- •Волгоградский государственный медицинский университет
- •Волгоград, 2013
- •Учёт успеваемости и посещаемости
- •Тематический план проведения занятий по разделу «Общая микробиология»
- •Часть I морфология микроорганизмов
- •Устройство и требования, предъявляемые к работе в микробиологической лаборатории
- •Устройство микробиологической лаборатории
- •Уровень опасности работ с микробами и категории лабораторий
- •Основные помещения микробиологической лаборатории
- •Требования к работе с микроорганизмами I и IV групп патогенности
- •Требования, предъявляемые к работе в бактериологической лаборатории
- •Правила работы в микробиологической лаборатории
- •Аппаратура для выращивания микроорганизмов, стерилизации и других микробиологических исследований
- •Микроскопы и методы микроскопии
- •Контрольные вопросы
- •Морфология и структура бактерий Программ трех занятий
- •С пособы окраски
- •Позитивные
- •Самостоятельная работа студента
- •Методика окраски по Граму
- •Методика окраски по Нейссеру
- •Метод Бурри-Гинса (выявление капсулы)
- •Методика окраски по Бурри-Гинсу
- •На практическом занятии
- •Контрольные вопросы
- •Часть II физиология микроорганизмов
- •Питательные среды. Методы выделения чистых культур бактерий
- •Требования к питательным средам
- •Самостоятельная работа студента на практическом занятии
- •Методические указания Работа 1
- •Работа 3
- •Бактериологический метод исследования
- •Техника посева и пересева
- •Изучение бактериальных колоний
- •Выделение чистой культуры бактерий аэробов
- •Самостоятельная работа студента на практическом занятии
- •Методы культивирования анаэробных микробов
- •1. Физические методы:
- •2. Химические методы:
- •3. Биологические методы:
- •Самостоятельная работа студента на практическом занятии по теме: «Бактериологический анализ, культивирование анаэробов»
- •Ферментативные свойства бактерий
- •Среды для определения сахаролитических свойств
- •Cамостоятельная работа студента на практическом занятии
- •Контрольные вопросы
- •Основные противоэпидемические мероприятия в лаборатории Стерилизация
- •Физические методы
- •Механические методы
- •Химические методы
- •Контроль стерилизации
- •Биологический контроль
- •Внутренний контроль качества микробиологических исследований
- •Контроль температурных режимов инкубации
- •Контроль качества стерилизации и дезинфекции
- •Химический контроль
- •Термический контроль
- •Контроль качества дистиллированной воды
- •Центральное стерилизационное отделение
- •Классификация антисептиков по механизму действия
- •Самостоятельная работа студента на практическом занятии
- •Демонстрация опыта действия солнечного света на бактерии (опыт Бухнера).
- •Оформление альбома:
- •Санитарная микробиология воды Общие вопросы
- •Санитарно-микробиологическое исследование воды
- •Санитарно-гигиенические показатели и нормативы качества питьевой воды
- •Санитарная микробиология воздуха Общие вопросы
- •Санитарная микробиология предметов обихода и медицинского оборудования Общие вопросы
- •Санитарно-микробиологическое исследование
- •Посевы на стерильность хирургического инструмента
- •Бактериологический контроль эффективности обработки кожи операционного поля и рук хирургов
- •Самостоятельная работа студента на практическом занятии
- •Микрофлора тела человека
- •Микрофлора кожи
- •Микрофлора уха
- •Микрофлора конъюнктивы
- •Микрофлора дыхательных путей
- •Микрофлора полости рта
- •Микрофлора желудочно-кишечного тракта
- •Микрофлора мочеполовой системы
- •Значение нормальной микрофлоры
- •Понятие «дисбактериоз». Условия развития
- •Вопросы для обсуждения
- •Микрофлора кожи Посев волоса и «отпечатков» с губ и пальцев рук на мпа
- •Микрофлора носа и зева Посев отделяемого из носа на кровяной агар
- •Микрофлора кишечника Посев кала на среду Эндо
- •Миклофлора зубного налета
- •Оформление протокола
- •Тема: «Генетика бактерий»
- •Механизмы рекомбинаций
- •Самостоятельная работа студентов на практическом занятии
- •Опыт «Конъюгация 2»: передача плазмидного признака рези-стентности к тетрациклину (r Тc).
- •Опыт по определению колициногенности.
- •Диагностика фенилкетонурии.
- •Инфекция
- •Самостоятельная работа студентов на практическом занятии
- •Контрольные вопросы
- •Классификация химиотерапевтических препаратов
- •Механизмы антимикробного действия
- •Основные осложнения при химиотерапии
- •Самостоятельная работа студента на практическом занятии
- •Определение чувствительности бактерий к антибиотикам методом стандартных индикаторных дисков
- •Микрофлора человека и санитарная бактериология
- •Список литературы
Изучение бактериальных колоний
Колонию, выросшую на агаре в чашке Петри, изучают сначала невооруженным глазом в проходящем свете. Отмечают общий характер роста и число колоний (мало, много, несосчитываемое количество и т.д.), подчеркивая при этом специальными чернилами или карандашом (со стороны дна чашки) колонии, которые отличаются между собой.
Отмечают величину колонии (крупная, мелкая, точечная), измеряя ее окулярным микрометром и переводя в миллиметры: точечные колонии – меньше 1 мм в диаметре, видимые простым глазом; мелкие – в 1-2 мм, средние – в 2-4 мм, крупные – в 4-6 мм и более в поперечнике.
Колония может иметь правильную круглую форму; неправильную – амебовидную, розеткообразную, ризоидную или корневидную. Колонии могут быть заметно приподнятыми над средой – выпуклыми или плоскими, плосковыпуклыми; куполообразными с приподнятой серединой или вдавлением в центре. Отмечают характер поверхности: матовая или блестящая, гладкая или шероховатая.
Колонии могут быть с ровными краями; волнистыми (с неглубокими пологими вдавлениями), дольчатыми – глубоко изрезанными, круглозубчатыми с небольшими неглубокими зубцами; эрозированными с неровными острыми зубцами, бахромчатыми с тонкими, часто изогнутыми выростами; в виде «локонов».
Структуру колоний изучают под лупой или микроскопом со слабым увеличением, сухой системой при суженной диафрагме или несколько спущенном конденсоре, при этом чашку помещают на столик дном вверх и, передвигая ее, отмечают колонии различной структуры.
По цвету колонии могут быть очень разнообразными. Чаще они встречаются совершенно бесцветные, иногда белые, молочно-мутные, голубоватые, желтые, золотистые, золотисто-желтые, оранжевые, лимонно-желтые, сиреневые, красные и черные. Иногда в толще колонии развиваются небольшие образования сферической или неправильной формы (дочерние колонии). Они отличаются от основной колонии особой способностью преломлять свет. Механизм образования дочерних колоний не выяснен, однако отмечено, что по мере их роста материнская колония лизируется.
Консистенцию колонии определяют при прикосновении к ней петлей.
Структура и форма колоний, так же как и другие признаки, могут изменяться. Хорошо изучены S- и R-формы. S-формы круглые, гладкие, выпуклые, с ровными краями, имеют блестящую поверхность. Шероховатые R-колонии неправильной формы, с зазубренными краями и шероховатой поверхностью.
Выделение чистой культуры бактерий аэробов
Чистой культурой бактерий называют видимый рост одного вида микробов, полученных из одной клетки.
Выделение чистой культуры является основой бактериологической работы, так как в практической деятельности врачу-бактериологу приходится иметь дело с материалом, содержащим смесь микробов (гной, испражнения и т.п.). Идентификация вида возможна только тогда, когда бактерии получены в чистом, кодированном виде.
Выделение чистой культуры лежит в основе бактериологического исследования – важнейшего метода лабораторной диагностики инфекционных заболеваний.
Цель – выделение культуры и ее идентификация, что позволяет правильно поставить диагноз инфекционного заболевания.
Основная задача при выделении чистой культуры – получение отдельных колоний, т.е. скопления микробов одного вида как результата размножения одной клетки. Простейшим способом разъединения бактерий является последовательное растирание исследуемого материала стеклянным шпателем или бактериальной пипеткой по поверхности мясопептонного агара в чашках Петри.
