- •1. Определение предмета микробиологии, отрасли, задачи медицинской микробиологии.
- •10. Микроскопия в тёмном поле зрения.
- •11. Люминесцентная микроскопия.
- •12. Фазово-контрастная микроскопия.
- •13. Электронная микроскопия.
- •14. Морфология бактерий. Место их среди микроорганизмов, основные формы, размеры.
- •Ультраструктура бактериальной клетки.
- •15. Приготовление и окраска препаратов-мазков.
- •16. Принцип и метод окраски по Граму в модификации Синёва.
- •17. Отношение бактерий к окраске по Граму. Различия между ними по строению клеточной стенки и по чувствительности к антибактериальным веществам.
- •Проведение анализа
- •Необязательные (непостоянные) структурные элементы.
- •20. Клеточная стенка, её строение, биологическая роль, способы обнаружения.
- •21. Цитоплазматическая мембрана, её строение, биологическая роль. Мезосомы.
- •Вспомогательные задачи
- •22. Споры бактерий, их биологическая роль, условия и время, необходимые для их образования и для прорастания спор в вегетативные формы. Способы обнаружения спор. Бактерии, образующие споры.
- •23. Капсула бактерий, её биологическая роль, способы обнаружения. Бактерии, образующие капсулы.
- •24. Включения бактериальной клетки, их биологическая роль, способы обнаружения. Практическое значение.
- •25. Жгутики бактерий, их биологическая роль, число и расположение, способы обнаружения.
- •26. Пили (ворсинки, фимбрии), локализация, типы, биологическая роль, способ обнаружения.
- •27. Микроскопические грибы: положение среди микроорганизмов, строение, способы размножения, группы грибов, имеющих практическое значение.
- •28. Дрожжеподобные грибы рода Candida.
- •29. Актиномицеты, их положение среди микроорганизмов, строение, значение в жизни человека.
- •2. Одновременно в спороносце образовываются поперечные перегородки по всей длине, происходит утолщение стенок и деление на 30-100 спор.
- •30. Спирохеты, их положение среди микроорганизмов, строение. Патогенные представители.
- •31. Простейшие, их положение среди микроорганизмов. Патогенные представители. Способ окраски.
- •32. Микоплазмы, их положение среди микроорганизмов, строение, сходство с l-формами и отличие.
- •34. Хламидии, их положение среди микроорганизмов, особенности морфологии, патогенные представители.
34. Хламидии, их положение среди микроорганизмов, особенности морфологии, патогенные представители.
Chlamydia trachomatis
Chlamydophila psittaci
Chlamydophila pneumoniae
Из-за своих размеров( первичный 0,3 мм, но может увеличиться до 1 мм) паразиты находятся между бактериями и вирусами, т.к. имеют некоторые признаки как у бактерий( чувствительны к антибиотикам) так и у вирусов( не могут выжить вне клетки). Таким образом, хламидии относятся и к бактериальным и к вирусным микроорганизмам.
Хламидии представляют собой облигатные внутриклеточные паразиты кокковидной формы, размножаются только в цитоплазме клеток позвоночных. Метаболическая активность у них понижена, культивируются при 33—41° С в желточном мешке куриного эмбриона, грамотрицательны, У птиц они вызывают респираторные болезни с генерализацией процесса, у млекопитающих поражают дыхательные пути, плаценту, суставы, кишечный тракт
Представители семейства Chlamydiaceae (хламидии) являются патогенными облигатными внутриклеточными бактериями, паразитирующими в чувствительных клетках теплокровных (млекопитающих, птиц, человека и др.)
Они близки по структуре и химическому составу к классическим бактериям. Для них характерно сохранение морфологической сущности на протяжении всего жизненного цикла, деление вегетативных форм, наличие клеточной стенки, содержание ДНК и РНК, энзиматическая активность, чувствительность к антибиотикам широкого спектра, наличие общего родоспецифического антигена.
В то же время хламидии по размерам меньше классических бактерий, имеют небольшой геном, являются облигатными внутриклеточными паразитами с уникальным циклом развития. Они не способны синтезировать высокоэнергетические соединения и обеспечивать собственные энергетические потребности (энергозависимые паразиты), что и определяет их облигатный паразитизм.
С учетом своих особенностей хламидии занимают самостоятельное (особое) положение среди других микроорганизмов — прокариот. Для человека имеют значение преимущественно представители двух родов — Chlamydia и Chlamydophila. Наибольшее значение имеют три вида.
Морфологические особенности.
Клеточный цикл развития хламидий имеет две основных формы — элементарные тельца (ЭТ) — инфекционная форма и ретикулярные тельца (РТ) — вегетативная форма. Сферические ЭТ значительно меньше размерами (менее 300 нм в диаметре), имеют более жестную электронно- плотную структуру, метаболически мало активны, адаптированы к кратковременному внеклеточному существованию.
+Цикл развития хламидий осущесвляется в цитоплазматическом включении — фагосоме (вакуоле), куда ЭТ попадают путем стимулирования эндоцитоза. В процессе адсорбции и эндоцитоза участвуют термолабильные эффекторные белковые поверхностные антигены хламидий. ЭТ подавляют фагосомо — лизосомальное слияние и преобразуются при участии главного поверхностного протеина в РТ, которые обладают активным метаболизмом, более крупными размерами и активным бинарным делением. Цикл размножения заканчивается обратным переходом РТ в ЭТ, разрывом мембран включения и ограничивающих мембран клетки хозяина, выходом ЭТ из клеток, далее ЭТ инфицируют новые клетки. Тельца включений выявляются в клетках при помощи световой и иммунолюминесцентной микроскопии.
Кроме того, хламидии способны образовывать L — формы, персистентные формы
Окраска по Граму. Сущность метода
Метод основан на способности микроорганизмов удерживать образующийся при окраске комплекс генцианового фиолетового и йода. Это связано с особенностями строения и химического состава грамположительных и грамотрицательных бактерий. У грамположительных бактерий на поверхности клеток есть магниевые соли рибонуклеиновой кислоты, которые прочно связывают комплекс генцианового фиолетового с йодом и препятствуют его вымыванию спиртом. Кроме того, грамположительные бактерии имеют более выраженный пептидогликановый слой, в котором после обработки спиртом сужаются поры, что также делает невозможным вымывание красителя. В результате грамположительные бактерии окрашиваются в фиолетовый цвет.
У грамотрицательных бактерий отсутствуют магниевые соли рибонуклеиновой кислоты, пептидогликановый слой значительно тоньше, а размеры пор шире. Поэтому при обработке спиртом краситель легко вымывается, бактерии обесцвечиваются и при использовании дополнительного красного красителя грамотрицательные бактерии окрашиваются в красный цвет.
Методика окраски по Граму (этапы окраски по Граму представлены на стенде).
1. На фиксированный мазок наносят карболово-спиртовой раствор генцианового фиолетового на 1-2 минуты, затем краситель сливают.
2. Наносят раствор Люголя на 1 мин.
3. Обесцвечивают препарат этиловым спиртом в течение 30-60 секунд до прекращения отхождения фиолетовых струек красителя.
4. Препарат промывают водой.
5. Мазок докрашивают водным раствором фуксина в течение 1-2 минут, промывают водой и высушивают фильтровальной бумагой.
Окраска по Цилю-Нильсену
Применяют для дифференциации кислотоустойчивых и некислотоустойчивых микроорганизмов. Кислотоустойчивость бактерий обусловлена повышенным содержанием в клеточной стенке и цитоплазме липидов, воска и оксикислот. Принцип основан на том, что кислотоустойчивые бактерии за счет содержания указанных веществ прочно связывают карболовый фуксин при нагревании (т.е. окрашиваются в красный цвет) и не обесцвечиваются кислотой. Некислотоустойчивые бактерии обесцвечиваются серной кислотой и при использовании дополнительного красителя - метиленового синего – окрашиваются в синий свет.
Методика окраски по Цилю-Нильсену:
1. На фиксированный препарат – мазок нанести карболовый раствор фуксина через полоску фильтровальной бумаги и подогреть до появления паров в течение 3-5 мин.
2. Снять бумагу, промыть мазок водой.
3. Нанести 5 % раствор серной кислоты на 1-2 мин до обесцвечивания.
4. Промыть водой.
5. Докрасить мазок водным раствором метиленового синего в течение 3-5 мин.
6. Промыть водой, высушить, микроскопировать.
Окраска по Ожешко
Метод основан на принципе окраски кислотоустойчивых бактерий. Отличие заключается в предварительной обработке микроорганизмов 0,5 % раствором соляной кислотой, что облегчает окраску спор карболовым фуксином. Споры кислотоустойчивы, поэтому красятся в красный цвет.
Методика окраски по Ожешко:
1. На нефиксированный мазок нанести 0,5 % раствор соляной кислотой и подогреть на пламени в течение 2-3 мин.
2. Кислоту слить, препарат промыть водой, просушить и фиксировать над пламенем. Затем окрасить по Цилю-Нильсену. Споры бактерий приобретают красный цвет, а вегетативные формы - синий.
Окраска по Романовскому-Гимзе
Методика окраски по Романовскому-Гимзе:
Краска Романовского-Гимзе состоит из метиленового синего, эозина и азура.
3. На мазок наносят рабочий раствор красителя (2 капли красителя на 1 мл дистиллированной воды) на 10-20 мин.
4. Препарат промывают водой и высушивают на воздухе.
+Трепонемы окрашиваются в бледно-розовый цвет, боррелии - в фиолетовый цвет, лептоспиры - в розовый цвет. Сапрофитные (непатогенные) формы окрашиваются в синий цвет. Морфологию спирохет изучают также в живом состоянии в фазово-контрастном или темнопольном микроскопе. Хорошим методом выявления спирохет является серебрение по Морозову.
Окраска по Романовскому-Гимзе. Фиксированный мазок кладут в чашку Петри мазком вниз на подставки из стеклянной соломки или спичек и наливают рабочий раствор краски Романовского-Гимза (15—20 капель на 10 мл воды). Через 15—20 мин препарат промывают водой и высушивают на воздухе. Бактерии окрашиваются в тёмно-синий цвет, капсулы — в розовый.
Окраска по Михину. На фиксированный мазок наливают метиленовую синь Леффлера (30 мл насыщенного спиртового раствора метиленовой сини растворяют в 100 мл воды, добавляют 1 мл 1 % раствора NaOH и выдерживают в термостате месяц) при лёгком нагревании выдерживают 3—5 мин, быстро промывают водой и высушивают. Бактерии окрашиваются в синий цвет, капсулы — в розовый.
Метод Бурри-Гинса используется для окраски капсульных бактерий и основан на том, что капсула не воспринимает красители. Капсулу выявляют негативным контрастированием фона по Бури. Для этого черную тушь смешивают в культурой и высушивают. После этого проводят фиксацию в пламени горелки, окрашивают тела микробных клеток по Гинсу - водным фуксином в течение 1 минуты и промывают водой 5-10 секунд. В результате на темном фоне хорошо видна бесцветная капсула и красные тела микробов.