- •1. Строение молекулы днк: химический состав мономерных звеньев
- •7. Механизм реакции полимеризации днк и его катализ. Экзонуклеазные
- •8. Характеристика днк-полимерз e.Coli: размеры, субъединичный состав,
- •9. Структура днк-полимеразы III e.Coli, функции ее отдельных
- •10. Характеристика днк-полимераз эукариот: размеры, субъединичный
- •11. Структура вилки репликации: события на ведущей и отстающей нитях.
- •12. Регуляция инициации репликации у e.Coli: структура участка старта
- •13. Механизм репликации концов линейных хромосом эукариот с
- •14. Прямая репарация тиминовых димеров, алкилированных оснований и
- •15. Репарация неправильно спаренных оснований с помощью комплекса
- •16. Эксцизионная репарация оснований.
- •17. Эксцизионная репарация нуклеотидов с помощью белков uvrAbc.
- •19. Рекомбинационная репарация.
- •20. Механизм общей (гомологичной) рекомбинации: образование
- •21. Сайт-специфическая рекомбинация (механизм интеграция фага λ в
- •22. Характеристика is-элементов и транспозонов бактерий: структура и
- •23. Характеристика днк-транспозонов эукариот: структура, механизм
- •24,25(И на 24, и на 25 вопрос один ответ) Ретротранспозоны с длинными концевыми повторами: структура,
- •26. Понятие о кодирующей и некодирующей (матричной) цепях днк.
- •У прокариот имеется 2 типа рнк-полимеразы: одна из них синтезирует рнк-затравки для фрагментов Оказаки, а другая – все остальные типы рнк.
- •27. Особенности структуры рнк-полимеразы e.Coli: кор-фермент и
- •28. Альтернативные σ-факторы и их роль в инициации транскрипции.
- •29. Характеристика рнк-полимераз I, II и III эукариот: структура и синтезируемые ими молекулы.
- •30. Структура бактериального промотора и механизм его распознавания
- •31. Завершение транскрипции у прокариот: Rho-зависимые и независимые
- •36. Энхансеры, сайленсеры и изоляторы транскрипции.
- •37. Характеристика днк-связывающих доменов факторов транскрипции
- •38. Модификация 5' и 3'-концов молекул мРнк эукариот. Ферменты и
- •39. Процессинг пре-тРнк: формирование 5'- и 3'-концов тРнк, сплайсинг
- •40. Механизм сплайсинга пре-мРнк в ядре: определение границ интронов,
- •41. Характеристика сплайсосомы: ее структурные компоненты, механизм
- •42. Аутосплайсинг на примере рРнк тетрахимены: инициация процесса,
- •43. Примеры рибозимов и катализируемых ими реакций (l-19 рнк,
- •44. Процессинг рРнк у прокариот и эукариот (участвующие в процессе
- •45. Матричная (информационная) рнк, ее структура и функциональные
- •46. Основные свойства генетического кода. Особенности кодового
- •47. Кодон и антикодон, принципы их взаимодействия. Принцип нестрогого
- •48. Аминоацилирование тРнк как необходимый этап трансляции:
- •49. ТРнк: первичная, вторичная и третичная структура, роль
- •50. Структура рибосом про- и эукариот, входящие в их состав рибосомные
- •51. Механизм инициации трансляции у прокариот. Инициирующие кодоны
- •52. Механизм инициации трансляции у эукариот. Белковые факторы,
- •53. Механизм элонгации трансляции. Фактор элонгации 1 (еf-Тu или еf-1
- •54. Механизм терминации трансляции у про- и эукриот. Терминирующие
- •Собственно терминация – снятие полипептидной цепочки с последней тРнк.
- •55. Энергетика синтеза белка: количество макроэргических связей,
- •56. Особенности синтеза белка, имеющего n-сигнальную
- •57. Фолдинг белков: молекулярные шапероны семейств Hsp60 и Hsp70 у
- •58. Рабочий цикл шаперонных комплексов GroEls и DnaKj-GrpE.
- •59. Деградация белков: 26s-протеасома эукариот.
- •60. Система убиквитинилирования белков эукариот.
- •61. Сенсорные механизмы эукариот с помощью рецепторов, сопряженных
- •62. Способы передачи сигнала в ядро в сигнальных путях tgFβ-Smad,
- •68. Семейства гомологичных генов. Ортологи и паралоги.
- •69. Псевдогены.
- •70. Типы повторяющихся последовательностей.
40. Механизм сплайсинга пре-мРнк в ядре: определение границ интронов,
роль аденилового (А) нуклеотида, находящегося в районе точки ветвления,
реакции трансэтерификации.
Образовываются структуры типа лассо, реакция трансэтерификации -перенос связей.
Ядерный
сплайсинг. Участв мяРНК-комплексы, сост
из РНК и белков способн связываться с
участками интронов благодаряналичию
у них комплемент последовательностей.
мяРНК формируют – сплайсосому U1
U2
U4
U5
U6
1. Связывание с 5’-сайтом сплайсинга мяРНП U1-инициирует сплайсинг (своим однонитевым 5’-концом) и ASF/SF2.
2. Связывание U2AF с пиримидиновым трактом и 3’-сайтом сплайсинга.
3. Связывание с точкой ветвления BBP (branch point binding protein), он помогает соединять U1 и ASF/SF2 с U2AF, т.е. сближать левый и правый сайты сплайсинга. Это комплекс Е.
4. Замена BBP на мяРНП U2 в точке ветвления с затратой АТФ. Это комплекс А. С этого момента пре-мРНК направляется на сплайсинг.
5. Присоединение тримера U5/U4/U6. U5 связывается с экзоном в области 5’-сайта, U6 – с U2. Это комплекс В1.
6. Высвобождение U1 позволяет тримеру U5/U4/U6 так сдвинуться, что U6 связывается с 5’-сайтом сплайсинга, а U5 – передвигается вглубь интрона. Это комплекс В2.
7. С затратой АТФ отсоединяется U4, высвобождая последовательность U6, которая благодаря этому приобретает шпилечную структуру, а оставшейся частью может связаться с U2. Связывание U2 с точкой ветвления и U6 c U2 формирует каталитический центр. Это комплекс С1.
8. Катализируется первая реакция трансэтерификации, в ходе которой ОН-группа аденина из точки ветвления осуществляет нуклеофильную атаку фосфора фосфодиэфирной связи между гуанином 5’-сайта и последним нуклеотидом левого экзона. В результате: а) между А и G образуется фосфодиэфирная связь, т.е. левый конец интрона замыкается на аденин, получается промежуточная структура типа лассо; б) связь между G и последним нуклеотидом левого экзона утрачивается.
9. U5 связывается с экзоном в области 3’-сайта. Затрата еще одной АТФ. Катализируется вторая реакция трансэтерификации, в ходе которой высвободившаяся ОН-группа левого экзона осуществляет нуклеофильную атаку фосфора фосфодиэфирной связи между G 3’-сайта и первым нуклеотидом правого экзона. В результате: а) между последним нуклеотидом левого экзона и первым нуклеотидом правого образуется фосфодиэфирная связь; б) связь между G 3’-сайта и первым нуклеотидом правого экзона утрачивается.
10. мРНК освобождается от мяРНП. Лассо размыкается.
Все взаимодействия мяРНК друг с другом и мяРНК с мРНК осуществляются по типу комплементарного связывания. мяРНК U5, например, в разное время связывается с левым и правым экзонами, поэтому в ее последовательности можно найти участок, частично комплементарный обоим экзонам.
Сплайсосома – 50-60S-комплекс мяРНП-частиц, участвующих в сплайсинге, и вспомогательных белковых факторов.
Ее состав:
5 мяРНК (U1, U2, U5, U4, U6), составляют около четверти всей массы сплайсосомы;
45 ассоциированных с мяРНК белков, все вместе мяРНП составляют почти половину массы;
70 белковых факторов сплайсинга: а) белки, необходимые для сборки сплайсосомы; б) белки, обеспечивающие связывание сплайсосомы с РНК-субстратом; в) белки, участвующие в каталитическом процессе;
~30 белков, ассоциированных со сплайсосомой и вовлеченных в другие стадии генной экспрессии, т.е. сплайсосома может служить еще и координирующим аппаратом.
Комплекс собирается последовательно на пре-мРНК, проходя через ряд интермедиатов. Сплайсосома сближает 5’- и 3’-сайты сплайсинга перед осуществлением реакций трансэтерификации. Сплайсинг проходит, только когда все компоненты в сборе.
мяРНК – малые ядерные РНК с рибозимной активностью, ключевые элементы, участвующие в сплайсинге мРНК.
Аппарат сплайсинга узнает короткие консенсусные последовательности на границе интронов и экзонов. В 5’-сайте сплайсинга (левом) инвариантны 2 основания – GU, в 3’-сайте (правом) – AG. Остальные основания консенсусных последовательностей видоспецифичны. Интронная последовательность также содержит точку ветвления с консервативным А и пиримидиновый тракт.
2 сенсорные системы растений
Особенности сенсорных систем растений:
1) практически нет тирозиновых рецепторных киназ
2) широко используются гистидиновые рецепторные киназы
3) основная часть киназ – серин-треониновые
4)мало рецепторов, ассоциированных с G-белками
5) нет Ras-зависимого пути, но МАР-киназные каскады есть.
6) вместо цАМФ используется цГМФ в роли вторичного мессенджера
7) нет JAK-STAT пути, TGF-β и ядерных рецепторов стероидов.
У резуховидки Таля широко распространены двухкомпонентные сенсорные системы.
Детекция фитохромом красного цвета – изменение под действием света активности и автофосфорилирование позволяет активировать при миграции в ядро нужные гены.
Растениям также необходимо иметь системы защиты от патогенов, ответ на воздействие является системы устойчивости к патогену, за счёт реакции гиперчувствительности. Интересно, что эволюция устойчивости к патогенам связана с активной рекомбинацией последовательностей (схоже как при образовании иммуноглобулинов), делеция одного из повторов приводит к образованию нового рецептора.
Два белка CLV1 и CLV2, образуют комплекс, активируемый молекулой CLV3, которая секретируется соседними клетками. CLV1 и CLV2 – это рецептор, а CLV3 – лиганд, в передаче сигнала участвует мономерный G-белок и киназа, в ингибировании участвует ГТФаза.
