
- •Министерство образования
- •Российской Федерации
- •Московский Государственный Университет
- •Пищевых Производств
- •Методические указания
- •Раздел 2. Биохимические основы синтеза белков и биологически
- •Часть I. Белки.
- •Диализ и реакции осаждения''………………………………………………24
- •IV. Лабораторная работа 4.
- •Введение
- •Лабораторная работа 1. ''Определение содержания ''сырого протеина'' и определение истинного белка в дрожжах. Выделение белков из дрожжей''. План работы.
- •Выделение белков из биомассы микроорганизмов.
- •Гомогенизация и дезинтеграция.
- •Обезжиривание.
- •Экстракция белков.
- •1.2. Принцип выделения белков из биомассы дрожжей Saccharomyces cerevisiae.
- •1.3.Определение содержания влаги в образцах. Ускоренный метод с использованием прибора Чижовой.
- •Метод высушивания до постоянной массы.
- •1.4. Определение общего азота
- •Данные для приготовления стандартных растворов
- •1.5. Определение ''сырого протеина''
- •1.6. Определение белка
- •1.6.1. Определение белка по ультрафиолетовому поглощению
- •1.6.2.Определение белка по методу Лоури
- •Данные для приготовления стандартных растворов белка
- •1.6.3. Микрометод определения белка с помощью биуретовой реакции
- •Лабораторная работа 2. ''Изучение некоторых физико-химических свойств дрожжевых белков. Диализ и реакции осаждения.'' План работы.
- •2.1. Осаждение белков.
- •2.1.1.Обратимое и необратимое осаждение белков.
- •2.1.2. Методы осаждения белков
- •2.2. Фракционирование белков с помощью диализа.
- •3.1. Фракционирование белков методом колоночной гель-хроматографии.
- •2. Сефадекс г – 100. Приготовление геля для гель-хроматографии и заполнения колонки.
Данные для приготовления стандартных растворов белка
№ пробы |
Исходный стандартный раствор, см3 |
Вода, см3 |
Реактив Д, см3 |
Реактив Е, см3 |
Количество белка в см3 рабочего стандартного раствора, мкг |
Экстинция при 750 нм |
||
Е1 |
Е2 |
Е3 |
||||||
К |
0 |
1 |
5 |
0,5 |
0 |
|
|
|
1 |
0,05 |
0,95 |
5 |
0,5 |
10 |
|
|
|
2 |
0,10 |
0,90 |
5 |
0,5 |
20 |
|
|
|
3 |
0,20 |
0,80 |
5 |
0,5 |
40 |
|
|
|
4 |
0,40 |
0,60 |
5 |
0,5 |
80 |
|
|
|
5 |
0,60 |
0,40 |
5 |
0,5 |
120 |
|
|
|
6 |
0,70 |
0,30 |
5 |
0,5 |
140 |
|
|
|
7 |
1,00 |
0 |
5 |
0,5 |
200 |
|
|
|
Для большей достоверности при построении калибровочной кривой готовят три параллельных серии рабочих стандартных растворов. И, соответственно, для каждой концентрации белка получают три значения экстинкции, которые вносят в таблицу 2 .
На основе полученных данных строят калибровочную кривую. На оси абсцисс откладывают концентрацию белка в мкг/см3, на оси ординат – экстинкции. Полученные точки соединяют прямой, выходящей из точки пересечения осей.
Построение калибровочной кривой и расчёт коэффициента пропорциональности проводят аналогично описанному в разделе 4. При дальнейшем использовании калибровочной кривой расчёт результатов проводят по формуле: .
1.6.3. Микрометод определения белка с помощью биуретовой реакции
Принцип метода. Этот метод может быть использован в присутствии ДНК. ДНК в концентрации до 0,7 мг/см3 в реакционной смеси не мешает определению, т.е. допустимо соотношение ДНК : белок ≥ 10 : 1.
Белок сначала обрабатывается биуретовым реагентом, а затем реактивом Фолина. Окраска развивается менее чем за 7 мин. и сохраняет стабильность 2,5 ч. (для семи изученных белков); в случае лизоцима наблюдалось за это время падение интенсивности окраски на 11%. Чувствительность составляет 1/16 чувствительности метода Лоури, но существенное преимущество состоит в том, что зависимость поглощения от количества белка линейна, а влияние природы белка менее существенно. На реакцию не влияет присутствие в растворе NaCl (1,5 М), ацетата натрия (0,1 М). При концентрации мочевины больше 2,0 моль/дм3 требуется ввести небольшую поправку на поглощение мочевины.
Реактивы:
1.
0,21% раствор CuSO4
5
H2O
в 30% NaOH.
Чтобы предупредить выпадение осадка
гидроксида меди этот раствор готовят
следующим образом: 21 см3
1% (масс./об) водного раствора CuSO4
5 H2O
добавляют к 75 см3
40% NaOH,
а затем уже разбавляют водой до 100 см3
– реактив А.
2. 30% NaOH – реактив Б.
Техника проведения эксперимента. К 2 см3 раствора белка (0,02-0,53 мг/см3) добавляют 1 см3 реагента А. Тщательно перемешивают и оставляют при комнатной температуре на 5 мин., после чего измеряют поглощение при 310 нм против ''холостого'' опыта. Готовят следующие смеси:
Х1 – 2 см3 раствора белка + 1 см3 реактива А;
Х2 – 2 см3 дистиллированной воды + 1 см3 реактива А;
Y1 – 2 см3 раствора белка + 1 см3 реактива Б;
Y2 – 2 см3 дистиллированной воды + 1 см3 реактива Б.
Поглощение белка равно (Х1 – Х2) – (Y1 – Y2); используют градуировочный график.