- •Содержание
- •Предисловие
- •Работа 1. Определение эквивалента металла
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Форма отчета
- •Работа 2. Приготовление раствора определенной концентрации
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 3. Измерение теплового эффекта реакции нейтрализации
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Удельная теплоемкость стекла (Ст) равна 0,753 Дж/г·град, раствора (Ср) – 4,184 Дж/г·град, ρ – плотность раствора – 1 г/мл, V и с – объем и молярная концентрация кислоты (основания).
- •Работа 4. Скорость химической реакции
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 5. Химическое равновесие
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 6. Получение комплексных соединений
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 7. Окислительно-восстановитель-ные свойства соединений марганца
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 8. Буферные системы
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Образец ответа на контрольные вопросы:
- •Работа 9. Поверхностные явления. Адсорбция
- •Цель занятия:
- •Методические указания к выполнению работы: опыт 1. Определение поверхностной активности веществ
- •Опыт 3. Зависимость величины адсорбции от природы сорбента
- •Опыт 4. Зависимость величины адсорбции от природы растворителя
- •Образец ответа на контрольные вопросы:
- •С хема адсорбции
- •Работа 10. Хроматография
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Образец ответа на контрольные вопросы:
- •Работа 11. Структурообразование. Изоэлектрическая точка белков
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Образец ответа на контрольные вопросы:
- •Работа 12. Химические свойства металлов и сплавов
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 13. Метод комплексонометрии. Определение общей жесткости воды (для медико-профилактического факультета)
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 14. Метод комплексонометрии. Определение содержания кальция в плазме крови (для лечебно-профилактического и педиатрического факультетов)
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 15. Метод комплексонометрии. Определение содержания кальция в слюне (для стоматологического факультета)
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 17. Метод оксидиметрии. Определение массовой доли пероксида водорода в растворе методом перманганатометрии (для лечебно-профилактического и педиатрического факультетов)
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 18. Метод йодометрии. Определение содержания аскорбиновой кислоты в препарате (для лечебно-профилактического, стоматологического, педиатрического факультетов)
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 19. Метод йодометрии. Определение содержания свободного хлора в воде (для медико-профилактического факультета)
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 20. Фотоколориметрия. Определение содержания Fe (III) в минерализованной плазме крови (для лечебно-профилактического и педиатрического факультетов)
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 21. Фотоколориметрия. Определение содержания Fe (III) в питьевой воде (для медико-профилактического факультета)
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 22. Потенциометрический метод определения нитратов в овощах и фруктах (для медико-профилактического факультета)
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 23. Определение активной и общей кислотности желудочного сока методом потенциометрического титрования (для лечебно-профилактического и педиатрического факультетов)
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 24. Теория произведения растворимости. Образование осадков в организме человека и их растворение
- •Работа 25. Получение дисперсных систем
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 26. Сравнительная устойчивость и методы осаждения различных дисперсных систем
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 27. Растворы электролитов. Методы определения рН биологических жидкостей
- •Методические указания к выполнению работы:
- •Работа 28. Метод кондуктометрии. Определение электрической проводимости желудочного сока
- •Методические указания к выполнению работы:
Методические указания к выполнению работы:
ОПЫТ 1. Разделение медпрепаратов методом бумажной хроматографии (демонстрационный)
В пробирку налейте по 1 мл Н2О, толуола и 10 капель смеси, состоящей из растворов I2 и бриллиантового зеленого. Пробирку закройте пробкой и хорошо встряхните. Смесь разделится на две окрашенные зоны. Затем на полоске фильтровальной бумаги проведите стартовую линию карандашом на расстоянии 1 см от края. Поставьте точку в центре линии стеклянной палочкой, смоченной смесью I2 и «зеленки».
В стакан (100-150 мл) налейте 5 мл смеси растворителей (Н2О + толуол), опустите в эту смесь конец бумажной полоски и оставьте на некоторое время. Когда будет ясно видно два цветных пятна на бумаге, отметьте карандашом фронт распространения растворителя. Проведите прямую через центр нанесенной капли и образовавшихся пятен, измерьте расстояние от центра нанесенной капли до центра каждого пятна и занесите в табл. 12 полученные результаты.
Таблица 12
Название компонента смеси |
Длина пути компонента |
Длина пути фрон- та растворителя |
Величина коэффициента подвижности |
|
|
|
|
Объясните распространение цветных пятен, учитывая, что бумага отрицательно заряжена, вода полярный, а толуол неполярный растворитель.
ОПЫТ 2.
а) Разделение красителей методом бумажной
хроматографии
В стакан (100-150 мл) налейте 0,1 М раствор NaOH. Фильтровальную бумагу вырежьте полоской 30 мм и укрепите на проволоке. Простым карандашом нанесите стартовую линию на расстоянии 3 см от нижнего края полоски и финишную линию для растворителя на расстоянии от стартовой линии 7-8 см. На стартовой линии отметьте карандашом центры для четырех капель. Хорошо отточенными спичками нанесите чистые красители в отмеченные центры в следующей последовательности от левого края бумаги: 1) тимоловосиний; 2) метилкрасный; 3) фуксин.
На предметное
стекло нанесите по 1 капле фуксина и
метилкрасного и 2 капли тимоловосинего
красителя, а затем чистой спичкой
перемешайте капли и также нанесите
смесь на подготовленную бумажную
полоску. Затем опустите бумажную полоску
с нанесенными каплями в стакан с раствором
0,01 М NaOH
таким образом, чтобы проволока лежала
на краях стакана. Когда фронт растворителя
достигнет финишной прямой, выньте
полоску из стакана и аккуратно подсушите
над электроплиткой. Проведите параллельные
прямые из центра капель до финишной
прямой и замерьте это расстояние до
центра каждого цветного пятна. Заполните
такую же таблицу, как в опыте 1. У
читывая,
что формула фуксина
или: R(NH2)+3Cl-
т
имолового
синего
или: R/−SO3H(α1)
и
метилового красного СООН
или: R//−COOH(α2),
объясните распределение цветных пятен, если бумага отрицательно заряжена.
б) Разделение сахаров методом круговой бумажной
хроматографии
Выполнение: в фильтре диаметром 12-13 см вырежьте от края к центру полоску шириной 4-5 мм и отогните ее под прямым углом к плоскости фильтра. На расстоянии 0,5 см от центра фильтра по кругу нанесите капилляром раствор смеси сахаров и растворы чистых сахаров («свидетели»). Места нанесения капель (старт) отметьте предварительно карандашом. Капли аккуратно подсушите над электроплиткой. В чашку Петри налейте 10 мл смеси растворителей: бутанол-ацетон-вода (соотношение 7:2:1) и сверху поместите фильтр, погрузив вырезанный сектор в растворитель. Бумагу прижмите второй чашкой Петри. Когда фронт жидкости дойдет до края чашки, бумагу высушите и проявите сахар анилинфталатом. Зарисуйте хроматограмму. Данные занесите в табл. 12, как в опыте 1.
1. Дайте оценку использованного метода распределения по механизму и технике выполнения.
2. Укажите, какие из растворителей выполняют роль подвижных и неподвижных.
3. Укажите, какой компонент смеси обладает большей подвижностью и почему.
в) Разделение α-аминокислот методом радиальной бумажной хроматографии
Радиальную хроматографию проводят на бумаге в чашке Петри. Растворитель перемещается от центра к периферии и захватывает аминокислоты, которые распределяются на концентрических кругах и обнаруживаются после высушивания бумаги и обработки нингидриновым реактивом.
Выполнение: в фильтре диаметром 12-13 см вырежьте в центре отверстие диаметром 1,0 см. Простым карандашом разделите круг на четыре части и поместите его на ножку из фильтровальной бумаги в виде трубочки высотой 2 см, вставленной в отверстие диска. Диск держите за края, чтобы избежать появления пальцев на хроматограмме.
Отступив от центра 1 см в каждом секторе, отмерьте карандашом растворы индивидуальных α-аминокислот (1,2,3) и раствор их смеси (4). Бумагу просушите на воздухе в течение 10 мин.
На дно чашки Петри налейте 10 мл раствора смеси растворителей: бутанол-уксусная кислота-вода (соотношение 4:1:1) и сверху поместите фильтр, чтобы ножка упиралась в дно.
Бумагу накройте плотно второй чашкой Петри. Когда фронт жидкости дойдет до края чашки, бумагу пинцетом поместите в сушильный шкаф на 10 мин (90-100 оС) или просушите над электроплиткой.
Для выявления пятен хроматограмму опрыскайте нингидриновым раствором или сухую хроматограмму одним движением смочите раствором нингидрина, налитого в чашку Петри. Хроматограмму поместите на 5 мин в термостат с целью удаления растворителя и фиксации аминокислоты в виде отдельных полос, окрашенных в розово-фиолетовый цвет, где каждое пятно соответствует определенной аминокислоте. Зарисуйте хроматограмму или данные ее занесите в табл. 12.
ОПЫТ 3. Разделение ионов Fe3+, Cu2+, Co2+ методом колоночной хроматографии
На чистом предметном стекле смешайте по 2 капли растворов солей Fe2(SO4)3, CuSO4, Co(NO3)2. Чистой пипеткой по 1 капле (но не более трех капель) закапывайте в центр колонки с оксидом алюминия. Каждый ион в колонке образует определенное место (зону). Зарисуйте полученную хроматограмму и укажите положение зоны каждого иона смеси. Дайте оценку использованного метода разделения по механизму и технике выполнения. Объясните положение окрашенных зон в колонке.
ОПЫТ 4. Выделение из мочи хлоридов методом ионообменной хроматографии (демонстрационный)
В стаканчик налейте 4-5 мл мочи (разбавлена в 15 раз) и определите рН с помощью индикаторной бумаги. Медленно пропустите мочу через колонку с анионитом. Определите рН вытекающего раствора (по индикаторной бумаге). Затем колонку промойте водой до рН = 7, после чего извлеките ионы С1-. Для этого медленно пропустите через колонку 4 мл 1 М раствора NaOH.
Качественной реакцией с AgNO3 (1-2 капли) проверьте наличие ионов С1- в элюате. По окончании опыта промойте колонку водой до рН = 7 по индикаторной бумаге.
Напишите уравнения реакций ионного обмена при поглощении и элюировании.
КОНТРОЛЬНЫЕ ВОПРОСЫ:
1. Какие виды хроматографии вам известны?
2. Преимущество применения хроматографии перед другими методами анализа.
3. Разделите бром тимоловый синий и метиловый фиолетовый, зная, что их формулы R-SO3H и R//=N+(CH3)2Cl-. Объясните распределение окрашенных зон, если адсорбент (бумага) имеет отрицательный заряд.
4. Выделите ионы Са2+ из плазмы крови на катионите в Н-форме.
5. Разделите Hg2+ и Со2+ на колонке с А12О3. Напишите уравнения реакций, если проявить колонку NaOH до поглощения катионов. Напишите качественные реакции на Hg2+ и Со2+ с NaOH. Объясните предполагаемое положение окрашенных зон. укажите вид хроматографии по механизму и технике.
