Ответы на вопросы Коллоквиума № 1 по темам Асептика. Антисептика

№ 1 Понятие об асептике.

Асептика – комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания возбудителей инфекции в рану или организм человека

В основе асептического метода лежит принцип уничтожения микробной флоры на всех предметах, соприкасающихся с раной, воздействием высокой температуры (кипячение, действие горячего пара и др.). Начиная с 1892 г. метод асеп­тики стал применяться во многих клиниках мира; результаты были столь разительны, что появились призывы полностью отказаться от антисептического метода (борьба с инфекцией в организме человека) и даже исключить антисептические средства из хи­рургической практики. Однако обойтись без них в хирургии оказалось невозможным: обработка рук хирурга и операционного поля, санация гнойных полостей и тд. невы­полнимы без антибактериальных препаратов, тем более что со временем появились новые малотоксичные антисептические средства, а методы антисептики пополнились не только химическими, но и физическими средствами (лазер, ультразвук и др.).

№ 2 Препараты для дезинфекции и стерилизации.

Из химических средств для дезинфекции и стерилизации широко используют в хирургии препараты йода: 5% и 10% спиртовой раствор применяют для смазывания кожи вокруг раны, обработки поверхностных ран и ссадин, операционного поля. Йод входит в состав раствора Люголя для стерилизации кетгута.

Йодонат содержит около 4,5% свободного йода; перед употреблением его разводят дистиллированной водой 1:4,5. Применяют для обработки операцион­ного поля.

Повидон-йодин — соединение йода с поливинилпирролидоном, содержит 0,1—1% раствор йода. Используют для обработки рук, операционного поля.

Хлорамин Б используется в виде 1—2—3% раствора для дезинфекции рук, предметов ухода за больными, неметаллических инструментов, помещений.

Надмуравьиная кислота в комплексе с перекисью водорода (первомур, препарат С-4) предназначена для обработки рук перед операцией. Препарат применяют также для обработки хирургических инструментов и резиновых перчаток.

Ртути дихпорид, или сулема. В концентрации 1:1000 при­меняется для дезинфекции перчаток, предметов ухода за больными. Метод применяют в амбулаторных условиях. Применение ограничено из-за токсичности препарата.

Спирт этиловый используют в виде 70% или 96% раствора для обработки рук, операционного поля, оптических инструментов, шовного материала.

Формалин — раствор, содержащий 36,5—37,5% формальдегида. При­меняют в виде 0,5—5% раствора для дезинфекции перчаток, инструментов, катете­ров, дренажей.

Тройной раствор — сильное дезинфицирующее средство, в состав которого входят формалин — 20 г, кислота карболовая (фенол) — 10 г, натрия гидрокарбонат — 30 г, вода дистиллированная — 1000 мл. Применяют для дезинфекции перчаток, инстру­ментов, дренажей.

Кислота карболовая. Применя­ют в виде 3—5% раствора для дезинфекции предметов ухода за больными.

Лизол. В виде 2% раствора используют для дезинфекции предметов ухода.

Дегмицид содержит 30% дегмина (четвертичное аммониевое соеди­нение). Применяют 1% раствор (т.е. в разведении 1:30) для обработки операционного поля и рук хирурга.

Роккал — 1 % или 10% раствор смеси алкилдиметилбензиламмония хлори­да. Применяют для стерилизации инструментов, резиновых перчаток, дренажей.

Хлоргексидин выпускается в виде биглюконата. Синоним — гибитан. Выпускается в виде 20% раствора. Для обработки операционного поля и дезинфекции инструментов раствор разводят 70% этиловым спиртом в отношении 1:40. Полученным 0,5% водно-спиртовым раствором обрабатывают операционное поле 2 раза с интервалом 2 мин. Инструменты стерилизуют путем погружения их в раствор на 2 мин.

№ 3 Этапы стерилизации.

Стерилизация инструментов, перевязочного материала и белья включает следую­щие основные этапы: I — предстерилизационная подготовка материала; II — укладка и подготовка к стерилизации; III — стерилизация; IV — хранение стерильного мате­риала.

Этап I — предстерилизационная подготовка. Ее цель — тщательная механическая очистка инструментов, шприцев, инъекционных игл, систем для трансфузии, удале­ние пирогенных веществ и уничтожение вируса гепатита. Персонал должен работать в резиновых перчатках.

Для контроля полноты удаления крови с предметов, прошедших предстерилизационную обработку, используют бензидиновую пробу: на предмет наносят по 3 кап­ли 1% раствора бензидина и перекиси водорода. Появление сине-зеленой окраски указывает на следы крови, оставшейся на предметах. В этом случае необходима по­вторная обработка.

Этап II — укладка и подготовка к стерилизации. Для стерилизации в сухожаровых стерилизаторах инструменты помещают в металлические коробки, укладывая их вер­тикально в один слой. Шприцы в разобранном виде заворачивают в 2 слоя специаль­ной плотной бумаги. Крышки от коробок стерилизуют рядом. В последнее время в основном применяются шприцы разового пользования, стерилизованные в заводс­ких условиях.

Для стерилизации паром под давлением в паровых стерилизаторах (автоклавах) инструменты заворачивают в вафельное полотенце или хлопчатобумажную ткань в виде пакета и укладывают на металлический поднос или сетку. Для конкретных ти­пичных операций набор инструментов подготавливают заранее (например, для опе­раций на легком, сердце, костях, сосудах), укладывают на специальную сетку и заво­рачивают в простыню в виде пакета.

Этап III — стерилизация. Стерилизация инструментов, шприцев (с отметкой на шприце 200 °С), игл, стеклянной посуды проводится в сухожаровых шкафах-стери­лизаторах. Стерилизацию инструментов, шприцев, систем для переливания крови можно производить в паровом стерилизаторе.

Этап IV — хранение стерильного материала. Стерильный материал хранят в специ­альном помещении. Не допускается хранение в одном помещении нестерильных и стерильных материалов. Стерильность материала в биксах (если они не открывались) сохраняется в течение 48 ч. Если материалы были помещены в полотняные упаковки (полотенца, простыни, пеленки) и для стерилизации уложены в биксы (например, системы для переливания крови, резиновые дренажи, шприцы), они могут хранить­ся в этих биксах до 3 сут. При централизованной стерилизации шприцы сохраняют стерильность в течение 25 дней.

№ 4 Стерилизация паром.

Предстерилизационная подготовка для стерилизации паром.

Для стерилизации паром под давлением в паровых стерилизаторах (автоклавах) инструменты заворачивают в вафельное полотенце или хлопчатобумажную ткань в виде пакета и укладывают на металлический поднос или сетку. Для конкретных ти­пичных операций набор инструментов подготавливают заранее (например, для опе­раций на легком, сердце, костях, сосудах), укладывают на специальную сетку и заво­рачивают в простыню в виде пакета.

Цилиндр и поршень шприца укладывают отдельно в марлевые салфетки и завора­чивают в кусок хлопчатобумажной ткани в виде пакета, который помещают в стери-лизационную коробку (бикс). При массовой стерилизации шприцев в автоклавах (цен­трализованная стерилизация) используют специальную укладку, сшитую из хлопча­тобумажной ткани, с карманами. В карманы помещают шприцы в разобранном виде, рядом — иглы и пинцет. В каждой укладке содержится до 5 шприцев. Укладки заво­рачивают в хлопчатобумажную пеленку в виде пакета и помещают в стерилизатор.

Сухие резиновые перчатки пересыпают тальком (снаружи и внутри), прокладыва­ют марлевыми салфетками, попарно заворачивают в салфетку и укладывают в от­дельный бикс.

Собранные системы для переливания крови проверяют на прочность резиновых трубок, плотность соединения их со стеклянными деталями и соответствие канюль павильонам иглы. Систему сворачивают в виде 2—3 колец, не допуская перегиба ре­зиновых трубок, заворачивают в большую марлевую салфетку, затем — в вафельное полотенце и укладывают в биксы.

Стерилизацию инструментов, шприцев, систем для переливания крови можно производить в паровом стерилизаторе (автоклаве). Упакованные предметы укладывают в стерилизационную камеру. Если упаковки уложены в биксы, то их ре­шетки должны быть открыты. Биксы или другие упаковки укладывают свободно, что­бы пар распределялся равномерно.

Хирургические инструменты и шприцы стерилизуют в течение 20 мин при 2 атм, что соответствует температуре 132,9 °С. Время начала стерилизации отсчитывают с момента достижения соответствующего давления. Резиновые перчатки, системы для переливания крови, резиновые дренажные трубки стерилизуют при 1,1 атм (темпе­ратура пара 120 °С) в течение 45 мин. При разгрузке автоклава закрывают отверстия в биксах.

№ 5 Сухожаровая стерилизация.

Стерилизация инструментов, шприцев (с отметкой на шприце 200 °С), игл, стеклянной посуды проводится в сухожаровых шкафах-стери­лизаторах (рис. 4). Предметы свободно укладывают на полках стерилизатора в ме- таллических коробках (при снятых крышках) и включают подогрев. При открытой дверце доводят температуру до 80—85 "Сив течение 30 мин просушивают — удаляют влагу с внутренних поверхностей шкафа и стерилизуемых предметов. Затем дверцу закрывают, доводят температуру до заданной (180 °С), поддерживая ее автоматически, и стерилизуют в течение 60 мин. После отключения системы подогрева и сниже­ния температуры до 70—50 °С открывают дверцу шкафа и стерильным инструментом закрывают крышками металлические коробки с инструментами. Через 15—20 мин (после полного охлаждения стерилизатора) камеру разгружают.

При работе с сухожаровым стерилизатором необходимо соблюдать меры безопас­ности: аппарат должен быть заземлен, по окончании стерилизации следует откры­вать дверцу шкафа только при снижении температуры до 70—50 °С. Запрещается пользоваться неисправным аппаратом.

№ 6 Стерилизация кипячением.

Метод стерилизации кипячением применяется в небольших ле­чебных учреждениях, где нет централизованной стерилизационной. Используют ста­ционарные или портативные электрические кипятильники, в которых можно стери­лизовать инструменты, шприцы, иглы, предметы из стекла, резиновые дренажи, катетеры, перчатки.

В кипятильник наливают дистиллированную воду, для повышения температуры кипения воды и разрушения оболочки бактерий добавляют 20 г натрия гидрокарбоната на 1 л воды (2% раствор). На дно кипятильника укладывают тонкий простеган­ный слой из ваты с марлей, чтобы выпадающие соли в виде накипи оседали на нем, а не на инструментах.

Инструменты в разобранном виде укладывают на специальные сетки и опускают крючками на дно кипятильника, оставляя ручки крючков снаружи, и закрывают ки­пятильник крышкой. Время стерилизации — 40 мин с момента закипания воды. По окончании стерилизации сетку с инструментами подхватывают крючками, дают стечь воде и переносят на специальный столик, покрытый стерильной простыней, сложен­ной в 4 слоя. Операционная сестра раскладывает инструменты на большом операци­онном столе.

Шприцы и иглы стерилизуют отдельно от инструментов, в разобранном виде (ки­пячением в дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната натрия), в течение 45 мин. Шприцы и иглы для спинномозговой пункции и внутривенных вливаний ки­пятят в дважды дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната натрия.

Инструменты, шприцы и иглы, загрязненные гноем, каловыми массами, после специальной предварительной обработки стерилизуют кипячением в течение 90 мин в отдельном кипятильнике.

Инструменты, шприцы и иглы, применяемые у больных с газовой гангреной, под­лежат тщательной обработке и последующей дробной стерилизации кипячением. Их кипятят в течение 1 ч, извлекают из кипятильника и оставляют при комнатной тем­пературе на 12—24 ч (для прорастания спор), а затем повторно стерилизуют кипяче­нием в течение 1 ч (дробная стерилизация).

№ 7 Химическая стерилизация

Стерилизацию инструментов и предметов, не подлежащих термической обработке (эндоскопы, торакоскопы, лапароскопы, аппараты или блоки аппаратов для искус­ственного кровообращения, гемосорбции), осуществляют в специальном газовом стерилизаторе ГПД-250. Предметы для стерилизации помещают в герметичную сте-рилизационную камеру (рис. 6), которую наполняют окисью этилена. Время экспо­зиции — 16 ч при температуре 18°С. Стерилизация может проводиться также смесью окиси этилена и бромида метилена при температуре 55 °С в течение 6 ч.

Стерилизация инструментов и оптических аппаратов (лапароскоп, торакоскоп) может быть проведена в спиртовом растворе хлоргексидина и первомуре. При такой стерилизации (химическими средствами) применяются металлические коробки с крышками, что предупреждает испарение препарата и загрязнение воздуха помеще­ний; при отсутствии специальной посуды используют эмалированную или стеклян­ную. Инструменты заливают раствором (чтобы он полностью покрывал их) и закры­вают крышкой.

№ 8 Лучевая стерилизация, метод обжигания.

Лучевая стерилизация. Для облучение воздуха и предметов, находящихся в операционной, используют напольные (передвижные), настенные, потолочные бектерицидные УФ-лампы различной мощности.. Бактерицидные лампы, снабжённые специальными экранами, защищающими от прямого действия УФ-лучей, могут работать при наличии людей в операционной.

Метод обжигания. В экстренных случаях, когда невозможно обеспечить стерилизацию инструментов ни одним из указанных способов, используют метод обжигания. В металлический тазик или лоток наливают 15—20 мл спирта, несколько инструментов укладывают на дно и поджигают спирт. Метод обжигания недостаточно надежен, пожаро- и взрыво­опасен (наличие кислорода, паров наркотических веществ в воздухе помещений), поэтому к нему прибегают в исключительных случаях, строго соблюдая меры пожар­ной безопасности.

№ 9 Стерилизация перевязочного материала и операционного белья.

I этап – предстерилизационная подготовка материала.

Перевязочный материал, кроме бинтов, не загрязненных кровью, после применения сжигают. Операционное белье многоразового пользования должно иметь специальную метку и сдаваться в стирку отдельно от другого белья, в специ­альных мешках.

Этап II — укладка и подготовка материала к стерилизации. Перевязочный материал и операционное белье укладывают в биксы. При отсутствии биксов допуска­ется стерилизация в полотняных мешках.

Этап III — стерилизация. Эксплуатация автоклава допускается только при нали­чии разрешения Инспекции котлонадзора с отметкой в паспорте аппарата; к работе с автоклавом допускаются лица, сдавшие технический минимум по эксплуатации ав­токлава и имеющие соответствующее разрешение.

Отсчет времени стерилизации начинается с момента достижения заданного дав­ления. Перевязочный материал и операционное белье стерилизуют в течение 20 мин при давлении 2 атм (температура 132,9 °С).

Этап IV — хранение стерильного материала. По окончании стерилизации и сушки белья стерилизационную камеру разгружают, биксы вынимают, сразу закрывают ре­шетку и переносят их на специальный стол для стерильного материала. Хранят бик­сы в шкафах под замком в специальной комнате. Допустимый срок хранения перевя­зочного материала и белья, если бикс не вскрывался, — 48 ч с момента окончания стерилизации. Материал и белье, стерилизованные в мешках, хранят не более 24 ч.

№ 10 Стерилизация инструментов.

Стерилизация инструментов: I — предстерилизационная подготовка материала; II — укладка и подготовка к стерилизации; III — стерилизация; IV — хранение стерильного мате­риала.

Этап I — предстерилизационная подготовка. Ее цель — тщательная механическая очистка инструментов, шприцев, инъекционных игл, систем для трансфузии, удале­ние пирогенных веществ и уничтожение вируса гепатита. Персонал должен работать в резиновых перчатках.

Для контроля полноты удаления крови с предметов, прошедших предстерилизационную обработку, используют бензидиновую пробу: на предмет наносят по 3 кап­ли 1% раствора бензидина и перекиси водорода. Появление сине-зеленой окраски указывает на следы крови, оставшейся на предметах. В этом случае необходима по­вторная обработка.

Этап II — укладка и подготовка к стерилизации. Для стерилизации в сухожаровых стерилизаторах инструменты помещают в металлические коробки, укладывая их вер­тикально в один слой. Шприцы в разобранном виде заворачивают в 2 слоя специаль­ной плотной бумаги. Крышки от коробок стерилизуют рядом. В последнее время в основном применяются шприцы разового пользования, стерилизованные в заводс­ких условиях.

Для стерилизации паром под давлением в паровых стерилизаторах (автоклавах) инструменты заворачивают в вафельное полотенце или хлопчатобумажную ткань в виде пакета и укладывают на металлический поднос или сетку. Для конкретных ти­пичных операций набор инструментов подготавливают заранее (например, для опе­раций на легком, сердце, костях, сосудах), укладывают на специальную сетку и заво­рачивают в простыню в виде пакета.

Этап III — стерилизация. Стерилизация инструментов, шприцев (с отметкой на шприце 200 °С), игл, стеклянной посуды проводится в сухожаровых шкафах-стери­лизаторах. Стерилизацию инструментов, шприцев, систем для переливания крови можно производить в паровом стерилизаторе.

Этап IV — хранение стерильного материала. Стерильный материал хранят в специ­альном помещении. Не допускается хранение в одном помещении нестерильных и стерильных материалов. Стерильность материала в биксах (если они не открывались) сохраняется в течение 48 ч. Если материалы были помещены в полотняные упаковки (полотенца, простыни, пеленки) и для стерилизации уложены в биксы (например, системы для переливания крови, резиновые дренажи, шприцы), они могут хранить­ся в этих биксах до 3 сут. При централизованной стерилизации шприцы сохраняют стерильность в течение 25 дней.

№ 11 Особенности стерилизации эндоскопической аппаратуры. Особенности стерилизации шприцов, режущих и колющих инструментов.

Основными этапами стерилизации эндоскопических приборов и инструментов являются их механическая очистка, промывание, предстерилизационная обработка и стерилизация, просушивание и хранение.

Для очистки эндоскопов используют раствор А - пергидроля 20 г, стирального порошка 5 г, воды, или Б – 2,5 % раствора перекиси водорода 200 мл, стирального порошка, воды.

После окончания эндоскопического исследования с эндоскопа немедленно уда­ляют загрязнения (желудочный, кишечный сок, слизь, кровь и пр.) механическим путем с использованием моющих средств (раствор А или Б): с наружной поверхности - с помощью тканевых салфеток, из каналов (биопсийного, операционного) — спе­циальной щеткой, а также путем подачи в них достаточного количества воздуха, воды или раствора нейтрального мыла; жесткие эндоскопы перед очисткой разбирают на комплектующие детали.

Для обработки эндоскопов применяют 0,5% водный или спиртовой раствор хлоргексидина биглюконата, 70% этиловый спирт, 2,5% раствор глутарового альдегида, препарат «Сайдекс», 3% и 6% растворы перекиси водорода при температуре 20+2 °С.

Части эндоскопа обрабатывают растворами антисептиков путем погружения в эмалированную или стеклянную емкость, закрытую крышкой, так же погружают де­тали жестких эндоскопов (за исключением оптических частей приборов и гибких ча­стей фиброэндоскопов).

Шприцы стерилизуют в течение 20 мин при 2 атм, что соответствует температуре 132,9 °С. Время начала стерилизации отсчитывают с момента достижения соответствующего давления. Резиновые перчатки, системы для переливания крови, резиновые дренажные трубки стерилизуют при 1,1 атм (темпе­ратура пара 120 °С) в течение 45 мин. При разгрузке автоклава закрывают отверстия в биксах.

Режущие инструменты (скальпели, ножницы) при стерилизации обычными мето­дами затупляются, поэтому ее проводят практически без термической обработки. Пос­ле предстерилизационной подготовки инструменты погружают в 96% этиловый спирт на 30 мин или в тройной раствор на 3 ч. Допускается лишь краткосрочное кипячение режущих инструментов. Скальпели укладывают в отдельную сетку, их лезвия оберты­вают марлей и кипятят в дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната на­трия в течение 10 мин, затем помещают в 96% этиловый спирт на 30 мин.

№ 12 Способы контроля стерильности и сроки хранения стерильного материала.

Контроль стерильности материала и режима стерилизации в автоклавах прово­дится прямым и непрямым (косвенным) способами.

Прямой способ — бактериологи­ческий; посев с перевязочного материала и белья или использование бактериологи­ческих тестов. Посев производят следующим образом: в операционной вскрывают бикс, маленькими кусочками марли, увлажненной изотоническим раствором хлори­да натрия, несколько раз проводят по белью, после чего кусочки марли опускают в пробирку, которую направляют в бактериологическую лабораторию.

Для бактериологических тестов используют пробирки с известной спороносной непатогенной культурой микроорганизмов, которые погибают при определенной тем­пературе. Пробирки вкладывают вглубь бикса, а по окончании стерилизации извле­кают и направляют в лабораторию. Отсутствие роста микробов свидетельствует о сте­рильности материала. Этот тест проводят раз в 19 дней.

Непрямые способы контроля стерильности материала применяют постоянно при каждой стерилизации. Для этого используют вещества с определенной точкой плавления: бензойную кислоту (120 °С), резорбции (119 °С), антипирин (110 °С). Эти ве­щества выпускаются в ампулах. Их применяют также в пробирках (по 0,5 г), закры­тых марлевой пробкой. В бикс между слоями стерилизуемого материала закладыва­ют 1—2 ампулы. Расплавление порошка и превращение его в сплошную массу указы­вают на то, что температура в биксе была равна точке плавления контрольного вещества или превышала ее. Для контроля режима стерилизации в сухожаровых сте­рилизаторах используют порошкообразные вещества с более высокой точкой плав­ления: аскорбиновую кислоту (187—192 °С), янтарную кислоту (180—184 °С), пило­карпина гидрохлорид (200 °С), тиомочевину (180 °С).

Более объективным из непрямых методов контроля режима стерилизации явля­ется термометрия. В каждый бикс между стерилизуемым материалом укладывают 1— 2 термометра. Их показатели отражают максимальную температуру, но не указывают время экспозиции (в течение какого периода эта температура поддерживалась в бик­се), в связи с чем и этот метод не исключает прямого контроля стерильности с ис­пользованием бактериологических тестов.

Хранение стерильного материала. Стерильный материал хранят в специ­альном помещении. Не допускается хранение в одном помещении нестерильных и стерильных материалов. Стерильность материала в биксах (если они не открывались) сохраняется в течение 48 ч. Если материалы были помещены в полотняные упаковки (полотенца, простыни, пеленки) и для стерилизации уложены в биксы (например, системы для переливания крови, резиновые дренажи, шприцы), они могут хранить­ся в этих биксах до 3 сут. При централизованной стерилизации шприцы сохраняют стерильность в течение 25 дней.

№ 13 Профилактика имплантационного инфицирования ран. Иглы и

шовный материал .

Все имплантанты должны быть стерильными. Стерилизация их проводится различными способами (в зависимости от вида материала), но с соблюдением следующих условий: γ-излучение, автоклавирование, химическая, газовая стерилизация, кипячение. Многие протезы выпускаются в специальных упаковках, стерилизованных в заводских условиях γ-излучением.

Шовный материал стерилизуют γ-излучением в заводских условиях. Атравматичный шовный материал выпускают и стерилизуют в специальной упаковке, обычный материал — в ампулах. Атравматичные нити в упаковке и ампулированные мотки шелка, кетгута, капрона и т.д. хранят при комнатной температуре и используют по мере необходимости. Металлический шовный материал (проволока, скобки) стери­лизуют в автоклаве или кипячением, льняные или хлопчатобумажные нити, нити из лавсана, капрона — в автоклаве. Шелк, капрон, лавсан, лен, хлопок можно стерили­зовать по способу Кохера. Это вынужденный метод, и он предусматривает предвари­тельную тщательную механическую очистку шовного материала горячей водой с мылом.

Стерилизация кетгута. Термическая обработка кетгута не применяется, в заводс­ких условиях его стерилизуют γ -лучами; в основном именно такие нити используют­ся в хирургии. Однако можно простерилизовать кетгут в больничных условиях. Сте­рилизация кетгута химическим способом предусматривает предварительное обезжи­ривание, для чего свернутые колечками нити кетгута помещают в герметически закрывающиеся банки с эфиром на 24 ч. Выделяют способы стерилизации по Кладиусу (водный раствор Люголя) и Губарева (спиртовой раствор Люголя)

№ 14 Подготовка рук к операции. Способы Спасокукоцкого-Кочергина, обработка рук хирурга первомуром, раствором хлоргексидинабиглюконата. Правила одевания стерильного халата, маски и перчаток.

Обработка рук — важное средство профилактики контактной инфекции. Об­работка рук любым способом начинается с механической очистки.

Способ Спасокукоцкого—Кочергина. Способ может быть использован как вынужденный, когда не представляется возможным применить современные методы. Способ предусматривает механическую очистку рук 0,5% раствором наша­тырного спирта. Руки моют в 2 тазах по 3 мин салфеткой; выполняют последователь­но движения, как при мытье щеткой, начиная с пальцев левой руки. В 1-м тазу руки моют до локтей, во 2-м — до границы верхней и средней трети предплечья. По окон­чании мытья руки ополаскивают раствором нашатырного спирта и кисти поднимают кверху так, чтобы капли воды стекали к локтям. С этого времени кисти рук постоян­но находятся выше предплечий. Кожу рук осушают стерильными салфетками: вна­чале обе кисти (эту салфетку бросают), затем последовательно нижнюю и среднюю треть предплечий.

Обеззараживают кожу салфетками, смоченными 96% спиртом, обрабатывая дважды по 2,5 мин кисти и нижнюю треть предплечий, затем — концы пальцев и ногтевые валики; ногтевые ложа и складки кожи пальцев смазывают 5% спиртовым раствором йода.

Современные способы обработки рук предусматривают их очистку путем мытья проточной водой с мылом или с помощью жидких моющих средств и последующую обработку химическими антисептиками.

Обработка рук первомуром (препарат С-4). Первомур — смесь, состоящая из мура­вьиной кислоты и перекиси водорода.

Обработка рук хлоргексидина биглюконата. Выпускается в виде 20% водного ра­створа. Для обработки рук готовят 0,5% спиртовой раствор: к 500 мл 70% спирта до­бавляют 12,5 мл 20% раствора хлоргексидина биглюконата. Предварительно моют руки проточной водой с мылом, осушают стерильными салфетками или полотенцем, а за­тем в течение 2—3 мин протирают марлевым тампоном, смоченным приготовленным раствором.

Ускоренные способы обработки рук применяют в амбулаторной практике или в вы­нужденных (например, военно-полевых) условиях. Для ускоренного обеззаражива­ния рук используют пленкообразующий препарат церигель, отличающийся сильным бактерицидным действием.

Обработка рук может быть произведена путем протирания кожи 96% этиловым спиртом в течение 10 мин (способ Бруна) или в течение 3 мин 2% спиртовым раство­ром йода.

№ 15 Подготовка операционного поля.

Предварительная подготовка места предполагаемого операционного разреза (опе­рационного поля) начинается накануне операции и включает общую гигиеническую ванну, смену белья. В день операции проводят сбривание волос сухим способом не­посредственно в месте операционного доступа, затем кожу протирают спиртом.

Перед хирургическим вмешательством на операционном столе поле операции широко смазывают 5% спиртовым раствором йода. Непосредственно место опера­ции изолируют стерильным бельем и вновь смазывают 5% спиртовым раствором йода. Перед наложением и после наложения швов на кожу ее обрабатывают тем же спирто­вым раствором. Этот способ известен как способ Гроссиха—Филончикова. Для обра­ботки операционного поля используют такие препараты йода, как йодонат, бетадин.

При непереносимости йода кожей у взрослых больных и у детей обработку опера­ционного поля проводят 1% спиртовым раствором бриллиантового зеленого (способ Баккала).

Для обработки операционного поля используют 0,5% спиртовой раствор гибитана (хлоргексидина биглюконат), как и для обработки рук хирурга перед операцией.

При экстренной операции подготовка операционного поля заключается в сбри-вании волос, обработке кожи 0,5% раствором нашатырного спирта, а затем одним из описанных выше способов.

№ 16 Понятие о антисептике.

Антисептика – комплекс мероприятий, направленных на борьбу с инфекцией в организме человека, на предупреждение или ликвидацию инфекционного воспалительного процесса.

Основные требования, предъявляемые к антисептическим средствам, следующие: бактерицидное или бактериостатическое действие на микроорганизм; отсутствие раз­дражающего токсического влияния на ткани при местном применении; сохранение свойств при соприкосновении с биологическими жидкостями (кровь, экссудат, гной) и воздухом (они не должны быть летучими); кроме того, их производство должно быть дешевым.

№ 18 Физическая антисептика. Тампоны. Виды дренажей. Метод проточного диализа и вакуумного дренирования. Лазерное излучение и ультразвук в хирургии.

Методы физической антисептики основаны на использовании законов) капиллярности/гигроскопичности, инфузии, (осмос, принципа сифона, воздействия лазера, УЗ.

Дренирование ран, гнойных очагов (абсцессы, эмпиемы) предусматривает создание условий для оттока раневого отделяемого во внешнюю среду (в повязку, специ­альную посуду с антисептическими растворами). В качестве дренажа при лечении ран применяют марлевый тампон.

Тампоны различных размеров готовят из полоски марли и рыхло вводят в рану; благодаря своей гигроскопичности тампон всасывает кровь, экссудат, гной. Дренирующие его свойства проявляются до 8 ч, после чего он может превратиться в «пробку», закупоривающую рану и нарушающую отток экссудата из нее. Чтобы повысить дренирующие свойства повязки, тампоны смачивают гипертоническим (5—10%) раствором хлорида натрия. Это способствует созданию высокого осмотического давления, что приводит к увеличению оттока жидкости из раны в повязку.

Кроме обычного тампона, применяют тампон Микулича. В рану вводят большую марлевую салфетку с ниткой, пришитой к ее середине. Салфетку укладывают на дно и стенки раны, образуя «мешок», который заполняют марлевыми тампонами. Когда тампоны пропитываются раневым отделяемым, их удаляют, оставляя марлевую сал­фетку, и образованную полость заполняют новыми тампонами.

Для более эффективного промывания ран и гнойных полостей в них (кроме дре­нажа для оттока раневого отделяемого) вставляют другую трубку и по ней вводят ра­створ антибактериального препарата, вместе с которым продукты распада тканей, гной, кровь и фибрин удаляются из раны по дренажу. Таким образом, комби­нируя методы физической и химической антисептики, создают условия для проточ­но-промывного дренирования. Этот метод применяют также при лечении гнойного плеврита и перитонита. Для повышения эффективности метода в качестве промыва­ющего раствора используют протеолитические ферменты, которые способствуют более быстрому расплавлению нежизнеспособных тканей, гноя, фибрина (метод про­точного ферментативного диализа).

Если дренируемая полость герметична (рана, зашитая швами, эмпиема плевры, гнойный артрит, полость абсцесса), применяют активную аспирацию (вакуумное дре­нирование). Лазерное излучение в виде луча малой мощности обладает бактерицидным эффек­том и не оказывает повреждающего действия на ткани. Применяют в основном угле-кислотный лазер, сфокусированный луч которого оказывает испаряющее действие на некротизированные ткани и микроорганизмы. Используют лазерное излучение для лечения ран.

Бактерицидное влияние оказывает УЗ низкой частоты. В жидкой среде (ране, зам­кнутой полости) УЗ проявляет физические и химические свойства. В среде, подверг­шейся воздействию УЗ, создается эффект кавитации — возникают ударные волны в виде коротких импульсов с образованием кавитационных пузырьков.

№ 19 Химическая антисептика. Производные нитрофурана, группы кислот, окислителей, красителей. Детергенты. Производные хиноксалина, 5 - нитроимидазола. Соли тяжелых металлов. Сульфаниламидные препараты.

Химические антибактериальные препараты используют для борьбы с инфекцией в ране, очагах воспаления; их применяют с лечебной или профилактической целью для получения антибактериального эффекта непосредственно в организме человека.

Производные нитрофурана. Препараты эффективны в отношении гноеродной кок­ковой флоры.

Фурацшшн применяют в водных растворах 1:5000 для промывания гнойных ран во время перевязки, полости абсцесса и эмпиемы — через дренажи (на­пример, при гнойном плеврите, гнойном свище при остеомиелите) и др.

Фурагин растворимый, или солафур,, используется в виде 0,1 % раствора для тех же целей, что и фурацилин. Препаратможно применять и внутривенно в дозе 300 мл.

Кроме этих препаратов, применяют также фуразолидон в таблетках по 50 мг и др.

Нитрофурановые препараты входят в состав пленкообразующего препарата лифузол, который выпускается в виде аэрозоля и применяется для лечения поверхностных ран, ожогов. Он образует на поверхности раны защитную пленку с антимикробным эффектом. Пленка сохраняется в течение 5—7 дней.

Группа кислот. Для промывания ран, гнойных полостей или гнойных свищей ис­пользуется 2—3% водный раствор борной кислоты.

Кислота салициловая оказывает антибактериальное и кератолитическое действие. Применяется в виде присыпок, мазей, 1% и 2% спиртовых ра­створов.

Окислители. К этой группе относятся перекись водорода и перманганат калия, которые при соединении с органическими веществами выделяют атомарный кисло­род, обладающий антимикробным эффектом.

Раствор перекиси водорода применяется в виде 3% водного раствора во время перевязок, для промывания гнойных ран, гнойных свищей, эмпием, абсцессов. Обильная пена, образующаяся при промывании, спо­собствует удалению из раны гноя, фибрина, некротизированных тканей. Обладает дезодорирующим свойством.

Гидроперит — комплексный препарат перекиси водорода и мочеви­ны. Выпускается в таблетках по 1,5 г. Для промывания ран используется 1% раствор (в 100 мл воды растворяют 2 таблетки).

Калия перманганат применяется при лечении гнойных ран (0,1— 0,5% раствор), ожогов (2—5% раствор), для промывания полостей (0,02—0,1% раствор).

Красители. Бриллиантовый зеленый используется в виде 1—2% спир­тового или водного раствора для смазывания поверхностных ран, ссадин, для лече­ния гнойничковых заболеваний кожи.

Метиленовый синий применяется для смазывания поверх­ностных ран и ссадин (3% спиртовой раствор), лечения ожогов (1—2% спиртовой ра­створ) и промывания гнойных полостей (0,02% водный раствор).

Детергенты. Хлоргексидин представляет собой 20% водный раствор хлоргексидина биглюконата. Для промывания ран готовят раствор 1:400, для промы­вания полостей тела при гнойном воспалении — 1:1000; 1 мл 20% раствора хлоргекси­дина биглюконата разводят соответственно в 400 и 1000 мл дистиллированной воды. Растворы стерилизуют в автоклаве при температуре 115 "С в течение 30 мин.

Производные хиноксалина. Хиноксидин обладает широким спект­ром антибактериального действия: эффективен в отношении кишечной и синегнойной палочки, вульгарного протея, возбудителей газовой гангрены. Применяют внутрь по 0,25 г 3 раза в день.

№ 17 Механическая антисептика. Методы хирургической обработки ран.

Основой механической антисептики является удаление из инфицированной, гной­ной раны, гнойного очага нежизнеспособных тканей, гноя, фибрина, являющихся средой обитания и питания микробной флоры. Известно, что здоровая ткань не по­вреждается под действием гноеродной микрофлоры и не содержит ее. Удаление девитализированных тканей, хотя и является не прямым, а опосредованным действием на микрофлору, способствует стерилизации раны.

Варианты механической антисептики предусматривают первичную хирургическую обработку инфицированных ран, целью которой является иссечение краев, стенок и дна раны в пределах здоровых тканей. Вместе с иссекаемыми тканями из раны удаляются кровоизлияния, гематомы, сгустки крови, инородные микротела, а также находящаяся в них микрофлора. Чем раньше выполнена такая операция, тем больше вероятность добиться стерильности раны.

Если же в инфицированной ране начала развиваться микробная флора, что воз­можно при несвоевременной или неполной первичной хирургической обработке, или рана с самого начала носит гнойный характер (после вскрытия абсцессов, флегмон), применяют вторичную хирургическую обработку раны. Иссечение краев, стенок, дна раны при этом не производят, а удаляют из нее механическим путем (скальпель, нож­ницы, вакуумирование, промывание струей жидкости под давлением) некротизированные ткани, гной, фибрин, вскрывают гнойные карманы, затеки. При этом удаля­ется также микробная флора и, хотя стерильности раны добиться не удается, количе­ство микрофлоры в ней уменьшается и создаются благоприятные условия для заживления раны.

Любая перевязка раны носит элементы механической антисептики (туалет раны). Удаление пропитанных кровью, гноем повязок, тампонов, промывание раны струей жидкости, удаление свободно лежащих некротизированных тканей, секвестров, про­сушивание раны шариками и тампонами способствуют удалению из нее микробной флоры, количество которой уменьшается в 10—20 раз.