- •Патобиохимия амилоидоза
- •1. Введение
- •2. История изучения и заблуждения
- •3. Виды амилоидоза и причины их возникновения
- •4. Биохимическая классификация типов амилоидоза
- •5. Сопоставление патоморфологической и биохимической классификации амилоидоза
- •6. Роль клеточного компонента в развитии амилоидоза
- •7. Структура амилоидных отложений. Амилоидные фибриллы. Механизм образования фибриллярного компонента амилоида.
- •9. Диагностика амилоидоза. Принцип окраски конго рот. Понятие о «классическом» и ахроматичном амилоиде. Другие методы диагностики.
- •8. Семейный амилоидоз, влияние генетических факторов на развитие. Роль генетического анализа в диагностике af.
- •10. Заключение.
8. Семейный амилоидоз, влияние генетических факторов на развитие. Роль генетического анализа в диагностике af.
Семейный амилоидоз – патологическое состояние, которое характеризуется выпадением амилоидных отложений в тканях организма, связанное с генетической патологией.
До внедрения в практику методов генетической диагностики и установления причин патологии регистрировались схожие случаи амилоидоза, не имеющие четкой систематики. В результате такого процесса в клинику внедрились понятия: «португальский тип амилоидоза», «японские случаи амилоидоза», «английский амилоидоз», «датский амилоидоз» и др.
В дальнейшем с накоплением случаев амилоидоза в разных странах, предположительно носящих наследственный характер, была сформирована клиническая классификация наследственных патологий, связанных с отложение амилоида в тканях:
Тип I (ANDRARE)
Тип II (RUVINA)
Тип III (VAN ALLEN)
Тип IV (MERETOJA)
Однако такая классификация наследственных амилоидозов столкнулась с двумя существенными проблемами – невозможностью классифицировать отдельные случаи патологии и непригодностью ее для патоморфологов вследствие ее основания только на клинических симптомах.
В настоящее время с развитием генетического анализа была сформирована классификация амилоидоза, основанная на определении гена, вовлеченного в развитии того или иного вида патологии:
AF, ассоциированный с геном транстеритина (TTR-ген)
AF, ассоциированный с геном аполипопротеина А-I (AApoAI-ген)
AF, ассоциированный с геном аполипопротеина А-II (AApoAII-ген)
AF, ассоциированный с геном гельзолина (Agel-ген)
AF, ассоциированный с геном фибриногена (AFIB-ген)
AF, ассоциированный с геном лизоцима (Alys-ген)
Такой подход к классификации амилоидной патологии дает возможность четко отграничить один случай амилоидоза от другого и существенно упрощает диагностику заболевания, что соответственно ведет к назначению рационального лечения.
Наиболее часто семейный амилоидоз, связан с нарушением в гене TTR, расположенном в 18 хромосоме и состоящем из 4 экзонов. Этот ген отвечает за синтез транстиренина, который отвечает за транспорт тироксина и ретинола. Точный патогенез развития заболевания в настоящий момент не установлен. Однако имеется предположительная схема развития заболевания:
Повреждение гена TTR (в настоящее время выявлено больше 80 видов повреждений) →синтез аномального TTR-белка→ формирование амилоидных фибрилл
В результате замены одного нуклеотида в гене TTR (кроме мутации Vall22 – деление целого кодона) наблюдается синтез аномального TTR-белка, который обнаруживается в составе фибрилл амилоида.
Случаи амилоидоза, ассоциированного с другими мутациями (мутации в генах AApoAI, AApoAII и др.) имеют ограниченное количество.
9. Диагностика амилоидоза. Принцип окраски конго рот. Понятие о «классическом» и ахроматичном амилоиде. Другие методы диагностики.
Для диагностики амилоидоза в практической медицине используют окраску препаратов азокрасителем конго рот (красный), а так же их исследование в поляризационном свете.
Конго рот, являясь азокрасителем, реализует свой окрашивающий эффект, благодаря взаимодействию с аминокислотами в белковых молекулах, в частности с тирозином:
Совершенно ясно, что интенсивность окрашивания таким красителем зависит от аминокислотного состава белковой молекулы, чем больше концентрация аминокислот, способных взаимодействовать с азокрасителями, тем интенсивнее окраска. При пониженном содержании тирозина в отложениях окраска может вовсе не проявляться. Сам же аминокислотный состав белков, входящих в амилоидные отложения, можно определить путем использования электрофореза, гель-фильтрации с последующим проведением бумажной хроматографии.
Для более точного морфологического исследования амилоидной патологии возможно применение трех стандартных реакций, определяющих амилоидные отложения:
Реакция с йодом и йодом; серной кислотой – при обработке люголевским раствором йода ткани амилоидные отложения приобретают красно-бурый цвет; при дальнейшем воздействии 10% раствором серной кислоты на препарат отложения становятся синими, а в последующем грязно-зелеными.
Реакция с метилвиолетом и генцианвиолетом – при обработки тканей данными красителями амилоидные отложения приобретают красный цвет на розовом фоне.
Реакция с йодгрюном – амилоид окрашивается в красный цвет, а подлежащие ткани в зеленый.
В редких случая результаты реакций не совпадают из-за непостоянного химического состава амилоида, в таких случаях говорят о ахроматичных амилоидных отложениях.
Особенности связывания некоторых белковых молекул красителя конго рот послужили разработки реакции с раствором перманганата калия для отличия разных форм амилоидоза. Так амилоидные отложения при реактивном амилоидозе и DRA удерживают непрочно молекулы красителя, в результате чего происходит их обесцвечивание при обработке KMnO4. При других формах патологии такого эффекта не наблюдается.
Одним из передовых методов диагностики амилоидоза служит исследование препаратов в поляризационном свете. При «классическом» варианте амилоидоза отложения амилоида приобретают яблочный цвет. Однако в ограниченных случаях этого не наблюдается.
Такое отсутствие света связывают с конформацией белков амилоида и прохождением луча света. В «классическом» варианте конформация белковых молекул, входящих в состав амилоидных фибрилл , дают возможность красителю ложиться параллельно оси фибриллы, следовательно возможность прохождения через него луча света. При изменении конформации амилоидных белков и самого F-компонента молекулы красителя не располагаются параллельно оси фибриллы и прохождение луча света становится невозможным, следовательно, зеленое свечение не наблюдается. Именно этот процесс не позволяет исследовать большое количество фибриллярных белков по такой методике, например эластин.
