратов у обожженных [Электронный ресурс]

Интернет-журнал «Комбустиология», 2003, 16-17. URL: www.burn.ru

23.Лебедев КА., Понякина И.Д. Иммунограмма в клинической практике / М. : Наука, 1990.-.224 С.

24.Луговская С.А., Морозова В.Т., Почтарь М.Е., Долгов В.А. Лабораторна гематология. 3-е издание,исправленное

идополненное – М.-Тверь: ООО « Издательство «Триада»,-2014.-.218 с.

25.Матвеев С.Б. Смирнов С.В., Тазина Е.В., Шахламов. Годков М.А., Борисов В.С. Динамика эндогенной интоксикации у пациентов с обширными ожогам // Клиническая лабораторная диагностика.- 2013.- №2.- С. 10-12.

26.Махновский А.И., Эргашев О. Н., Барсукова И. М. и др. Прогностические критерии для обоснования хирургической и эвакуационной тактики у пациентов с политравмой Скорая медицинская помощь. 2020. Т. 21. № 3. С. 18-23.

27.Махновский А.И., Эргашев О. Н., Барсукова И. М. и др. Хирургическая и эвакуационная тактика у пациентов с политравмой в травмоцентрах II и III уровня Журнал "Неотложная хирургия" им. И.И. Джанелидзе, 2020. - № 1. - С. 2834

28.Маянский А.Н., Маянский Д.Н. Очерки о нейтрофиле и макрофоге / Новосибирск.-1989.- 271 с.

29.Миллер А.В. Механизмы праймирования респираторного взрыва нейтрофилов. Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук, 2004.-22 c.

30.Мишланов В.Ю. Дефензины и другие противомикробные пептиды: роль нарушений белоксинтезирующей способности нейтрофилов в патогенезе заболеваний органов дыхания // Пульмонология. 2014. №3. С.104-112.

31.Молдогазиева Н. Т., Мохосоев И. М., Мельникова Т. И., Завадский С. П., Кузьменко А. Н., Терентьев А. А. Двойственная природа активных форм кислорода, азота и галогенов: их эндогенные источники, взаимопревращения и способы нейтрализации Успехи биологической химии, т. 60, 2020, С. 123–172.

32.Назаров П.Г. Реактанты острой фазы воспаления. - СПб. : Наука, 2001. – 422 с.

33.Нестерова И.В, Н.В. Колесникова, Г.А. Чудилова, Ломатидзе Л.В., Ковалева С.В., Евглевский А.А., НГуен Т.З.Л. Новый взгляд на нейтрофильные гранулоциты: переосмысление старых догм. Часть 1 // Инфекция и иммунитет. - 2017.

Т 7, №3.- С.219-230.

34.Нестерова И.В., Швыдченко И.Н., Роменская В.А. Фенотипические и функциональные характеристики нейтрофильных гранулоцитов при воспалительных заболеваниях гастродуоденальной зоны // Российский иммунологический журнал.- 2008.-Т.2 (11).- №4.- С. 433-439.

35.Парфенов В.Е. и соавт. Организация работы травмоцентра в условиях массового поступления пострадавших с тяжелой сочетанной травмой: учебно-методическое пособие СПб.: СПб НИИ СП им. И.И. Джанелидзе, 2020. - 20 с.

36.Пивоварова Л.П., Малышев М.Е., Арискина О.Б., Осипова И.В., Чикин А.Е., Афанасьев А.А. Иммунологические критерии развития сепсиса при тяжёлой механической травме /Материалы всероссийской науч.-практич. конф.» «Совершенствование медицинской помощи больным с нейротравмой и пострадавшим в ДТП» совместно с науч.- практич. конф. «Скорая медицинская помощь, 2011», 1-2 декабря 2011г./ СПб.-.2011. – С.143-144.

37.Пивоварова Л.П., Арискина О.Б., Малышев М.Е., Осипова И.В., Лапшин В.Н., Страхов И.А., Сокорнов И.А. Оксидантная и антиоксидантная активность крови у пострадавших с травматическим шоком // Российский иммунологический журнал .-Т. 2 (11).- № 2-3.-2008.-С.183.

38.Пивоварова Л.П., Крылов К.М., Шлык И.В., Логинова М.П., Арискина О.Б., Осипова И.В., Кладухина Н.А., Сорокина Е.В., Разумова Т.В., Малышев М.Е. Пособие для врачей. Клинико-иммунологические критерии инфекционных осложнений при ожоговой травме // СПб НИИ корой помощи им. И.И. Джанелидзе. СПб, 2005, 53с.

39.Пивоварова Л.П., Осипова И.В., Арискина О.Б., Малышев М.Е.. Содержание в крови дефенсин-положительных нейтрофильных гранулоцитов при сочетанной и ожоговой травме / Материалы XVI Всероссийск. науч.форума с междунар.участием Дни иммунол. В СПб 5-8 июня 2017 г. // Медицинская иммунология.- 2017.-Т.19.- Специальный выпуск.-С.233.

40.Пивоварова Л.П., Осипова И.В., Арискина О.Б., Малышев М.Е. Содержание в крови клеток, экспрессирующих

35

адгезины и селектины, у пострадавших с травматическим шоком // Медицинская иммунология.- 2017.-Т.19.- Специальный выпуск.-С.233.

41.Пивоварова Л.П., Фролов Г.М., Бесаев Г.М., Арискина О.Б., Ассур М.В., Гуйда О.Г., Кладухина Н.А., Логинова М.П., Осипова И.В., Романов В.А., Разумова Т.В., Сорокина Е.В. Методика выявления клинически значимых форм иммунодефицита при травмах различной степени тяжести /Методические рекомендации. Коллектив авторов:-

Спб.,1999.-12с.

42.Программированная клеточная гибель / Под ред. проф. В.С. Новикова.- СПб: «Наука», 1996. - 276 С.

43.Северин Е.С./ Биохимия: учебник для вузов, 5-е изд.,. - 2009. - 768 с. Особенности метаболизма фагоцитирующих клеток.- С. 664-667.

44.Селезнев С.А., Багненко С.Ф., Шапот Ю.Б., Курыгин А.А. Травматическая болезнь и ее осложнения / Руководство для врачей. СПб.: Политехника, 2004. - 414 с.

45.Симбирцев А.С. Цитокины в патогенезе и лечении заболеваний человека / Издательство Фолиант (мед.) 2018.-

512с.

46.Тулупов А.Н., Дулаев А.К., Громов М.И., Пивоварова Л.П., Лапшин В.Н., Синенченко Г.И., Никитин А.В., Федоров А.В., Маркелова Е.В., Арискина О.Б., Разумова Н.К. Эффективность дезоксирибонуклеата натрия в комплексном лечении пострадавших с тяжелой сочетанной травмой: проспективное рандомизированное плацебо контролируемое исследование // Политравма.- 2019.- №4.- С.6-14.

47.Тулупов А.Н. и соавт. Хирургия тяжелых сочетанных повреждений: атлас Под. Ред. профессора В.Е. Парфенова и профессора В.Е. Тулупова. – СПб.: ЭЛБИ-СПб, 2018. – 458 с.

48.Тулупов А.Н. и соавт. Торакоабдоминальная травма СПб.:Фолиант, 2016. – 312с.

49.Тулупов А.Н. и соавт. Инновационные организационные и лечебно-диагностические технологии при лечении пострадавших с тяжелой сочетанной травмой СПб.: СПб НИИ СП им. И.И. Джанелидзе, 2020. – 80 с.

50.Хромов А. А., Линник С. А. Инфекционные осложнения у больных с множественной и сочетанной травмой // Фундаментальные исследования. - 2015. - № 1. - с. 1245-1249.

51.Цибин Ю.Н. Многофакторная оценка тяжести травматического шока в клинике // Вестник хирургии им.

И.И.Грекова, 1980. Т.125.-№9. С. 62-67.

52.Черешнев В.А., Юшков Б.Г., Климин В.Г., Лебедева Е.В. Иммунофизиология . – Екатеринобург.: УрО РАН, 2000. -259с.

53.Шамова О.В., Орлов Д.С., Кокряков В.Н., Корнева Е.А. Антимикробные пептиды в реализации различных защитных функций организма //Мед. Академический Журнал.-2013.- Т.13.-.№3.-С.42-52.

54.Шень Н.П. Ожоги у детей. М.: Триада-Х. 2011. 148 с.

55.Эндогенные антимикробные пептиды и белки: / Endogenic antimicrobial peptides and proteins: 369. www. Biochemmack.ru. available 14.04.2013 (in Russian).

56.Ярилин А.А. Иммунология.-2010.-859с.

57.Яровая Г.А. Свойства и клинико-диагностическое значение определения эластазы из панкреатической железы и полиморфноядерных лейкоцитов // Лабораторная медицина. – 2006.-№ 8.- С. 11–8.

58.Aman M. J., Rudolf G., Goldschmitt J., Aulitzky W. E., Lam C., Huber C., Peschel C. Type-I interferons are potent inhibitors of interleukin-8 production in hematopoietic and bone marrow stromal cells //Blood.- 1993.- Vol. 82.- № 8. P. 23712378.

59.Arpinati M, Green C. L., Heimfeld S., Heuser J. E., Anasetti C. Granulocyte-colony stimulating factor mobilizes T helper 2-inducing dendritic cells // Blood.- 2000.- Vol. 95.- № 8.-Р.2484-2490.

60.Ayala A., Chung C.S., Grutkoski P.S., Song G.Y. Mechanisms of immune resolution // Crit. Care Med. 2003.- Vol.31.-

№8.- Р. 558-571.

61. Banks R.E., Forbes M.A., Storr M., Higginson J., Thompson D., Raynes J., Illingworth J.M., Perren T.J., Selby P.J., Whicher J.T. The acute phase protein response in patients receiving subcutaneous IL-6 // Clin. Exp. Immunol. -1995.- Vol. 102.-№.-P.217-223.

62.Birgens, H. Lactoferrin in plasma measured by an ELISA technique: evidence that plasma lactoferrin is an indicator of neutrophil turnover and bone marrow activity in acute leukaemia // Scand. J. Haematol. -1985.- Vol.34-№4.- Р. 326-331.

63.Bogner V., Keil L., Kanz K.G., Kirchhoff C., Leidel B.A., Mutschler W., Biberthaler P. Very early posttraumatic serum alterations are significantly associated to initial massive RBC substitution, injury severity, multiple organ failure and adverse clinical outcome in multiple injured patients // Eur. J. Med. Res.- 2009.- V. 14, №4.- P. 284-291.

64.Cassatella M.A. On the production of TNF-related apoptosis-inducing ligand (TRAIL/Apo-2L) by human neutrophils // J Leukoc Biol. – 2006. - Vol.79.- №6.-P.1140-1149.

65.Chung J, Ku S.K., Lee S., Bae J.S. Suppressive effects of lysozyme on polyphosphate-mediated vascular inflammatory responses // Biochem Biophys Res. Commun. 2016.- Vol.474.-№ 4.-P.715-721. doi: 10.1016/j.bbrc.2016.05.016.

66.Coffer P.J., Geijsen N., M'rabet L., Schweizer R.C., Maikoe T., Raaijmakers J.A., Lammers J.W., Koenderman L. Comparison of the roles of mitogen-activated protein kinase kinase and phosphatidylinositol 3-kinase signal transduction in neutrophil effector function. //Biochem J.- 1998.- Vo.l 329.-№1.- P121-130.

67.Comstedt P. The Systemic Inflammatory Response Syndrome (SIRS) in acutely hospitalised medical patients: a cohort study / Comstedt P., Storgaard M., Lassen A.T.// Scand. J. Trauma, Resuscitation and Emergency Med.- 2009.-Vol.17.- P.67-73.

68.Daher K.A., Selsted M.E., Lehrer R.I. Direct inactivation of viruses by human granulocyte defensins // Virol. 1986.- Vol.60 -№ 3: P.1068-1074

69.DeForge L.E., Kenney J.S., Jones M.L., Warren J.S., Remick D.G. Biphasic production of IL-8 in lipopolysaccharide (LPS)-stimulated human whole blood. Separation of LPSand cytokine-stimulated components using anti-tumor necrosis factor and anti-IL-1 antibodies // J. Immunol. 1992.- V. 147.- №7.- P. 2133-2141.

70.Doerfler M.E., Weiss J., Clark J.D., Elsbach P. Bacterial lipopolysaccharide primes human neutrophils for enhanced

36

release of arachidonic acid and causes phosphorylation of an 85-kD cytosolic phospholipase A2 // J Clin. Invest. -1994.- Vol.93.-

№4.-Р.583-591.

71.Dunican A., Grutkoski P., Leuenroth S., Ayala A., Simms H. H. Neutrophils regulate their own apoptosis via preservation of CXC receptors // J. Surg. Res. -2000.- Vol. 90 -№ 1. P.32-38. doi: 10.1006/jsre.2000.5829.

72.Farnaud S., Evans R.W. Lactoferrin-a multifunctional protein with antimicrobial properties // Mol. Immunol. 2003.-Vol. 40.- № 7-Р. 395-405.

73.Frank G. Der prognostische Index bei Verbennungsverletzungen zur genaueren

74.Gallo R. L, Nizet V. Endogenous Production of Antimicrobial Peptides in Innate Immunity and Human Disease // Current Allergy and Asthma Reports / Curr Allergy Asthma Rep. 2003.- Vol.3. - №5.- Р.402-409.

75.Ganz T. Antimicrobial polypeptides in host defense of the respiratory tract // J. Clin. Invest. - 2002. - Vоl. 109.- P. 693-

697.

76.Gudmundsson G.H., Agerberth B. Neutrophil antibacterial peptides, multifunctional effector molecules in the mammalian immune system // J. Immunol. Methods. 1999. - Vol. 232. - P. 45-54.

77.Hartung T, Döcke W.D., Gantner F., Krieger G., Sauer A., Stevens P., Volk H.D., Wendel A. Effect of granulocyte colony-stimulating factor treatment on ex vivo blood cytokine response in human volunteers // Blood. 1995.- Vol.85.- № 9.- Р. 2482-2490.

78. Kaufman T., Magosevich D., Moreno M.C., Guzman M.A., D'Atri L.P., Carestia A., Fandiño M.E., Fondevila C., Schattner M. Nucleosomes and neutrophil extracellular traps in septic and burn patients // Clin. Immunol. – 2017.- № 183.P. 254-262. doi: 10.1016/j.clim.2017.08.014.

79.Kennzeichungen ihres Schweregrades und eines verlasslicheren statistischen // Auswerbarkeit. Zbl. Chir. 1960.-N.6.- S.272-277.

80.Kerr JF. Shrinkage necrosis of adrenal cortical cells.//J.Pathol.- 1972.-Vol. № 3.- Р.217219.

81.Klotman M.E., Chang T.L.. Defensins in innate antiviral immunity. // Nat. Rev. Immunol. – 2006. – Vol. 6, N 6. – P. 447–

456.

82.Kuwata H., Yip T.T., Yip C.L., Tomita M., Hutchens T.W. Bactericidal domain of lactoferrin: detection, quantitation, and characterization of lactoferricin in serum by SELDI affinity mass spectrometry // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1998.- Vol.245.- Р. 764-773.

83.Liener U.C., Brückner U.B., Knöferl M.W., Steinbach G., Kinzl L., Gebhard F. Chemokine activation within 24 hours after blunt accident trauma // Shock. – 2002.- Vol.17, N 3. – P. 169-72.

84.Maeda M, van Schie R.C., Yuksel B., Greenough A., Fanger M.W., Guyre P.M. Differential expression of Fc receptors for IgG by monocytes and granulocytes from neonates and adults // Clin. Exp. Immunol.- 1996.- Vol.103.- Р343-347.

85.Marin V., Farnarier C., Grès S., Kaplanski S., Su M.S., Dinarello C.A., Kaplanski G. The p38 mitogen-activated protein kinase pathway plays a critical role in thrombin-induced endothelial chemokine production and leukocyte recruitment // Blood. - 2001.- Vol. 98, № 3 – P.667-673.

86.Matsuzaka T., Fujikawa K.,Nishio Y. Transcription factors NF-IL-6 and NFκB synergistically activate transcription of the inflammatory cytokiness, interleukin 6 and interleukin 8 // Proc. Natl Acad. Sci. USA, 1993.-Vol.90.-P.10193-10197.

87.Matzinger P. Friendly and dangerous signals: is the tissue in control? // Nat. Immunol.- 2007.-.Vol.8.-№1.-P.11-13.

88.McLeish K.R., Knall C., Ward R.A., Gerwins P, Coxon P.Y., Klein J.B., Johnson G.L. Activation of mitogen-activated protein kinase cascades during priming of human neutrophils by TNF-alpha and GM-CSF //J. Leukoc. Biol.- 1998.- Vol .64.- № 4.-Р.537-545.

89.Mikkel F., Kamp S., Cowland J.B., Udby L., Johnsen A.H., Calafat J., Winther H., Borregaard N. Prodefensins are matrix proteins of specific granules in human neutrophils // J.Leukoc.Biol.-2005.- Vol.78-P.785-793.

90.Mukaida N., Morita M., Ishikawa Y., Rice N., Okamoto S., Kasahara T., Matsushima K. Novel mechanism of glucocorticoid-mediated gene repression. Nuclear factor-kappa B is target for glucocorticoid-mediated interleukin 8 gene repression //J Biol Chem. – 1994.-Vol. 6, № 269(18) – P. 13289-95.

91.Odell E.W., Sarra R., Foxworthy M., Chapple D.S., Evans R.W. Antibacterial activity of peptides homologous to a loop region in human lactoferrin //FEBS Lett., -1996.- Vol. 382, Р. 175-178.

92.O'Sullivan S.T., O'Connor T.P. Immunosuppression following thermal injury: the pathogenesis of immunodysfunction //Br. J. Plast .Surg. 1997.- Vol.50.-№ 8.-P.615-623.

93.Panyutich A.V., Panyutich E.A., Krapivin V.A., Baturevich E.A., Ganz T. Plasma defensin concentrations are elevated in patients with septicemia or bacterial meningitis // J. Lab. Clin. Med. - 1993. - V. 122. - P. 202-207.

94.Raith E.P., Udy A.A., Bailey M., McGloughlin S., MacIsaac C., Bellomo R. Prognostic accuracy of the SOFA score, SIRS criteria, and SOFA score for in-hospital mortality among adults with suspected infection admitted to the intensive care unit

//JAMA. 2017.- Vol. 317.-№3.- Р. 290–300.

95.Rutella S., Rumi C., Sica S., Leone G. Recombinant human granulocyte colony-stimulating factor (rHuG-CSF): effects on lymphocyte phenotype and function // J. Interferon Cytokine Res. 1999.- Vol. 19.- №9.- Р. 989-994.

96.Sarah M., Bors W. Oxygen radicals acting as chemical messеngers // Free Rad. Res. Comun.-1989.- Vol.7.-P.213-220.

97.Schneider J.J., Unholzer A., Schaller M. Human defensins // J. Mol. Med. (Berl.). 2005.- Vol. 83.-№8.-Р. 587–595.

98.Sloand E.M, Kim S, Maciejewski J.P, Van Rhee F, Chaudhuri A., Barrett J., Young N.S. Pharmacologic doses of granulocyte colony-stimulating factor affect cytokine production by lymphocytes in vitro and in vivo // Blood.- 2000.- Vol.95. - № 7.- Р.2269-2274.

99.Standiford T.J., Strieter R.M., Greenberger M.J., Kunkel S.L. Expression and regulation of chemokines in acute bacterial pneumonia // Biol Signals. 1996.- Vol. 5.- N 4 - P.203-208.

100.Thelen M., Dewald B., Baggionilli M. Neutrophil signal transduction and activation of the respiratory bust // Physiological Reviews.-1993.-Vol.73.-№4.- Р.797-821.

101.Ulevitch R.J., Tobias P.S. Receptor-dependent mechanisms of cell stimulation by bacterial endotoxin // Annu. Rev.

37

Immunol. 1995.- Vol.13.-Р.437-457.

102.Wolff B. , Burns A. R., Middleton J., Rot A. Endothelial cell "memory" of inflammatory stimulation human venular endothelial cells store interleukin 8 in Weibel-Palade bodies // J. Exp. Med .-1998.- Vol. 188.- № 9.-P.1757-1762. doi: 10.1084/jem.188.9.1757.

103.Xanthou M. Immune protection of human milk // Biol. Neonate.- 1998.- Vol.74.–№2.-P.121-133.

104.Xiao S., Xu C., Jarvis J.N. C1q-bearing immune complexes induce IL-8 secretion in human umbilical vein endothelial cells (HUVEC) through protein tyrosine kinaseand mitogen-activated protein kinase-dependent mechanisms: evidence that the 126 kD phagocytic C1q receptor mediates immune complex activation of HUVEC // Clin. Exp. Immunol.-2001.- Vol.125, 3.- P. 360-367.

105.Yang D., Biragyn A., Hoover D.M., Lubkowski J., Oppenheim J.J. Multiple roles of antimiсrobial defensins, cathelicidins, and eosinophil-derived neurotoxin in host defense // Annu. Rev. Immunol. — 2004. - Vol. 22. - P. 170-175.

106.Yoon J., Kym D., Hur J, Kim Y., Yang H.T., Yim H., Cho Y.S., Chun W. Comparative Usefulness of Sepsis-3, Burn Sepsis, and Conventional Sepsis Criteria in Patients With Major Burns // Critical Care Med. - 2018.- PMID: 29620554.

107.Zakharova E. T., Shavlovski M. M., Bass M. G. Interaction of lactoferrin with ceruloplasmin // Arch. Biochem. Biophys.- 2000.- Vol. 374, № 2.- P. 222–228.

ВОПРОСЫ ДЛЯ САМОКОНТРОЛЯ

Правильные ответы (вопрос-ответ):

1-3, 2-1, 3-4, 4-1,5-3, 6-2, 7-3, 8-2, 9-1, 10-4, 11-1, 12-1.

Л.П. Пивоварова, А.Н. Тулупов, И.В. Осипова, О.Б. Арискина, О.В. Орлова, Т.Г. Хабирова

Бактерицидные свойства фагоцитов крови при сочетанной и ожоговой травмах

Учебное пособие

ГБУ «Санкт-Петербургский НИИ скорой помощи им. И. И. Джанелидзе»

Формат 60х90/16. Объем 1,6 усл.п.л. Печать цифровая. Бумага офсетная. Тираж 500 экз. Заказ № 17 Отпечатано в ООО «Медиапапир», 194021, Санкт-Петербург, Политехническая ул., д. 24, лит. В, пом. 11-Н,

№ 25, 26, Тел. +7 (812) 987-75-26, mediapapir@gmail.com, www.mediapapir.com., www.mediapapir.ru.

Печать с готового оригинал-макета заказчика.