- •Список литературы
- •2.0Бзор литературы
- •2.1. Общие представления по этологии пчел.
- •2.3. Некоторые аспекты микробиологического состояния пчелиной семьи.
- •Признаки болезни.
- •2.5. Микрофлора здоровой пчелиной семьи .
- •2.6. Почему болеют пчелы.
- •2.7. Хитозан и его значение
- •2.8. Источники и способы получения хитозана
- •2.9. Основные этапы получения хитозана
- •2.10. Основные источники хитозана Ракообразные
- •2.11. Пчела как потенциальный источник хитозана
- •3.Экспериментальная часть
- •3.1.Объекты и методы исследования.
- •3.1.1. Объекты исследования.
- •3.1.2. Методы исследования.
- •Отбор проб и смывов для микробиологического анализа.
- •Подготовка к анализу.
- •3.1.2.3. Идентификация микрофлоры.
- •3.1.2.3.2.Идентификация микроорганизмов.
- •3.1.2.4. Определение чувствительности микроорганизмов к бактерицидным веществам.
- •3.1.2.5.2. Методы получения хитозана. Щелочной гидролиз
- •1. Жесткий щелочной гидролиз
- •2. Мягкий щелочной гидролиз
- •3.1.2.8. Определение динамической вязкости
- •3.1.2.9. Кондуктометрическое определение степени деацетилирования хитозана
- •3.2. Результаты и обсуждение.
- •Изучение микрофлоры ульев здоровых пчелиных семей в зависимости от годичного цикла.
- •3.2.1. Изучение особенности годичного цикла жизни пчелиной семьи.
- •3.2.2. Происхождение и роль микрофлоры здоровой пчелиной семьи.
- •3.2.3.Микрофлора ульев здоровой пчелиной семьи.
- •3.2.4.Влияние гигиенических условий углекислого газа в гнезде на семьи пчел.
- •3.2.5. Защитные свойства внешних покровов пчел от микрофлоры.
- •3.2.6. Получение хитозана из подмора пчел.
- •3.2.6.1.Характеристика подмора пчел.
- •3.2.6.2 Депротеинирование
- •3.2.6.3. Деацетилирование
- •3.2.6.4. Ферментативный гидролиз хитозана
- •3.2.7.Технология переработки подмора пчел.
- •3.2.8.Технология введения пчелозана (хитозана) в зубные пасты.
- •3.2.9.Клинические испытания зубной пасты «Пчелка».
- •5. Список литературы.
3.1.2.3.2.Идентификация микроорганизмов.
Идентификация микроорганизмов проводилась традиционными методами с использованием элективных питательных сред, морфологических особенностей микроорганизмов и особенностей ферментативных систем объектов исследования. В данном разделе приводится пример методологии последовательности и спектра питательных сред для идентификации бактерий сем. Еп1егоЬас1епасеае.
Идентификация бактерий сем.Еп1егоЬа^епасеае.
Пробу приготовленную методом разведения чистой культуры согласно стандарту мутности 102 - 103 КОЕ / см3 в количестве 10 см3 вносят в 50 см3 питательной Среды №3 , перемешивают и инкубируют при температуре 32°С в течение 24-48 часов. При наличии роста делают пересев на чашки со средой № 4 и № 5 . Посевы инкубируют при температуре 32° С в течение 24 -48 часов.
Морфологические характеристики бактерий сем.Еп!егоЬас1епасеае на диагностических средах.
Диагностическая среда Среда№4 Среда №5
Колонии круглые , Черные колонии с малиновые с характерным
металлическим блеском металлическим блеском или без ,участки Среды под
него,розовые,бесцветны колониями окрашены в е , блестящие , черный цвет ,
выпуклые ,диаметром зеленовато -бурые 2-4 мм. колонии, светло-
зеленые , бурые.
Окраска по Грамму Грамотрицательные неспорообразующие
Палочки
Если после инкубации на средах №4 и №5 не будет колоний , соответствующих морфологическим характеристикам,данной таблице , считают, что в пробе нет бактерий ceM.Enterobacteriaceae.
Колонии ,подозрительные по морфологии , пересевают на скошенную среду №1. Инкубируют при температуре 32°С в течение 19-24 часов. Культуру проверяют на чистоту и делают пересевы на Среды №6 и №7. После посевов в половине пробирок со средой №6 вносят по 0,5 стерильного вазелинового масла. Высевы инкубируют при температуре 32°С в течение 19-24 часов. При наличии роста , ферментацию глюкозы устанавливают по изменению цвета Среды №6 из красного в желтый в пробирках с маслом и без него. О наличии нитратов в среде №7 судят по появлению красного окрашивания при внесении в среду реактива Грисса . Параллельнор исследуют чистые культуры на наличие фермента цитохромоксидазы.
Тест на наличие нитритов.
К суточной исследуемой культуре на среде №7 приливают 0,2-0,3 см3 реактива Грисса , погружая пипетку до дна пробирки. Появление красного окрашивания свидетельствует о наличии нитритов.
Тест на наличие цитохромоксидазы.
Полоску бумаги смачивают реактивом и наносят , бактериальной петлей или стеклянной палочкой суточную чистую культуру исследуемых бактерий со скошенной Среды №1. Синее окрашивание , появляющиеся через 2-5 мин., свидетельствует о положительной оксидазной реакции.
Выявление и идентификация бактерий родов Pseudomonas и Staphylococcus.
Приготовленную пробу в количестве 10 см3 вносят в 50 см3 питательной Среды №8, перемешивают и инкубируют при температуре 32° С в течение 2448 часов. При наличии роста делают пересевы петлей на Среды №9 и № 10 , разлитые в чашки Петри. Посевы инкубируют при температуре 32°С в течение 24-48 часов.Морфологическая характеристика рода Pseudomonas на диагностической среде №9.
Характерная морфология колоний Окраска по Граму
Зеленоватые , как правило , Грамотрицательные флюоресцирующие колонии, неспорообразующие палочки
голубые в ультрафиолетовом свете
Морфологическая характеристика рода Staphylococcus на диагностической среде №10.
Характерная морфология колоний Окраска по Граму
Золотисто-желтые колонии , Грамположительные кокки окруженные желтыми зонами расположенные грозями
При наличие на среде №9 характерных для Pseudomonas колоний грамотрицательных неспорообразующих палочек , обладающих специфическим запахом и выделяющих сине-зеленый
пигмент пиоцианин в питательный агар , культуру проверяют на наличие фермента цитохромоксидазы. Для этого , подозрительные по морфологии колонии отсеивают на скошенную среду №1 и инкубируют при температуре 32°С в течение 19-24 часов.
Наличие на среде №10 золотисто-желтых колоний грамположительных кокков , окруженных желтыми зонами , свидетельствует о ферментации маннита. Подозрительные колонии отсевают на скошенную питательную среду №1 и на чашки с кровяным агаром. Чистую культуру стафилококка исследуют на наличие фермента цитохромоксидазы.
Тест на наличие цитохромоксидазы.
Для проведения реакции используется сухая кроличья плазма промышленного производства, которую разводят согласно наставлению по применению.
обладают гемолитичекой активностью проба контаминирована бактериями рода Staphylococcus.
В данном подразделе приведен методологический подход по идентификации микроорганизмов .Полный набор питательных сред и методик более детально изложен в рамках литера-туры, посвященной данному направлению исследования.(Берджи,1997)
