Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Материал по Микробиологии для рыб_2017.doc
Скачиваний:
0
Добавлен:
01.07.2025
Размер:
895.49 Кб
Скачать

Взятие и пересылка исследуемого материала для проведения бактериологического исследования

При взятии и пересылке руководствуются соответствующими инструкциями, а также следующими правилами. Исследуемый материал берут стерильными инструментами в стерильную посуду.

Больных или подозрительных по заболеванию инфекционными и инвазионными болезнями рыб доставляют в лабораторию в живом виде.

1. Рыб перевозят в емкостях, предназначенных для перевозки живой рыбы, заполненных на 3/4 объема водой из того же водоема, откуда взята рыба. Рыба, доставленная в лабораторию в бумаге, марле и др. упаковочных материалах, для исследования непригодна.

При отсутствии возможности доставить живую рыбу, у крупных рыб берут кусочки пораженных органов и тканей, помещают их в стерильную стеклянную посуду (жабр, печени, почек, селезенки, сердца, головного мозга ), заливают стерильным 40%-ным водным раствором глицерина, закрывают пробкой, составляют сопроводительный документ и направляют с нарочным в лабораторию.

Мелких рыб (мальки, сеголетки) можно отправлять и фиксировать целиком.

Кишечник перед фиксацией осторожно вскрывают или делают на нем несколько надрезов, чтобы фиксирующая жидкость проникла в его полость.

2. Жидкий патологический материал (кровь, экссудат и др.) доставляют в лабораторию в запаянных стерильных пастеровских пипетках, или в шприцах, пробирках, тупферах.

Кровь для исследования берут из хвостовой артерии или из сердца. Чешую на месте взятия крови слущивают скальпелем, кожу вытирают от слизи и дезинфицируют 70%- ным спиртом. Кровь насасывают в пастеровскую пипетку.

Кровь для исследований берут пастеровской пипеткой из хвостовых сосудов (артерии и вены) или из сердца с соблюдением правил асептики и антисептики (рис. 1). Взятую кровь используют для посева, приготовления мазков, гематологических и биохимических исследований. Цельную кровь стабилизируют гепарином (1000 ЕД/мл) или лимоннокислым натрием. Сыворотку крови получают общепринятым методом, помещают в стерильные запаянные ампулы, а летом консервируют 5%-ным раствором фенола (1—2 капли на 1 мл сыворотки) или тиомерсалом из расчета 10 мг препарата на 10 мл сыворотки. Отобранные жидкие материалы перевозят в термосе со льдом.

Рис.1. Места взятия крови из хвостовых сосудов карпа:

1 - у сеголетков; 2 - у карпов старшего возраста.

Правила фиксации мелких рыб (мальки и сеголетки) после вскрытия брюшной полости фиксируют целиком, а от крупных берут органы или кусочки органов размером 2х3 см и толщиной 0,5-1,0 см.  Независимо от степени поражения берут кусочки из различных органов, фиксируют 40%-ным водным раствором глицерина, солевым раствором и кусочками льда.

3. Отбор проб воды из больших водоемов производится в нескольких местах. Пробы, берут на глубине 10-15 см от поверхности и не менее 10-15 см от дна.

Способы отбора проб воды могут быть различными, но обязательным условием является соблюдение асептики и взятие материала в стерильную посуду. Пробы воды в количестве 500 мл отбирают в стерильную посуду с притертой пробкой. Наполняют флаконы с таким расчетом, чтобы при транспортировке не замочить пробку. Посуду и батометры стерилизуют, завернутыми в бумагу и разворачивают их непосредственно перед взятием проб воды.

Пробы воды исследуют не позднее, чем через 2 ч после отбора. При невозможности выполнения этих условий допускается проведение анализа не позднее, чем через 24 ч после отбора проб, сохраняя их при температуре от 1 до 5°С . Посуду с пробами упаковывают в сумки--холодильники.

Отобранные пробы сопровождаются документом, содержащим следующие сведения:

- точное месторасположение водоема;

- дату отбора;

- количество отобранных проб и место их отбора;

- цель исследования: сделан ли отбор в порядке текущего санитарного надзора или по особым показаниям (сигналы об эпизоотологическом неблагополучии и т.д.);

4. Грунт для исследования берут в количестве 2 кг с поверхности дна водоема дночерпателем Экмана и Кирпичникова, соблюдая правила асептики (Рис.2). На исследуемый материал по специальной форме составляют сопроводительный документ и посылают в лабораторию с нарочным. Обследуют до и после проведения оздоровительных мероприятий в частности дезинфекции и др.

Пробы отбирают выше предпологаемого источника загрязнения, в месте поступления сточных вод и на различном расстоянии в нескольких точках ниже места выпусков стоков на течении и в застойных зонах(ямах,низинах). Грунт высушивают на воздухе, растирают в ступке, просеивают через мелкое сито и упаковывают в банки или полиэтиленовые мешочки по 50 гр.

5. Планктон собирают планктонной сеткой, фильтруя такое количество воды, которое необходимо для получения около 50 г живой массы планктона.

Материал для исследования отправляют комиссионно, весь материал (пробы воды, грунта, планктона и рыб) упаковывают в водонепроницаемую тару, составляют акт и сопроводительный документ и отправляют в лабораторию с нарочным.

Рис. 2. Приспособления для взятия проб грунта и планктона:  Л — скребок; Б — дночерпатель; В — планктонная сетка.