- •Лабораторная работа № 7
- •Задание:
- •Культивирование одноклеточных водорослей
- •4. Выращивание водорослей
- •Методы массового культивирования кормовых беспозвоночных
- •Технология разведения ракообразных
- •Культивирование дафнии магна
- •Разведение моин
- •Технология получения Artemia salina
- •Разведение стрептоцефала
- •Разведение коловраток
- •Разведение олигохет
- •Разведение дождевого червя
- •Разведение хирономид
- •Разведение трубочника
Разведение моин
Моины относятся к тому же семейству (Daphniidae), что и дафнии, но к другому роду (Moina). Моина (рис. 4) неприхотлива к кислороду и легко переносит высокую окисляемость среды.
Рисунок 4 – Моина
Для культивирования моин используют бетонные бассейны размером 2,5×1,5×0,7 м. На 1 м3 воды вносят 500 г кормовых дрожжей.
Для получения M. macrocopa в закрытом помещении используют обогреваемые бассейны, расположенные в два яруса. В помещении располагаются один над другим 20 дюраллюминевых бассейнов длиной 2,5 м, шириной 1,5 м и высотой 0,7 м каждый. К бассейнам, помимо водопроводных труб, подающих воду, подведены трубы парового отопления, которые проходят по дну бассейна. Температура воды в бассейнах поддерживается на уровне 25-30°С. При зарядке 30-40 г/м3 моин культуру подкармливают дрожжами по 50 г/м3 каждые 2 дня. Продукция моин в культиваторах составляет 40-50 г/м3 в сутки.
Существует несколько типов культивирования Cladocera: непроточный, проточный, а также различные сочетания этих двух типов.
В одноканальной системе вода и корма поступают с культивируемыми животными, а оттуда вместе с водой уходят продукты метаболизма и образовавшаяся в культуре конечная продукция культивируемых животных.
В двухканальной системе вода или вода с кормом поступают в культиватор, а затем вместе с метаболитами и полезной продукцией животных выходят из культиватора. По второму каналу в культиватор подаются корма или происходит съем продукции животных.
В трехканальной системе поступление воды и выход ее с метаболитами идут по одному каналу, а подача кормов и съем продукции животных по двум другим каналам.
В комбинированной системе вода или вода с кормами подается сначала по одному каналу в большой резервуар, а оттуда по многим каналам поступает в емкость с культивируемыми животными. Вода с продуктами обмена уходит из агрегата по многим каналам и затем попадает в один общий канал.
Технология получения Artemia salina
Artemia salina (рис. 5) обитает в ультрагалинных водоемах. Полученные из яиц науплиусы артемии являются хорошим кормом для выращивания в заводских условиях мелких личинок рыб (осетровые, лососевые). На более поздних стадиях развития рыб используют не только науплиусов, но и артемию.
Для практического использования в рыбоводстве представляют интерес покоящиеся (диапаузирующие) яйца артемий. Находящиеся в покоящихся яйцах эмбрионы могут переносить неблагоприятные внешние условия. После периода диапаузы при благоприятной температуре и высоком содержании в воде кислорода в яйце продолжается развитие эмбриона, которое завершается через 24-48 ч, после чего оболочка разрывается и науплиусы выходят во внешнюю среду.
Рисунок 5 – Внешний вид Агtemia salina:
а - взрослая форма; б – науплиус
Технология массового получения науплиусов артемии включает следующие этапы: заготовку и очистку, хранение, активацию и инкубацию яиц. Сбор производят на ультрагалинных водоемах.
На рыбоводных предприятиях используется способ получения науплиусов из яиц артемии, разработанный Богатовой И.Б., предусматривающий активацию яиц перекисью водорода и инкубацию в солевом растворе с аэрацией.
Для
активации яиц используют 33% раствор
перекиси водорода в количестве 0,1-0,3 мл
на 1 л солевого раствора. При массовой
инкубации яиц целесообразно использовать
стеклянные сосуды типа аппаратов Вейса
емкостью 8 и 50 л. В инкубационный аппарат
наливают 5%-й раствор поваренной соли,
закладывают в него покоящиеся яйца
артемии, содержащие 80% живых эмбрионов,
из расчета 10 г на 1 л солевого раствора
и обеспечивают аэрацию среды с помощью
компрессоров. В инкубационный аппарат
с яйцами добавляют 0,2 мл 33%-го раствора
Н2О2
на 1 л солевого раствора и совершают
инкубацию при температуре 20°С. Через
48 ч берут пробу для определения процента
выклева науплиусов. После завершения
выклева отключают систему аэрации,
науплиусов процеживают через сачок из
капронового сита, отмывают от скорлупы
и используют на корм рыбе.
