Исследование количества живых клеток в колониях лактобацилл и бифидобактерий, выросших в питательных средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом

Количество живых клеток в колониях в ростовых средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом, были крупнее в размере, чем выросшие на обычных средах (таблица 8, 9)

Таблица 8. Количество живых клеток в колониях в ростовых средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом (КОЕ/мл)(Эксперимент 1) Колонии изолированные со среды МРС, приготовленной на необлученной воде

Колонии, изолированные со среды МРС, приготовленной на необлученной воде	Разведения	5	сливной рост
		6	2,8х108
		7	6х108
Колонии, изолированные со среды МРС, приготовленной на облученной воде	Разведения	5	сливной рост
		6	3х109
		7	7х109

Таблица 9. Количество живых клеток в колониях в ростовых средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом (КОЕ)(Эксперимент 2)

Колонии, изолированные со среды МРС, приготовленной на необлученной воде	Разведения	6	2,0х109
		7	8,0х109
Колонии, изолированные со среды МРС, приготовленной на облученной воде	Разведения	6	3,6х109
		7	3,4х1010

Между тем, культуры, выросшие на средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом, не воспроизводили свои свойства при следующей их пассаже на обычные среды.

Таблица 10. Выживаемость лактобацилл, преинкубированных в ростовых средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом, в обычных средах.

Рост на среде МРС 0,2% приготовленной на основе воды, обработанной ультрафиолетом
Разведение	6	1х109
Последующий пассаж на среду МРС 0,2% приготовленную на основе воды, не обработанной ультрафиолетом
Разведение	6	1х107

Аналогичным образом характеризовалась выживаемость бифидобактерий в ростовых средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом (Таблица 11).

Таблица 11 Характеристика выживаемости бифидобактерий в ростовых средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом (КОЕ)

Среда Бактофок 0,2% приготовленная на основе воды, не обработанной ультрафиолетом.		1 сутки роста
Разведения	2	6,4х104
	3	3,0х104
	4	6х105
	5	1,2х107
Среда Бактофок 0,2% приготовленная на основе воды, не обработанной ультрафиолетом.
Разведения	2	Сливной рост
	3	8х105
	4	1,4х106
	5	1,8х107
	6	6х107

Исследование микробного антагонизма в питательных средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом

Антагонизм лактобацилл по отношению к кишечным палочкам, синегнойным палочкам и стафилококкам также возрастал при выращивании лактобацилл на средах, приготовленных на основе воды, облученной ультрафиолетом. Различие в активности достоверно в отношении стафилококка и кишечной палочки. В случае синегнойной палочки допустимо говорить лишь о тенденции (Таблица 11).

Таблица 12. Микробный антагонизм лактобацилл, выращенных на средах, приготовленных на основе воды, облученной ультрафиолетом (мм )

Staphylococcus aureus	Вода, обработанная ультрафиолетом	20,5
	Вода, не обработанная ультрафиолетом	0,70,1
Pseudomonas aeruginosa	Вода, обработанная ультрафиолетом	10,2
	Вода, не обработанная ультрафиолетом	0,80,3
Escherichia coli	Вода, обработанная ультрафиолетом	10,3
	Вода, не обработанная ультрафиолетом	0,50,3

Сравнительное исследование ростовых свойств культур лактобацилл в питательных средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом и потоком нейтронов.

В качестве одного из контролей нами изучалось влияние воды, обработанной каким-либо иным фактором, на биологические свойства тест-культур. С этой целью мы обрабатывали воду направленным потоком тепловых нейтронов плотностью 0,2 нейтрона на см² в сек в течение 14 суток. Эго соответствовало параметрам космического излучения, испытываемого биообъектом во время орбитального полета. Результаты исследований представлены на таблице 13.

Таблица 13. Выживаемость лактобацилл в ростовых средах, содержащих воду, обработанную направленным потоком нейтронов

Среда МРС 0,2% приготовленная на основе воды, не обработанной направленным потоком нейтронов
Разведения	5	сливной рост
	6	1х108
Среда МРС 0,2% приготовленная на основе воды, обработанной направленным потоком нейтронов
Разведения	5	сливной рост
	6	1х1010

Данные, представленные на таблице, полностью сопоставимы с данными культурального роста лактобацилл в питательных ростовых средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом. Кроме схожести данных культурального роста, обращал на себя внимание измененный цвет среды МРС - из светло коричневой он стал светло-зеленым. Таким же образом изменяется цвет среды МРС, обработанной ультрафиолетом. Вместе с тем, последующие исследования выявили различие в свойствах колоний лактобацилл, выросших на средах с водой обработанной ультрафиолетом и водой, обработанной нейтронами. Ниже представлены данные о наличии жизнеспособных клеток в колониях, выросших на средах обоих типов (см. таблицу 14).

Таблица 14. Количество живых клеток в колониях в ростовых средах, содержащих воду, обработанную разными способами.

Колонии, изолированные со среды МРС, приготовленной на воде, обработанной ультрафиолетом	Разведения	5	сливной рост
		6	1х108
		7	1х108
Колонии изолированные со среды МРС, приготовленной на воде, обработанной потоком нейтронов	Разведения	5	сливной рост
		6	1х103
		7	1х104

Исследование частоты переноса генетического материала в жидкой питательной среде, приготовленной на основе воды, обработанной ультрафиолетом

Частота передачи генетического материала между взрослыми клетками кишечной палочки, и целостность этого материала не зависели от условий проведения эксперимента.

Таблица 15. Частота переноса плазмиды pR1 в средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом

Вода, обработанная ультрафиолетом	10-510-7
Вода, не обработанная ультрафиолетом	10-510-7

Все выделенные клоны их опытной и контрольной серии сохраняли весь набор фенотипических признаков, контролируемых плазмидой.

Исследование культуральных свойств Saccharomyces cerevisiae. Были проведены первичные исследования влияния воды, подвергнутой ультрафиолетовому воздействию, на изменения количества жизнеспособных единиц дрожжей Saccharomyces cerevisiae.

Результаты проведенных исследований представлены в таблице 16.

Таблица 16, Исследование культуральных свойств Saccharomyces cerevisiae

Определение численности дрожжей	Число спор дрожжей
Среды с дистиллированной водой (среднее значение)	3,4 х 108 кл/мл
Среды на воде, подвергнутой ультрафиолетовому воздействию (среднее значение)	2 5х1010 кл/мл
Общее число клеток	8,0х1014 кл/1 мл

Как видно из представленных данных, при первичном посеве суспензии спор дрожжей на среды приготовленный с использованием воды, подвергнутой ультрафиолетовому воздействию, численность жизнеспособных клеток достоверно больше, чем на стандартных средах. Следовательно, структура воды, подвергнутая ультрафиолетовому воздействию, способствовала выходу из анабиоза достоверно большего числа клеток, хотя и не всех.

Для изучения влияния воды, обработанной ультрафиолетом, на кинетику развития дрожжей согласовано проведение исследований, в которых данная вода используется при первичном суспендировании сухой массы дрожжей параллельно с физиологическим раствором.

Ферментативная активность культур, выросших в питательных средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом

Данные, представленные на таблицах, свидетельствуют об отсутствии значимых изменений в ферментативной активности у культур, выращенных на средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом по сравнению с контролем.

Таблица 17. Ферментативная активность культур, выращенных на средах, содержащих воду, обработанную ультрафиолетом

Фермент	Зона действия (радиус, мм}
	Опыт	Контроль
Гемолизин	81,3	72,2
Бета-лактамаза	353	318