
- •14. Заболевания желудочно-кишечного тракта новорожденных
- •14.1 Анатомические, функциональные и регуляторные особенности желудочно-кишечного тракта у новорожденных
- •14.2. Функциональные нарушения желудочно-кишечного тракта
- •14.3. Неинфекционные и инфекционно-воспалительные заболевания кишечника у новорожденных.
- •14.3.1.Неинфекционные диареи
- •14.3.1.2.Дефицит сахаразы-изомальтазы
- •14.3.2.Инфекционно-воспалительные заболевания кишечника.
- •14.3.2.1. Инфекционные заболевания кишечника (мкб 10: а 09).
- •14.3.2.2.Некротизирующий энтероколит новорожденных
- •14.3.2.3.Гастроэзофагеально-рефлюксная болезнь (гэрб)
- •14.3.2.4. Аллергические заболевания желудочно-кишечного тракта.
- •15. Болезни кожи, подкожной клетчатки, пуповинного остатка и пупочной ранки
- •15.1. Особенности кожи новорождённого и уход за ней.
- •15.3. Инфекционно-воспалительные заболевания кожи и подкожной клетчатки.
- •15.3.1. Стафилодермии.
- •15.3.2. Стрептодермии.
- •15.3.3. Кандидоз кожи и слизистых
- •15.4. Приобретенные неинфекционные состояния и болезни кожи
- •15.5. Врожденные неинфекционные заболевания кожи
- •15.6. Заболевания пупочного канатика, пупочной раны и сосудов
- •15.6.1. Неинфекционные заболевания пупочного канатика, пупочной раны и сосудов.
- •15.6.2. Инфекционные заболевания пупочной ранки, пуповинного остатка и пупочных сосудов
- •16. Поражения нервной системы в неонатальном периоде
- •Система оценки неврологического статуса новорождённого с перинатальной патологией нервной системы включает следующее.
- •1. Анализ пре- и интранатальных факторов риска перинатальной патологии нервной системы:
- •2. Клинические признаки патологии нервной системы у новорождённых:
- •16.1. Анатомо-физиологические особенности нервной системы у новорожденных детей и основные клинические синдромы.
- •Кт, мрт, позитронно-эмиссионная томография — не имеют диагностических преимуществ в периоде новорождённости перед нсг.
- •Травматические повреждения нервной системы.
- •16.7 Внутричерепная родовая травма
- •16.7.1 Эпидуральное кровоизлияние.
- •16.7.2 Субдуральное кровоизлияние
- •16.7.3 Субдуральное супратенториальное кровоизлияние
- •16.7.4. Субдуральное субтенториальное (инфратенториальное) кровоизлияние
- •16.7.5. Внутрижелудочковое кровоизлияние травматические
- •16.7.6. Паренхиматозное кровоизлияние (геморрагический инфаркт)
- •16.7.7. Субарахноидальное кровоизлияние травматическое
- •16.8. Родовая травма спинного мозга
- •16.9 Родовая травма периферической нервной системы.
- •16.9.1.Травматические повреждения плечевого сплетения.
- •16.9.2. Травматические повреждения диафрагмальных нервов (синдром Кофферата).
- •16.9.3. Травматическое повреждение лицевого нерва
- •16.9.4.Травматические повреждения других периферических нервов
- •16.9.5 Родовая травма костей и мягких тканей
- •17. Тактика ведения новорожденных при отдельных патологических состояниях и выполнение некоторых манипуляций в неонатологии
- •17. 1. Выполнение некоторых манипуляций в неонатологии
- •17.1.1. Чрезкожная катетеризация периферической вены
- •17.1.2. Постановка пупочного катетера
- •17.1.3. Кормление новорожденного через зонд
- •17.1.4. Люмбальная пункция
- •17.1.5. Подбор размера и контроль глубины стояния интубационной трубки
- •17.1.6. Профилактика травматических изменений мягких тканей носа на фоне проведения терапии срар на современном уровне
- •17.1.7. Катетеризация мочевого пузыря
- •17.1.8. Забор материала для микробиологического исследования.
- •17.2. Тактика ведения новорожденных при отдельных патологических состояниях
- •17.2.1. Шок у новорожденных
- •Выделяют дыхательный и метаболический варианты ацидоза.
- •17.2.3. Коррекция обменных нарушений (электролитов и глюкозы)
17.1.7. Катетеризация мочевого пузыря
Показания:
Получение мочи для анализа
Контроль диуреза
Цистография
Необходимые материалы: 3 стерильные пробирки, стерильные пеленки, ватные шарики, йод, 70% спирт, антисептический раствор для рук, вазелиновое масло, мочевые катетеры (для новорожденных с массой тела менее 1800 – желудочный зонд 5 F, для новорожденных с массой тела более 1800 – желудочный зонд 8 F).
Техника выполнения:
Мальчики
Положите ребенка на спину с разведенными бедрами – поза лягушки
Обработайте половой член раствором антисептика в направлении от наружного отверстия уретры к лонному сочленению
Наденьте стерильные перчатки
Обложите половой член стерильными пеленками
Обмакните кончик катетера в стерильное вазелиновое масло
Держите половой член перпендикулярно туловищу для выпрямления отдела уретры. При прохождении наружного сфинктера мочевого пузыря можно ощутить лёгкое сопротивление.
Никогда не вводите катетер с усилием! Продвиньте катетер до появления мочи.
Соберите мочу
Если катетер необходимо оставить в мочевом пузыре, фиксируйте его пластырем к нижней части живота – не к ноге - во избежание стриктуры уретры при давлении катетера на её заднюю стенку
Девочки
Положите ребенка на спину с разведенными бедрами – поза лягушки
Раздвиньте половые губы и протрите раствором антисептика область наружного отверстия уретры от лона к анусу
Наденьте стерильные перчатки
Обложите половые губы стерильными пеленками
Раздвиньте половые губы двумя пальцами
Обмакните кончик катетера в стерильное вазелиновое масло и вводите до появления мочи
Соберите мочу
Если катетер необходимо оставить в мочевом пузыре, фиксируйте его пластырем к ноге
Осложнения
Инфекция – риск пропорционален длительности стояния катетера
Травма уретры или мочевого пузыря
Гематурия – обычно кратковременная
Стриктура уретры – чаще у мальчиков при длительной или травматичной катетеризации
Забор мочи для микробиологического исследования
Катетеризируйте мочевой пузырь
Соберите среднюю порцию мочи в количестве 3-5 мл в сухую стерильную пробирку или специальную пробирку с питательной средой
17.1.8. Забор материала для микробиологического исследования.
Показания:
Посев микрофлоры ребенка
Определение чувствительности микрофлоры к антибиотикам
Мониторинг внутрибольничной микрофлоры
Необходимые материалы: стерильные ватные тампоны, стерильные пробирки и пробирки с транспортной средой, стерильные пеленки, ватные шарики, 70% спирт, антисептический раствор для рук, физраствор, шпатель.
Места забора:
наружный слуховой проход
слизистая зева
слизистая носа
содержимое верхних дыхательных путей
трахеобронхиальный аспират у детей на ИВЛ
выделения из глаз
срез культи пуповины
паховые складки
стул, анус
Техника выполнения:
По возможности провести забор материала до начала антибактериальной терапии
Вымыть и обработать антисептиком руки, надеть стерильные перчатки
Для взятия материала использовать стерильные сухие ватные тампоны.
При заборе материала необходимо соблюдать правила асептики, не допуская загрязнения его микрофлорой окружающей среды.
Для взятия материала из носа использовать один тампон, ввести сначала в один, а потом в другой носовой ход, не касаясь крыльев носа снаружи.
Забор материала из зева производить с использованием шпателя, не касаясь тампоном языка, слизистой щек и не ранее, чем через 2 часа после еды (при самостоятельном сосании)
При заборе материала у новорожденных с сухими слизистыми можно предварительно слегка смочить тампон стерильным физраствором
Тампон поместить в пробирку с транспортной средой и герметизировать
Пробирки четко маркировать, указывая происхождение материала (зев, нос или др. локализация), ФИО пациента, название учреждения и отделения, направившего материал, время и дату взятия материала
Если материал взят на фоне антибактериальной терапии, указать это в направлении.
Материал должен быть доставлен в лабораторию в течение 2-х часов
Забор материала элементов сыпи для микробиологического исследования
Папулы, везикулы, пустулы перед взятием материала очистить ватным тампоном, смоченным 70% спиртом, затем проколоть их у основания стерильной иглой
Взять на посев содержимое стерильным ватным тампоном
Корку или верхнюю часть везикул отделить от кожи иглой, скальпелем, а папулы соскоблить скальпелем. Из полученной жидкости и пульпы приготовить мазки на предметных стеклах, высушить их на воздухе без фиксации, затем поместить в соответствующую тару таким образом, чтобы стекла не соприкасались между собой.
Мягкие корки (покрышки) везикул осторожно зажать между предметными стеклами.
Полученные материалы поместить в стерильные полиэтиленовые мешочки, герметизировать и отправить в лабораторию для бактериоскопии.