2. Колориметрические методы. К ним относятся:
метод Сомоджи — реакция восстановления меди, находящейся в составе меднотартронового реактива, до закиси меди. Метод трудоемок, многостадиен, неспецифичен и в настоящее время практически не используется;
метод Фолина‑Ву — реакция восстановления тартрата меди в закись. Метод прост, недостатком является отсутствие строгой пропорциональности между интенсивностью получаемой окраски и концентрацией глюкозы;
определение концентрации глюкозы по Моррису и Роэ — дегидратация глюкозы под действием серной кислоты и превращение ее в оксиметилфурфурол, который конденсируется с артроном в соединение синего цвета. Требует чистейших реактивов и четкого соблюдения постояной температуры реакции;
ортотолуидиновый метод Гультмана в модификации Хиваринена-Никкила, состоящий в определении интенсивности окрашивания раствора, возникающего при взаимодействии ароматического амина ортотолуидина с альдегидной группой глюкозы в кислой среде. Этот способ точен и дает возможность более специфичного определения содержания глюкозы.
анилиновый метод, сохраняет чувствительность ортотолуидинового метода, но еще более специфичен.
3. Ферментативные методы:
основанный на гексокиназной реакции. Глюкоза под действием гексокиназы фосфорилируется за счет АТФ, образовавшийся Гл‑6‑Ф в присутствии дегидрогеназы восстанавливает НАДФ. Количество последнего определяют по увеличению светопоглощения в ультрафиолетовой области. Метод слишком дорогостоящий для практических лабораторий.
основанные на окислении глюкозы до глюкуроновой кислоты с помощью фермента глюкозооксидазы и образовании в ходе реакции перекиси водорода, которая (в разных модификациях):
◊ определяется химическим путем; |
◊ при участии пероксидазы окисляет бесцветный ортотолидин, превращая его в окрашенное соединение зелено‑голубого цвета, прямолинейность зависимости окраски от концентрации глюкозы сохраняется в диапазоне от 1,1 до 22 ммоль/л; |
◊ в присутствии фенола при участии пероксидазы окисляет 4‑аминоантипирин в окрашенное соединение розово-малинового цвета; |
◊ в присутствии ионов меди окисляет фенолфталин до фенолфталеина, который в щелочной среде окрашен в красный цвет. |
4. Электрохимические методы, в которых используются электроды, содержащие иммобилизованные ферменты, в частности, глюкозооксидазу. Реакция регистрируется по количеству образованной перекиси водорода или по убыли кислорода, израсходованного на окисление глюкозы.
5. Диагностические полоски,использующие глюкозооксидазно ‑ пероксидазную реакцию и производные бензидина в качестве хромогена.
В качестве унифицированных принято три метода: титрометрический метод Хаггедорна-Йенсена, ортотолуидиновый метод и глюкозооксидазный метод с окислением о‑толидина.
Определение содержания глюкозы ортотолуидиновым методом
Принцип – глюкоза при нагревании с ортотолудином в присутствии серной кислоты дает сине-зеленое окрашивание.
Нормальные величины
Цельная кровь (указанный метод) |
3,9‑5,5 ммоль/л |
Плазма (тот же) |
3,9‑5,5 ммоль/л |
Моча (тот же) |
0,06‑0,83 ммоль/л |
или < 2,78 ммоль/сут |
Определение содержания глюкозы глюкозооксидазным методом
Глюкозооксидазным методом можно определять количество глюкозы в сыворотке и плазме крови, цельной крови и спинномозговой жидкости.
Принцип – при окислении глюкозы кислородом воздуха при каталитическом действии глюкозооксидазы образуется эквимолярное количество перекиси водорода. Под действием пероксидазы перекись водорода окисляет 4‑аминоантипирин в присутствии фенола в окрашенное соединение розово‑малинового цвета, определяемое фотометрически.
Нормальные величины
Цельная кровь (ферментный с фенолом и аминоантипирином) |
||
|
новорожденные |
2,22‑4,44 ммоль/л |
|
дети |
3,33‑5,55 ммоль/л |
|
взрослые |
3,9‑5,5 ммоль/л |
Сыворотка (тот же) |
4,2‑6,6 ммоль/л |
|
Цельная кровь (ферментный с ортотолидином) |
3,1‑5,5 ммоль/л |
|
Сыворотка и плазма (тот же) |
3,0‑5,5 ммоль/л |
|
Ликвор (тот же) |
дети |
3,33‑4,44 ммоль/л |
взрослые |
2,75‑3,85 ммоль/л |
|
