- •Учебное издание
- •Кровь убойных животных с основами ее переработки и санитарной оценки
- •614090, Г. Пермь, ул. Петропавловская, 23 тел. 210-35-34
- •Введение
- •1. Состав крови
- •Основные физиологические константы крови
- •Среднее содержание основных составных частей крови (в %)
- •2. Физико-химические свойства крови
- •Средние величины относительной эффективности (в %) буферных систем плазмы крови и эритроцитов
- •3. Функции крови
- •4. Основные методы исследования крови для оценки состояния здоровья животных
- •4.1. Техника взятия крови животных для исследования
- •4.2. Измерение соэ по методу Панченкова
- •4.3. Подсчет эритроцитов в камере Горяева
- •4.4. Определение концентрации гемоглобина по методу Сали
- •4.5. Подсчет лейкоцитов в камере Горяева
- •4.6. Выведение лейкоцитарной формулы (лейкограммы)
- •4.7. Определение группы крови с помощью моноклональных антител
- •Интерпретация результатов реакции агглютинации исследуемой крови с Анти-а, Анти-в и Анти-ав
- •4.8. Биохимические исследования
- •Средние биохимические показатели сыворотки крови у различных видов животных
- •12. Список использованных терминов и сокращений
4. Основные методы исследования крови для оценки состояния здоровья животных
Кровь является универсальной и доступной для прижизненных исследований внутренней среды организма, состав и свойства которой объективно отражают состояние здоровья животных. Поэтому лабораторные и биохимические исследования крови широко используются в ветеринарии.
В то же время, следует помнить, что кровь – это живая ткань. Ее свойства зависят от многих других, не связанных со здоровьем, но влияющие факторов и, в первую очередь, от времени суток и режима приема корма. Следовательно, забор крови у живых животных для лабораторных исследований необходимо производить в одно и то же время суток (как правило, утром) и обязательно на голодный желудок (до кормления). В питомниках кровь исследуют от 5-10% поголовья собак, а если питомник небольшой, то у всех животных.
4.1. Техника взятия крови животных для исследования
Перед взятием крови, кожу в участке манипуляции выстригают или выбривают, а при необходимости моют теплой водой с мылом, просушивают марлевой салфеткой и дезинфицируют спиртом или 5% спиртовым раствором йода. Инструменты стерилизуют.
Животных фиксируют с соблюдением требований техники безопасности и проводят подготовку кожи, как отмечено выше.
В зависимости от вида животного и количества необходимой для исследования крови, участок (место) взятия прокалывают кожу и стенку кровеносного сосуда стерильной иглой (или скарификатором), или стерильными ножницами надрезают кожу.
Небольшое количество крови у лошади, КРС и свиньи берут путем прокола стерильной иглой ушной вены или надреза скальпелем кончика уха. Выступившую первую каплю крови, обязательно удаляют стерильной ватой, а следующие капли берут в пробирку для исследования.
У лошадей и крупного рогатого скота большой объем крови удобнее брать из левой яремной вены на границе верхней и средней трети шеи. Для этого, ниже подготовленного для взятия крови места, накладывают вокруг шеи жгут или сдавливают вену большим пальцем левой руки. Это способствует наполнению вены кровью, и она хорошо просматривается. Берут кровопускательную иглу в правую руку и быстрым движением вводят в сосуд под углом 45 градусов против тока крови. Вытекающую из иглы кровь собирают, направляя по стенке в пробирку. Перед извлечением иглы из сосуда снимают жгут или перестают сдавливать вены пальцем. Место прокола придерживают ватой, смоченной спиртом, иглу вытаскивают, кожу протирают спиртом.
У свиней большой объем крови получают при отрезании кончика хвоста стерильным скальпелем или ножницами. После взятия крови надрез хвоста дезинфицируют, а его кончик, выше раны, несколько минут сдавливают бинтом или резиновым кольцом.
Полученную от животных цельную кровь, как правило, стабилизируют антикоагулянтом (например, 2% раствором гепарина - 3-4 капли на 10 мл крови) и после этого приступают к исследованиям.
4.2. Измерение соэ по методу Панченкова
На оседании эритроцитов в неподвижной и не свёртывающейся крови, основано определение СОЭ (скорости оседания эритроцитов). Она измеряется в течение определенного времени (обычно 1 часа) и выражается в миллиметрах высоты столбика освободившейся от форменных элементов плазмы. Интенсивность оседания эритроцитов, в основном определяется степенью их слипания друг с другом. Размеры образующихся при этом агрегатов главным образом, зависят от силы взаимного отталкивания электрически заряженных поверхностей соседних эритроцитов. Степень агрегации (а значит и СОЭ) повышается при нейтрализации этих зарядов присутствующими в плазме белками (например, фибриногеном и иммуноглобулинами), гормонами и многими другими веществами.
Скорость оседания эритроцитов возрастает у животных со многими патологическими процессами в организме. Поэтому определение данного показателя широко используется как в клинике, так и при исследовании состояния убойных животных.
Чаще всего увеличение СОЭ связано с воспалительными процессами. В то же время, оно может наблюдаться при анемиях, злокачественных новообразованиях и в период беременности. Замедляют СОЭ: увеличение содержания альбуминов в плазме крови, эритроцитозы и гепатиты.
У животных СОЭ видоспецифична: наиболее быстро оседают эритроциты непарнокопытных (например, лошади), медленно - у жвачных.
Ход работы: В капилляр Панченкова (рис. 3.) набирают один раз 5% раствор лимоннокислого натрия до метки Р, и выпускают в центр часового стекла.
Затем дважды набирают до метки К, кровь и каждый раз аккуратно выдувают ее на часовое стекло в раствор лимоннокислого натрия, тщательно перемешивая кончиком капилляра. Наполняют полученной смесью капилляр до метки К, и укрепляют его строго вертикально в аппарате Панченкова.
Через определенное время, по шкале на капилляре, измеряют в миллиметрах высоту свободного от эритроцитов слоя плазмы.
|
|
