- •Список литературы
- •2.0Бзор литературы
- •2.1. Общие представления по этологии пчел.
- •2.3. Некоторые аспекты микробиологического состояния пчелиной семьи.
- •Признаки болезни.
- •2.5. Микрофлора здоровой пчелиной семьи .
- •2.6. Почему болеют пчелы.
- •2.7. Хитозан и его значение
- •2.8. Источники и способы получения хитозана
- •2.9. Основные этапы получения хитозана
- •2.10. Основные источники хитозана Ракообразные
- •2.11. Пчела как потенциальный источник хитозана
- •3.Экспериментальная часть
- •3.1.Объекты и методы исследования.
- •3.1.1. Объекты исследования.
- •3.1.2. Методы исследования.
- •Отбор проб и смывов для микробиологического анализа.
- •Подготовка к анализу.
- •3.1.2.3. Идентификация микрофлоры.
- •3.1.2.3.2.Идентификация микроорганизмов.
- •3.1.2.4. Определение чувствительности микроорганизмов к бактерицидным веществам.
- •3.1.2.5.2. Методы получения хитозана. Щелочной гидролиз
- •1. Жесткий щелочной гидролиз
- •2. Мягкий щелочной гидролиз
- •3.1.2.8. Определение динамической вязкости
- •3.1.2.9. Кондуктометрическое определение степени деацетилирования хитозана
- •3.2. Результаты и обсуждение.
- •Изучение микрофлоры ульев здоровых пчелиных семей в зависимости от годичного цикла.
- •3.2.1. Изучение особенности годичного цикла жизни пчелиной семьи.
- •3.2.2. Происхождение и роль микрофлоры здоровой пчелиной семьи.
- •3.2.3.Микрофлора ульев здоровой пчелиной семьи.
- •3.2.4.Влияние гигиенических условий углекислого газа в гнезде на семьи пчел.
- •3.2.5. Защитные свойства внешних покровов пчел от микрофлоры.
- •3.2.6. Получение хитозана из подмора пчел.
- •3.2.6.1.Характеристика подмора пчел.
- •3.2.6.2 Депротеинирование
- •3.2.6.3. Деацетилирование
- •3.2.6.4. Ферментативный гидролиз хитозана
- •3.2.7.Технология переработки подмора пчел.
- •3.2.8.Технология введения пчелозана (хитозана) в зубные пасты.
- •3.2.9.Клинические испытания зубной пасты «Пчелка».
- •5. Список литературы.
3.2.3.Микрофлора ульев здоровой пчелиной семьи.
С целью изучения общей бактериальной обсемененности внутренней поверхности ульев исследовали смывы со дна и внутренних поверхностей ульев , из ячеек сотов различных сроков использования пчелами в ульях, пробы меда и перги.
Результаты микробиологического анализа представлены в таблице 15.Таблица 15.
Показатели общей бактериальной обсемененности внутренней поверхности ульев.
|
Кол-во исследо- ваннх ульев |
Количество микроорганизмов со 100 см2 поверхности ульев дно стенки крышка в |
|||
Май |
5 |
(95 ±5) 10б |
(52 ± 6) 10б |
(40± 6) 10б |
(62 + 6) 106 |
Июль |
5 |
(78 ±8) 10б |
(28 + 2) 106 |
(20± 5 ) 106 |
(42 ±6) 10б |
Увеличение микробного фона весной объясняется большим количеством трупов пчел , погибших во время зимовки , остатков перги на дне ульев , в связи с чем создается прекрасная среда для обитания микроорганизмов. В период активной жизнедеятельности пчелиной семьи создаются оптимальные условия для защиты от проникновения и развития посторонних микроорганизмов. Причиной снижения микробного фона летом является очистка гнезда от трупов пчел, личинок , испортившейся перги , принос в улей свежего прополиса , обладающего бактерицидными свойствами.
Исследованиями обсемененности микроорганизмами сотов различных сроков их использования семьями пчел в ульях и сотового меда , установлена определенная корреляция загрязнения микрофлорой ячеек в зависимости от сроков их эксплуатации. При увеличении времени использования сотов , показатель их общей бактериальной обсемененности постепенно возрастает рис.16.
Нашими исследованиями показано, что в сотах , используемых более трех лет , резко увеличивается среднее количество выросших колоний , так как в результате скопления в ячейках рубашек коконов личинок , куколок пчел , создают благоприятные условия для накопления микроорганизмов.
Уровень микробного заражения, КОЕ хЮЗ
1 2 34 5 67 8 9 10
Срок использования сотов (г).
Рис. /¿»Уровень бактериального заражения сотов разных сроков использования в пчелиных семьях содержащихся в ульях и содержащегося в них меда
.Микрофлора незапечатанного меда бедна в количественном отношении. Отсутствие бактерий в зрелом меде очевидно можно объяснить его бактерицидными свойствами. Антибактериальные вещества в мед поступают с нектаром в виде фитонцидов различных растений , которые в сочетании с ферментами пчел^ выделяемых при собирании и склеивании пыльцевых зерен, повышенной концентрацией сахара и высоким осматическим давлением оказывает угнетающее влияние на микроорганизмы (Черепов В.Т.,1966).
Из прополиса , собраного в ульях , микроорганизмы не выделены , обладая антисептическими свойствами , последний оказывает влияние на микробный состав всего пчелиного гнезда.
Исследуя общую бактериальную обсемененность , изучен видовой состав микрофлоры пчел в условиях содержания последних в многокорпусных ульях.Результаты этих исследований представлены в таблице 16.
Таблица 16.
Микрофлора ульев здоровых пчелиных семей в весенне-летний период.
№ п/п |
Виды бактерий * |
смыв CO стенок ульев |
соты старые |
перга |
мед |
1 |
Вас. coli citrovorum |
+ |
+ |
+ |
_ |
2. |
Escherichia coli |
+ |
|
_ |
|
3. |
Chromobact.cloacae |
+ |
+ |
|
|
4. |
Chromobact.amilovorum |
+ |
+ |
+ |
+ |
5. |
Chromobact.paracloacae |
+ |
+ |
+ |
+ |
6. |
Pseudomonas herbicola |
+ |
|
|
|
7. |
Pseudomonas influenzoides |
+ |
|
|
|
8. |
Lactobacillus polinis |
+ |
+ |
+ |
|
9. |
Micrococcus albus |
+ |
_ |
_ |
- |
10. |
ВасШш виЫШБ |
+ |
+ |
|
|
11. |
СЬготоЬас1.рго<%Ю8ит |
+ |
|
|
|
12. |
Вас. А1уе1 |
+ |
|
|
|
13. |
Вас. Ьагуае |
+ |
|
_ |
|
14. |
Еп1. haf.var.alvd |
+ |
_ |
|
|
* видовая принадлежность микроорганизмов определена согласно типовым штаммам и определителям , хранящихся в коллекции Пермского филиала с/х АН.
Выделенные черным виды микроорганизмов являются патагенными для пчел.
Анализируя полученные результаты и сравнивая их с имеющимися сведениями в источниках литературы , нами был отмечен факт , что впервые были выделены патагенные для пчел микроорганизмы со стенок ульев , в которых обитали здоровые семьи.
жилища
и концентрации
