- •Введение
- •1 Лабораторная работа № 1 крахмалосодержащее сырье в производстве биоэтанола
- •1.1 Аппаратура, материалы, реактивы
- •1.2 Зерновое сырье
- •1.2.1 Органолептическая оценка зерна
- •1.2.2 Определение засоренности
- •1.2. 3 Определение заражённости вредителями
- •1.2.4 Определение натуры зерна
- •1.2..5 Абсолютный вес
- •1.2.6 Определение энергии и способности прорастания
- •1.2.7 Влажность зерна
- •1.2.8 Определение качества зерна по его кислотности
- •1.2.9 Поляриметрический метод определения содержания
- •1.2.9.1 Сахариметр универсальный су-3
- •1.2.9.2 Пользование поляриметрическими кюветами
- •1.2.9.3 Порядок работы
- •1.2.10 Определение крахмалистости
- •1.3 Картофель
- •1.3.1 Определение загрязненности картофеля
- •1.3.2 Определение крахмалистости картофеля
- •1.3.3 Определение влажности картофеля
- •2 Лабораторная работа № 2 определение амилолитической активности фотоколориметрический методом
- •2.1 Определение амилолитической активности ферментов
- •2.1.1 Сущность метода
- •2.1.2 Реактивы
- •2.1.3 Проведение анализа
- •2.2 Определение амилолитической активности микробных
- •2.2.1 Теоретическое обоснование
- •2.2.2 Реактивы
- •2.2.3 Проведение анализа
- •3 Лабораторная работа № 3 подготовка инокулята. Контроль качества инокулята
- •3.1Аппаратура, материалы, реактивы
- •3.2 Микробиологический контроль дрожжей
- •3.2.1 Определение степени инфицированности дрожжей
- •3.2.2 Определение общего количества дрожжевых клеток
- •3.2.3 Определение количества почкующихся и мертвых дрожжевых клеток
- •3.2.4 Определение физиологического состояния дрожжей
- •3.2.5 Определение гликогена в дрожжевых клетках
- •4 Лабораторная работа № 4 разваривание и осахаривание крахмалосодержащего сырья.
- •Аппаратура, материалы, реактивы
- •2.2 Механико-ферментативный способ обработки сырья
- •Осахаривание разваренной массы
- •2.4 Определение содержания видимых сухих веществ
- •2.4.1 Физика отражения и преломления света
- •2 Рисунок 7 – Лабораторный Рефрактометр рл-2 .4.2 Лабораторный рефрактометр рл-2
- •5 Лабораторная работа № 5 брожение сусла. Микробиологический и физико-химический контроль
- •5.1Аппаратура, материалы, реактивы
- •5.1 Условия брожения
- •6 Лабораторная работа № 6 технологические показатели брожения
- •6.1 Аппаратура, материалы, реактивы
- •6.2 Форма представления результатов лабораторной работы
- •Показания сахарометра
- •4.4 Определение крепости изделий ареометром
- •Приложение б Приготовление реактивов
- •Литература
- •Содержание
3.2.3 Определение количества почкующихся и мертвых дрожжевых клеток
На предметное стекло наносят каплю дрожжей и каплю раствора метиленового синего (1:5000), накрывают покровным стеклом и отбирают излишек жидкости фильтровальной бумагой. Через две минуты препарат микроскопируют, подсчитывая количество всех дрожжевых клеток в поле зрения микроскопа, затем количество почкующихся клеток, затем только синих (мертвых – оболочка мертвых клеток пропускает краситель).
Подсчет повторяют не менее чем в пяти полях зрения микроскопа.
Количество почкующихся и мертвых клеток выражают в %.
3.2.4 Определение физиологического состояния дрожжей
Вид дрожжевых клеток меняется в зависимости от возраста и условий выращивания.
Физиологически молодая дрожжевая клетка характеризуется наличием тонкой клеточной оболочки, гомогенной (однородной) протоплазмы, практически не содержащей вакуолей. Протоплазма плотно прилегает к оболочке клетки.
По количеству и величине вакуолей можно судить о возрасте дрожжевой клетки: количество и объем их увеличивается по мере созревания и у старой культуры занимает почти всю клетку.
Ослабленные и мертвые клетки, обычно меньшего размера, темные, окрашенные, у клеток, подверженных лизису, нарушена оболочка, протоплазма окрашена и отходит от клеточной стенки.
Размножающаяся физиологически молодая культура дрожжей должна содержать не менее 25 % почкующихся клеток.
3.2.5 Определение гликогена в дрожжевых клетках
Гликоген – запасное питательное вещество дрожжей, содержание его в дрожжевой клетке непостоянно и изменяется в зависимости от ее возраста и состояния. В молодых клетках гликоген отсутствует, они окрашиваются йодом в светло-желтый цвет. По мере созревания дрожжей количество гликогена растет и к моменту сбраживания 2/3 сахаров сусла (когда засевные дрожжи готовы к инокуляции), его количество максимально. В нормальных зрелых дрожжах гликоген занимает от 1/3 до 2/3 объёма клетки и имеет вид красно-коричневых включений. Если гликогена меньше 1/4 объема клетки, его содержание считают недостаточным, а дрожжи – перезревшими или плохо упитанными (голодными). В 70 % зрелых производственных дрожжей должен содержаться гликоген.
Для определения гликогена на предметное стекло наносят каплю дрожжей и 2…3 капли 0,5 %-ного раствора йода. Капли смешивают, покрывают покровным стеклом, удаляют излишек жидкости фильтровальной бумагой.
Через 2…3 минуты цитоплазма клеток окрашивается в светло-желтый цвет, гранулы гликогена – в красно-коричневый.
4 Лабораторная работа № 4 разваривание и осахаривание крахмалосодержащего сырья.
Аппаратура, материалы, реактивы
– весы технические;
– весы аналитические;
– рН-метр;
– рефрактометр;
– сахарометр;
– баня водяная;
– термометр спиртовый до 100 ºС;
– 2 кастрюли ёмкостью 2-3 л;
– колбы Эрленмейера;
– бюретка;
– мясорубка;
– 0,1 н раствор NаОН;
– 1 %-ный раствор фенолфталеина;
– 2,6 кг исследуемого картофеля;
– амилолитические препараты микробиального происхождения (включающие α-амилазу, β-амилазу, глюкоамилазу) или свежепророщенный солод.
