Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Общая микробиология

.pdf
Скачиваний:
742
Добавлен:
02.03.2021
Размер:
20.74 Mб
Скачать

541

происхождения. К ним относятся пептоны, кровь, отвары и экстракты, полученные из природных субстратов (мясо, рыба, крупы).

Полусинтетические среды кроме органических и неорганических веществ известного состава содержат продукты природного происхождения (картофельная среда с глюкозой, дрожжевая среда).

Синтетические питательные среды состоят из определенных количеств органических и неорганических химических соединений известного состава.

По набору питательных веществ выделяют:

-минимальные среды, которые содержат лишь источники питания, достаточные для роста;

-богатые среды, в состав которых входят многие дополнительные

вещества.

В зависимости от назначения питательных сред различают:

-основные среды;

-элективные (селективные) среды;

-дифференциально-диагностические среды;

-накопительные среды (среды обогащения).

К основным средам относятся мясо-пептонный агар и мясо-пептонный бульон. На этих средах растет большинство бактерий.

Дифференциально-диагностические среды - это сложные среды,

позволяющие изучать биохимические свойства бактерий. Эти среды используются для определения вида бактерий.

Элективные (селективные) питательные среды содержат вещества,

подавляющие рост одних бактерий, и не влияющие на рост других бактерий. Эти среды служат для выделения определенного вида бактерий из смешанных популяций.

Накопительные питательные среды (среды обогащения) - это среды, на которых определенные виды культур растут быстрее и интенсивнее сопутствующих.

Посев микроорганизмов на питательные среды. Техника посева зависит от характера исследуемого материала и консистенции питательной среды.

Жидкий материал для посева берут бактериологической петлей или стерильной пипеткой. Все манипуляции проводят вблизи пламени спиртовки. Бактериологическую петлю перед взятием материала и по окончании посева стерилизуют прокаливанием в пламени спиртовки. Пипетки после посева погружают в емкость с дезраствором.

При посеве в жидкую питательную среду петлю с материалом погружают в среду и легким покачиванием смывают материал. При использовании пипетки материал сливают в среду.

При посеве на скошенный питательный агар в пробирке петлю с материалом вносят вблизи пламени спиртовки в пробирку и материал штрихом распределяют по поверхности агара.

Посев материала на агар в чашке Петри проводят с помощью бактериологической петли, шпателя или тампона. Посев бактериологической петлей проводят штрихом по поверхности агара. С помощью шпателя или тампона исследуемый материал распределяется по поверхности среды круговыми движениями.

542

Для посева в толщу питательной среды материал вносят в стерильную чашку Петри или в пробирку, добавляют остуженный (40-45ОС) расплавленный агар и перемешивают.

Посев уколом в столбик питательной среды проводят с помощью бактериологической иглы или петли путем прокалывания столбика среды.

Самостоятельная работа.

Каждый студент проводит пересев бактерий из жидких и с агаровых культур на плотные и в жидкие питательные среды. Порядок пересевов студенты записывают в рабочую тетрадь.

Иллюстративный материал

Варианты посева штрихом.

Расположение петли при посеве штрихом.

543

Посев в чашку Петри.

Посев тампоном.

Посев по Дригальскому.

544

Посев из пробирки в пробирку.

545

Тема 5: Антибиотики. Методы определения чувствительности

бактерий к антибиотикам.

Цели занятия: Изучить со студентами классификацию антибактериальных препаратов, механизмы действия антибиотиков на бактерии, методы определения чувствительности бактерий к антибиотикам.

Задачи занятия:

1.Изучение классификации антибактериальных препаратов.

2.Изучение механизмов действия антибактериальных препаратов на микробную клетку.

3.Изучение методов определения чувствительности бактерий к антибиотикам.

После изучения темы студент должен:

знать:

- классификацию антибиотиков; - механизмы действия антибиотиков на бактерии;

уметь:

- определять чувствительность бактерий к антибиотикам методом дисков;

владеть:

- микробиологическим понятийным аппаратом.

Справочные материалы

Химиотерапевтические препараты: По спектру активности:

-действующие на клеточные формы микроорганизмов (антибактериальные, противогрибковые, противопротозойные). Антибактериальные препараты кроме того подразделяются на препараты широкого спектра действия (действуют на грамположительные и грамотрицательные бактерии) и препараты узкого спектра действия (действуют только на грамположительные или только на грамотрицательные бактерии);

-действующие на неклеточные формы (противовирусные препараты).

По направленности действия (по объекту):

1. Противобактериальные препараты:

-бета-лактамные антибиотики (пенициллины, цефалоспорины);

-стрептомицины;

-макролиды (эритромицин, олеандомицин);

-аминогликозиды (канамицин, мономицин, неомицин, тобрамицин, сизомицин, гентамицин);

-тетрациклины;

-гликопептиды (ванкомицин, линкомицин);

-хлорамфеникол (левомицетин);

-противотуберкулезные препараты (ПАСК);

-фосфомицины;

-фторхинолоны.

2.Противовирусные препараты (амантадин, ремантадин).

3.Противогрибковые препараты.

546

По типу действия:

-микробоцидные (бактерицидные, фунгицидные), то есть губительно действующие на микроорганизмы;

-микробостатические (бактериостатические), то есть ингибирующие рост и размножение микроорганизмов.

Сульфаниламидные препараты (сульфаниламиды) - это химиотерапевтические препараты, являющиеся производными сульфаниловой кислоты. К ним относятся норсульфазол, сульфадимезин, сульфадиметоксин, фталазол и другие препараты.

Антибиотики - это препараты биологического (микробного, растительного, животного), полусинтетического или синтетического происхождения, которые в малых концентрациях вызывают торможение размножения или гибель чувствительных к ним микробов во внутренней среде организма. Основными источниками получения антибиотиков являются актиномицеты, плесневые грибы и некоторые бактерии.

Классы антибиотиков по химической структуре:

-бета-лактамы;

-гликопептиды;

-аминогликозиды;

-тетрациклины;

-макролиды;

-линкозамиды;

-левомицетин;

-рифамицины;

-полипептиды;

-полиены;

-разные антибиотики.

Механизмы действия сульфаниламидов и антибиотиков:

-ингибирование синтеза веществ, входящих в состав клеточной стенки (пенициллины, цефалоспорины, циклосерин, бацитрацин);

-ингибирование функций цитоплазматической мембраны - нарушение проницаемости клеточной мембраны (полимиксины, нистатин, колистин, амфотерицин В);

-ингибирование синтеза белка (тетрациклины, аминогликозиды, эритромицин, линкомицин, хлорамфеникол);

-ингибирование синтеза нуклеиновых кислот (налидиксовая кислота, рифампицин, фторхинолоны).

Методы определения чувствительности бактерий к антибиотикам

1.Метод серийных разведений в жидких средах. В жидкие среды с

серийными разведениями антибиотиков вносят исследуемую культуру, инкубируют посевы при 37ОС, и учитывают результаты визуально или нефелометрически. Этот метод позволяет установить минимальную ингибирующую концентрацию (МИК) препарата для возбудителя. МИК соответствует наибольшему разведению препарата, тормозящему рост тест-культуры.

2.Метод серийных разведений в плотных средах. Метод аналогичен предыдущей процедуре, но проводится на плотных питательных средах. При

547

использовании этого метода готовят двойные серийные разведения антибиотика в расплавленном агаре, который затем вносят в чашки Петри и засевают исследуемой культурой. После инкубирования посевов определяют МИК по отсутствию роста на чашках, содержащих наименьшие концентрации препарата.

3. Диффузионные методы. Эти методы менее чувствительны, чем методы стандартных разведений, но проще по выполнению. На практике их применяют чаще.

3.1.Классический метод. На питательную среду в чашке Петри наносят исследуемую культуру и равномерно ее распределяют ее по поверхности среды. В агаре пробивают лунки и в каждую вносят по 0,1 мл раствора исследуемого антибиотика, после чего инкубируют при 37°С. После инкубирования в оптимальных условиях измеряют диаметр зоны подавления роста для каждого препарата.

3.2.Метод дисков (стандартный тест, чашечный или кольцевой метод, диско-диффузионный метод). После посева культуры на агар наносят диски из фильтровальной бумаги, пропитанные антибиотиками разной концентрации

(используют коммерческие образцы, содержащие определенные концентрации). После инкубации при 37ОС определяют диаметры зон торможения роста микроорганизмов и сравнивают с величинами зон задержки роста, указанными в инструкциях, прилагаемых к дискам. Вокруг дисков в зависимости от активности и концентрации антибиотика образуются разной величины зоны задержки роста микроба. Зоны точно измеряют с помощью циркуля и линейки.

Самостоятельная работа:

Определение чувствительности бактерий к антибиотикам методом стандартных индикаторных дисков. В подсушенную чашку с МПА вносят 2-3 мл культуры исследуемого микроба (концентрация - 1 млрд., разведенная 1:1000). Культуру распределяют по всей поверхности среды путем покачивания чашки. Избыток культуры удаляют пипеткой. На поверхность среды размещают стандартные индикаторные диски, пропитанные антибиотиками. Расстояние дисков от края чашки должно быть не менее 1,5 см. Расстояние между дисками также

должно быть не менее 1,5 см. На чашку помещают 5-6 дисков. Чашки инкубируют в термостате при 36ОС в течение 18-24 часов.

Учет результатов проводится путем измерения диаметров зон ингибирования роста бактерий.

Иллюстративный материал

Диски с антибиотиками.

548

Результат определения чувствительности бактерий к антибиотикам методом дисков.

Измерение зон ингибирования роста бактерий.

549

Тема 6: Микробиота почвы, воды, воздуха.

Цель занятия: Изучить со студентами микробиоту почвы, воды, воздуха.

Задачи занятия:

1.Изучение микробиоты почвы и методов определения микробного загрязнения почвы.

2.Изучение микробиоты воды и методов определения микробного загрязнения воды.

3.Изучение микробиоты воздуха и методов определения микробного загрязнения воздуха.

4.Обучить студентов методике определения микробного загрязнения воздуха седиментационным методом.

После изучения темы студент должен:

знать:

- микробиоту воды, почвы, воздуха; - методы определения загрязненности микроорганизмами почвы, воды и

воздуха;

уметь:

- определять микробную загрязненность воздуха седиментационным методом;

владеть:

- микробиологическим понятийным аппаратом.

Справочные материалы

Микробиота почвы

Находящиеся в почве микроорганизмы подразделяются на две группы:

-аутохтонные (резидентные) микроорганизмы - микробы, которые присутствуют только в конкретном типе почвы;

-аллохтонные (транзиторные) микроорганизмы - микроорганизмы,

которые в обычных условиях в почве не встречаются.

Вплодородной почве общая биомасса бактерий достигает 500 кг/га и более. Наибольшее значение для почв имеют азотфиксирующие бактерии (Azotobacter, Nitrobacter, Mycobacterium и другие). К типичным почвенным бактериям относятся актиномицеты и спорообразующие палочки родов Bacillus и Clostridium.

Наиболее многочисленны микроорганизмы в верхнем 5-15-сантиметровом слое, меньше их на глубине 20-30 см и минимальное количество на глубине 30-40 см. Однако бактерии обнаруживаются в почве даже на глубине 5 м.

Почва населенных мест загрязняется твердыми и жидкими отбросами, выделениями людей и животных, остатками растений, хозяйственно-бытовыми и промышленными сточными водами. Особенно опасны сточные воды боен, мясокомбинатов, предприятий по переработке кожи, шерсти, которые могут содержать патогенные бактерии. В связи с этим почва может служить фактором передачи возбудителей инфекционных заболеваний. Наиболее длительно живут спорообразующие микробы – возбудители столбняка, ботулизма, сибирской язвы.

Микробиологическое исследование почвы проводят для ее санитарной оценки, характеристики процессов самоочищения, оценки методов обезвреживания

550

отбросов, при определении пригодности участков для строительства, а также при эпидемиологических и эпизоотологических обследованиях с целью выяснения путей заражения почвы, продолжительности выживания в ней патогенных микробов и т. д.

Отбор проб почвы производят с квадратного участка (не менее 5x5 м) из 5 точек - из каждого угла и центра квадрата (“метод конверта”). Образцы забирают в условиях асептики с глубины 20-30 см. Объем образцов 1 кг.

Наличие в почве бактерий группы кишечной палочки свидетельствует о ее свежем фекальном загрязнении. Обнаружение Cl. perfringens в почве указывает на ее давнее фекальное загрязнение.

Микробиота воды Микробиоту водоемов образуют две группы:

-аутохтонная микробиота – совокупность микроорганизмов, постоянно живущих и размножающихся в воде;

-аллохтонная микробиота – совокупность микроорганизмов, случайно попавших в воду и сохраняющихся в ней сравнительно короткое время.

Всоответствии с действующими нормативными документами обязательному микробиологическому контролю подлежит вода питьевая (центрального и местного водоснабжения).

Отбор проб. Для отбора проб питьевой воды используют стерильные флаконы ёмкостью 500 мл. Предварительно обжигают выходное отверстие крана пламенем и пропускают воду в течение 10-15 минут при полностью открытом кране.

Показатели загрязнения:

- E. coli – свежее фекальное загрязнение;

- Citrobacter, Enterobacter – давнее фекальное загрязнение;

- Cl. perfringens (sporogenes) – как свежее, так и давнее фекальное загрязнение;

- термофильные бактерии – загрязнение разлагающимися отбросами; - протей – гнилостный распад.

Микробиота воздуха

Воздух – неблагоприятная среда для размножения микроорганизмов (отсутствие питательных веществ, солнечные лучи, высушивание). Состав микробиоты воздуха – это пигментные сапрофитные бактерии (микрококки, сарцины), актиномицеты, плесневые, дрожжевые грибы и др.

Наибольшее количество микроорганизмов содержит воздух крупных промышленных городов. Воздух же полей, лесов, лугов, а также над водными пространствами, в удалении от населенных пунктов отличается сравнительной чистотой. Значительные изменения претерпевает микробиота воздуха в зависимости от времени года. Максимальное количество микробов обнаруживают в летнее время, а минимальное – в зимнее время.

Микробиологическое исследование воздуха проводится с помощью седиментационного или фильтрационного методов.

Седиментационный метод Коха – определение количества микробов в воздухе в результате спонтанного оседания бактериальных частиц и капель под действием силы тяжести на поверхность питательной среды открытой чашки Петри. При этом читается, что в соответствии с формулой В.Л. Омелянского на