
- •Введение
- •Исследование частоты переноса генетического материала в жидкой питательной среде, приготовленной на основе воды, обработанной ультрафиолетом
- •Ферментативная активность культур, выросших в питательных средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом
- •Исследование культуральных свойств Saccharomyces cerevisiae
- •Исследование количества живых клеток в колониях лактобацилл и бифидобактерий, выросших в питательных средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом
- •Исследование микробного антагонизма в питательных средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом
- •Сравнительное исследование ростовых свойств культур лактобацилл в питательных средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом и потоком нейтронов.
- •Исследование частоты переноса генетического материала в жидкой питательной среде, приготовленной на основе воды, обработанной ультрафиолетом
- •Методика и результаты исследований
- •Заключение
- •Литература
Исследование частоты переноса генетического материала в жидкой питательной среде, приготовленной на основе воды, обработанной ультрафиолетом
Частота передачи генетического материала между взрослыми клетками кишечной палочки и целостность этого материала не зависели от условий проведения эксперимента.
Таблица 15. Частота переноса плазмиды pR1 в средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом
Вода, обработанная ультрафиолетом |
10-5 ± 10-7 |
Вода, не обработанная ультрафиолетом |
10-5±10-7 |
Все выделенные клоны их опытной и контрольной серии сохраняли весь набор фенотипических признаков, контролируемых плазмидой.
Исследование культуральных свойств Saccharomyces cerevisiae Были проведены первичные исследования влияния воды, подвергнутой ультрафиолетовому воздействию, на изменения количества жизнеспособных единиц дрожжей Saccharomyces cerevisiae.
Результаты проведенных исследований представлены в таблице 16.
Таблица 16. Исследование культуральных свойств Saccharomyces cerevisiae
Определение численности дрожжей |
Число спор дрожжей |
Среды с дистиллированной водой ( среднее значение) |
3,4 х 108 кл/мл |
Среды на воде, подвергнутой ультрафиолетовому воздействию ( среднее значение) |
2,5х1010 кл/мл |
Как видно из представленных данных, при первичном посеве суспензии спор дрожжей на среды приготовленный с использованием воды, подвергнутой ультрафиолетовому воздействию, численность жизнеспособных клеток достоверно больше, чем на стандартных средах. Следовательно, структура воды, подвергнутая ультрафиолетовому воздействию, способствовала выходу из анабиоза достоверно большего числа клеток, хотя и не всех.
Для изучения влияния воды, обработанной ультрафиолетом, на кинетику развития дрожжей согласовано проведение исследований, в которых данная вода используется при первичном суспендировании сухой массы дрожжей параллельно с физиологическим раствором.
Ферментативная активность культур, выросших в питательных средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом
Данные, представленные на таблицах, свидетельствуют об отсутствии значимых изменений в ферментативной активности у культур, выращенных на средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом по сравнению с контролем.
Таблица 17. Ферментативная активность культур, выращенных на средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом
Фермент |
Зона действия (радиус, мм) |
|
Опыт |
Контроль |
|
Гемолизин |
8±1,3 |
7±2,2 |
Бета-лактамаза |
35±3 |
31±8 |
Изучение влияния модифицированной воды на кинетику развития дрожжей Saccharomyces cerevisiae.
В первой серии предварительных экспериментов были проведены исследования, позволившие определить действие модифицированной воды (МВ), подвергнутой ультрафиолетовому воздействию, на численность колониеобразующих единиц дрожжей при выходе из анабиоза.
Методика и результаты исследований
В экспериментах использовали штамм пекарных дрожжей, применяемый 21 хлебозаводом.
Навеску - 0,5 гр сухих дрожжей суспензировали в 10 мл физиологического раствора в течение 5 -10 минут. После этого был проведен посев на питательные среды Сабуро и Сусло агар, приготовленные на дистиллированной воде и МВ. Чашки с посевами термостатировали при 29 0 С в течение 2 суток.
Параллельно проводили подсчет количества клеток дрожжей в исходной суспензии. Определение количества спор дрожжей в суспензии осуществляли методом подсчета с использованием счетной камеры Горяева.
Результаты проведенных исследований представлены в таблице 18
Таблица 18 Выживаемость пекарских дрожжей в ростовых средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом.
Определение численности дрожжей |
Число спор дрожжей |
Среды с дистиллированной водой ( среднее значение) |
3,4 х 108 кл/мл |
Среды на воде, подвергнутой ультрафиолетовому воздействию ( среднее значение) |
2,5х1010 кл/мл |
Как видно из представленных данных, при первичном посеве суспензии спор дрожжей на среды приготовленные с использованием МВ, численность жизнеспособных клеток былодостоверно больше, чем на стандартных средах. Следовательно, первичный посев дрожжей на питательные среды, приготовленные на МВ, способствовал выходу из анабиоза достоверно большего числа клеток, хотя и не всех.
Во второй серии экспериментов были проведены исследования, по изучению влияния МВ на кинетику развития дрожжей.