- •Глава 1
- •Цвет поглощаемого излучения Дополнительный цвет (наблюдаемый цвет раствора)
- •1.3. Флюориметры (люминометры)
- •Глава 2
- •2.1. Подготовка посуды к анализам
- •2. Приготовление индикаторов
- •Глава 3
- •3. Материал для исследования, аитикоагулянт, условия хранения образца, сроки анализа
- •Материал для исследования, антикоагулянт
- •2 Нед в замороженном состоянии. Защищают от солнечного света
- •3 Ч проба стабильна в охлажденной крови. Плазму и сыворотку стабилизируют мета-фосфорной кислотой (6 г/100 мл), тху, или три-хлоруксусной (10 г/100 мл) кислотой. Хранят при 20 "с 21 сут
- •Материал для исследования, антикоагулянт
- •6 Ч при комнатной температуре, 1 нед при 4 °с, 6 мес при минус 70 °с
- •4. Содержание эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов у животных
- •Три первые цифры количества эритроцитов в 1 мкл'
- •7 . Рабочие калибровочные растворы для определения калия в эритроцитах
- •NaCl о сновные калибровочные растворы, мл
- •12. Приготовление разведений основного калибровочного раствора
- •13. Содержание иммуноглобулинов (ig) в сыворотке крови в зависимости от оптической плотности
- •Содержание ig, мг/мл
- •Содержание ig, мг/мл
- •VI. Класс зрелых
- •Р 4 5 6 7 ис. VI. Поражение крови:
- •14. Пересчет содержания иммунных белков в сыворотке крови (н. И. Блинов), мг/ мл
- •15. Разведения рабочего калибровочного раствора креатинина
- •16. Смеси реактивов для определения билирубина в сыворотке крови
- •17. Разведения билирубина для построения калибровочного графика
- •18. Схема постановки реакции для определения билирубина
- •19. Разведения для построения калибровочного графика
- •3.3.6.1. Выдел ениелипидов из биологических субстратов
- •20. Приготовление рабочих растворов для построения калибровочного графика
- •Стандартный раствор триолеииа, мл
- •Концентрация общих липидов, мг%
- •3.3.6.2. Количественное определение классов липидов химическими методами
- •21. Приготовление растаоров для ностроеиия калибровочного графика
- •22. Приготовление рабочих калибровочных растворов
- •Концентрация триацилглицеринов, мкг/мл
- •3.3.6.3. Разделение липидов на классы методом тонкослойной хроматографии (тсх)
- •24. Состав подвижных фаз и соотношение в пих отдельных компонентов, объем/объем
- •25А. Значение величины Rf для фосфолипидов нри разделении их в разных системах
- •3.3.6.4. Количественное определение классов липидов инструментальным методом
- •3.3.6.5. Определение жирнокислотного состава липидов методом газожидкостной хроматографии (гжх)
- •30. Пример расчета поправочного коэффициента
- •31. Порядок приготовления растворов для определения активности кф 1.15.1.1
- •Количество мкг рибофлавина в 1 мл стандарта- (л - л)
- •3.3.10. Методы определения микроэлементов
- •33. Разведения натрия пирувата для построения калибровочного графика
- •38. Приготовление стандартных растворов
- •Глава 4
- •42. Зависимость количества соматических клеток от скорости вытекания смеси молока с реактивом «Мастоприм»
- •43. Относительная плотность мочи, г/мл или кг/л
- •44. Приготовление растворов
- •Стандартный раствор альбумина, мл
- •Концентрация белка, г/л
- •Глава 5
- •5.6. Болезни органов пищеварения
- •5.7. Болезни печени и желчных путей
- •Глава 6
- •Глава 7
- •50. Показатели для определения качества искусственно высушенных травяных кормов
- •7.1.7. Оценка качества мучнистых кормов
- •Не допускается
- •5 5. Требования гост р 51551—2000 к питательности добавок, норма на день
- •100 Гост 13496.9
- •7.2.2. Определение гигроскопической воды
- •Объем стандартного раствора фосфора, см3
- •Глава 8
- •8.9. Методы определения алкалоидов
- •8.10. Методы определения цианидов
- •Глава 9
- •Глава 10
- •6 3. Показатели эритроцитопоэза у жеребят (в. И. Головаха, 2003)
- •6 5. Показатели крови цыплят-бройлеров (и. М. Карпуть, 1993)
- •66. Популяционный состав эритроцитов клинически здоровых телят, % (в. П. Москаленко, 1999)
- •68. Динамика морфологического состава крови у клинически здоровых телят (в. И. Головаха, 1995)
- •70. Содержание общего белка и белковых фракций в сыворотке крови телят (в. И. Головаха, 1995)
- •71. Состав белков сыворотки крови телят (р. Б. Флюнт с соавт., 2002)
- •72. Состав белков сыворотки крови телят, г/л (о. М. Дацыив, 2002)
- •73. Содержание белковых фракций в сыворотке крови телят и молодняка (н. И. Блинов, 1985)
- •74. Содержание общего белка и альбуминов у жеребят украинской верховой породы (в. И. Головаха, 2003)
- •75. Содержание белковых фракций в сыворотке крови телят 1—3-месячного возраста, г/л (н. В. Кознй, 2003)
- •7 7. Содержание общего количества иммуноглобулинов п их классов в сыворотке кровп телят, мг/мл (в. И. Головаха, 1995)
- •79. Содержание иммуноглобулинов в сыворотке кровн ягнят, мг/мл (ю. Н. Федоров, 1985)
- •80. Содержание иммуноглобулинов у поросят, мг/мл (т. М. Setcvage, т. В. Kim, 1976; т. Yabiki et al., 1974)
- •1 День 1 мес
- •8 3. Содержание иммуноглобулинов у собак, мг/мл (м. J. Day, w. J. Penhale, 1988; н. Y. Reynolds, j. S. Jonson, 1970)
- •87. Показатели кислотно-щелочного состояния крови телят в неоиатальный период (т. В. Любецкая, 2000)
- •89. Содержание билирубина и мочевины у жеребят (в. И. Головаха, 2003)
- •Дней 11,2-55,0 (24,4 ± 2,4) 10 дней 13,0-26,5 (18,0 ± 0,82) 20дней 8,0-21,0 (17,0 ± 1,25) 30 дней 7,2-20,8 (13,0 ± 0,64) 3 мес 8,4-17,0 (13,7 ± 0,84)
- •9 1. Активность ферментов у жеребят украинской верховой породы (в. И. Головаха, 2003)
- •7 14 21 28 60 90 120 150 180 270 Взрослые
- •93. Некоторые показатели функционального состояния печени у собак служебных пород [9]
- •97. Показатели обмена железа в организме норосят (м. Г. Николадзе, 2002)
- •1. Некоторые единицы международной системы (си) и их обозначения
- •М ккат/л нкат/л Ед/л Ед/л
- •Ед/л Ед/л мккат/л нкат/л
- •Глава 1. Физические и физико-химические принципы использования аппаратуры в лабораторной клинической диагностике. В. Э. Новиков 5
- •Глава 3. Лабораторные клинические методы исследования крови. И. Л. Кондрахин, а. В. Архипов 43
- •3.3.1. Методы определения кислотно-основного равновесия (кор) ... 66
- •3.3.2. Определение резервной щелочности в плазме крови диффузным методом по и. П. Кондрахину 67
- •3.3.3. Методы оценки состояния водно-электролитного
- •3.3.4. Методы оценки состояния белкового обмена 88
- •3.3.5. Методы оценки состояния углеводного обмена 117
- •3.3.6. Методы оценки состояния липидного обмена. А. В. Архипов. . . . 133
- •3.3.6.1. Выделение липидов из биологических субстратов 134
- •3.3.6.2. Количественное определение классов липидов
- •3.3.9. Методы определения витаминов. И. П. Кондрахин 186
- •3.3.10. Методы определения микроэлементов. И. П. Кондрахин 204
- •3.3.11. Методы определения активности ферментов.
- •3.3.12. Определение нитратов и нитритов в кормах, крови
- •Глава 4. Методы клинического анализа. И. П. Кондрахин 253
- •4.1. Исследование молока (молозива) 253
- •4.2. Клинический анализ мочи 260
- •Глава 5. Использование лабораторных и клинических тестов для диагностики внутренних болезней. И. П. Кондрахин 288
- •Глава 6. Методы исследования содержимого рубца.
- •Глава 7. Методы оценки качества кормов. А. В. Архипов 335
- •Глава 8. Методы токсикологического исследования.
- •Глава 9. Иммуноферментные методы определения
- •Глава 10. Физиологические особенности гомеостаза молодняка. В. И. Левченко 463
- •Иван Петрович Кондрахин, Алексей Васильевич Архипов, Владимир Иванович Левченко, Герман Александрович Таланов, Людмила Александровна Фролова, Виктор Эммануилович Новиков
- •Почтовый адрес: 129090, Москва, Астраханский пер., д. 8. Тел. (095) 280-99-86, тел./факс (095) 280-14-63, e-mail: koloss@koloss.Ru, наш сайт: www.Koloss.Ru
89. Содержание билирубина и мочевины у жеребят (в. И. Головаха, 2003)
В
общий
озрастБилирубин, мкмоль/л
конъюгированный
Мочевина, ммоль/л
1-й день 20,4-50,0 (34,0 ± 3,40)
Дней 11,2-55,0 (24,4 ± 2,4) 10 дней 13,0-26,5 (18,0 ± 0,82) 20дней 8,0-21,0 (17,0 ± 1,25) 30 дней 7,2-20,8 (13,0 ± 0,64) 3 мес 8,4-17,0 (13,7 ± 0,84)
мес 5,0-16,0 (10,9 ± 0,75) 9 мес 8,0-18,0 (13,5 ± 0,99) 12 мес 8,0-16,0 (12,2 ± 0,56)
0,2-14,5 (5,4 ± 0,53) 0,2-8,0 (4,3 ± 0,58)
0,2-9,5 (3,0 ± 0,61) 1,0-8,0 (3,4 ± 0,38)
0,5-4,0 (1,8 ± 0,14) 1,5-4,0 (2,7 ± 0,17)
0,6-7,0 (2,6 ± 0,30) 1,1-4,0 (2,9 ± 0,12)
0,5-8,0 (3,5 ± 0,49) 1,0-6,0 (3,7 ± 0,22)
0,2-7,0 (2,9 ± 0,52) 1,6-8,0 (5,0 ± 0,26)
0,5-7,8 (3,5 ± 0,52) 3,0-6,5 (5,0 ± 0,17)
2,0-3,7 (2,8 ± 0,16) 3,9-7,0 (5,0 ± 0,21)
2,0-3,4 (2,7 ± 0,26) 3,8-6,5 (4,3 ± 0,34)
Количество мочевины у телят увеличивается на 2—3-й дни после рождения и остается стабильным в течение первого месяца (см. табл. 88). То же можно отметить и у жеребят. Содержание мочевины с 1-го дня жизни не превышает 8,0 ммоль/л, а в 12-месячном возрасте — 6,5 ммоль/л (см. табл. 89). Стабильность ее уровня свидетельствует о быстром становлении мочевинообразовательной функции печени. Вероятно, и телята, и жеребята очень чувствительны к гипераммониемии.
Активность аспарагиновой трансферазы (ACT) у телят стабилизируется на 5-й день жизни, остается без достоверных изменений в течение первого месяца жизни (табл. 90). В отличие от ACT изменения активности аланиновой трансферазы (АЛТ) имеют несколько иной характер. Если в первые 2—3 дня жизни активность фермента также увеличивается в 1,5 раза, то понижение и ее стабилизация наблюдаются на 20—30-й дни жизни.
90. Активность некоторых ферментов сыворотки крови у клинически здоровых телят (В. И. Головаха, 1995)
Показа- |
День жизни |
|||||
тель |
1-й |
2-3-й |
5-й |
10-й |
20-й |
30-й |
ГГТ, 0,22-0,66 2,0-15,0 0,6-14,0 0,6-4,9 0,2-2,0 0,4-0,8 мккэт /л
М±т 0,48 + 0,09 7,8 ± 1,7 5,8 ± 1,0 2,13 ± 0,36 1,12 ± 0,18 0,67 ± 0,08
ACT, 0,36-1,44 1,01-1,5 0,68-1,5 0,84-1,44 0,83-1,4 0,83-1,3 ммоль/л
М±т 0,76 ±0,13 1,22 ±0,06 1,08 ±0,08 1,12 ± 0,06 1,08 ±0,08 1,12 + 0,04
АЛТ, 0,17-0,86 0,4-1,15 0,36-1,15 0,36-1,15 0,18-0,8 0,18-0,55 ммоль/л
Примечание.
Для пересчета мккат/л в нкат/л результат
в мккат/л необходимо умножить на
1000.
Достаточно
вариабельны изменения активности
у-глутамил-трансферазы (ГГТ; этот
фермент называют также
у-глутамилтранс-пептидазой). До первой
выпойки молозива активность фермента
составляет 0,22—0,66 мккат/л, а после
2—3-кратного поения увеличивается
в 15—30 раз (см. табл. 90). Это объясняется
развитием физиологического холестаза.
В дальнейшем активность фермента
уменьшается, стабилизируется в месячном
возрасте, незначительно превышая
показатели взрослых животных [6].
У
телят, больных колибактериозом и
ротавирусным энтеритом, нарушается
альбуминсинтезирующая и пигментная
функции печени. Содержание альбуминов
у них меньше 27 г/л (в среднем 21,7 + + 0,8
г/л), что составляет 37,8 % общего белка
(у здоровых телят альбуминов на 5-й день
жизни в среднем 27,5 ± 3,1 г/л). Содержание
билирубина увеличивается в 2—2,5 раза.
Под влиянием бакте-
Активность ACT у жеребят постепенно повышается, в 6-месячном возрасте стабилизируется и не отличается от активности у конематок (табл. 91). Максимальная активность фермента — ИЗО нкат/л (4,0 ммоль/л). Активность АЛТ после 6-месячного возраста снижаются и приближается к показателям взрослых животных. Максимальный уровень фермента составляет 170 нкат/л (0,6 ммоль/л).
У новорожденных жеребят в отличие от телят активность ГГТ не повышается, т. е. физиологический холестаз для них не типичный
