
- •Егорова, и. Э.
- •Рекомендации по ведению дневника:
- •Рекомендации по выполнению учебно-исследовательской работы студентов
- •Перечень тем рефератов по уирс:
- •Подготовка к практике
- •Лабораторная посуда
- •Способы приготовления растворов различных концентраций
- •1. Биологические факторы:
- •2. Лабораторные факторы:
- •Аттестация по производственной практике
- •Правила составления отчета по практике
- •Список рекомендуемой литературы:
1. Биологические факторы:
Постоянные и не меняющиеся (раса, пол, возраст).
Изменчивые и подверженные влияниям (диета, физическая активность, стиль жизни, прием лекарств, масса тела, курение, употребление спиртных напитков и т.д.).
Наличие в крови липемии, иктеричности.
Снижение устойчивости эритроцитов (гемолиз).
Присутствие эндогенных антител (холодовыхаглютининов, криоглобулинов, гетерофильных антител, аутоантител).
Время взятия материала (циркадные ритмы, фазы менструального цикла, последний прием пищи).
Проводимая пациенту фармакотерапия, в том числе введение инфузионных растворов (разведение крови).
Положение тела при взятии материала для исследования.
Различие в содержании аналитов в капиллярной, венозной и артериальной крови.
2. Лабораторные факторы:
Способ и качество взятия материала (соответствие рекомендациям, представленным в справочниках и руководствах).
Различия в концентрации аналитов, определяемых в плазме и сыворотке.
Выбор пробирок, антикоагулянтов, стабилизаторов, сепарирующих гелей.
Техника идентификации проб отдельных пациентов.
Обеспечение необходимого количества материала (требуется забирать, приблизительно в 2-4 раза больше материала, чем необходимо для выполнения данного анализа).
Влияние времени, температуры и механических воздействий во время транспортировки пробы от места забора до лаборатории.
Степень стандартизации способов доставки в отдаленные лаборатории и условий хранения проб.
Рис. 1. Операции, входящие в состав преаналитического этапа лабораторного исследования
Источники погрешностей на преаналитическом этапе вне лаборатории
Погрешности в результатах исследования могут быть связаны с физическим, эмоциональным состоянием пациента, положением тела, воздействием лекарственных препаратов. К физиологическим факторам, определяющим уровень показателей у здоровых лиц, относятся раса, пол, возраст, тип сложения, цикл физиологической активности, время последнего приема пищи и состав рациона. К факторам окружающей среды относят влияние социально-бытовой среды,климата, высоты над уровнем моря, геомагнитных воздействий, состава почвы и воды в зоне обитания.
На содержание многих аналитов существенно влияют и суточные ритмы. Например, уровень соматропина в течение суток колеблется 400 раз, а пролактина – в 100 раз.
Причиной ошибочного результата лабораторного исследования может явиться поздний прием пищи. Это касается в первую очередь исследования липидов, глюкозы и ряда других аналитов, перед исследованием которых обязательно требуется голодание. К аналитам, для которых необходим 12–14 ч. период голодания перед взятием крови, относятся: дофамин, кортизол, инсулин, глюкоза, холестерин, триглицериды, свободные жирные кислоты, мочевая кислота, щелочная фосфатаза, амилаза, неорганический фосфор, калий, а также количество лейкоцитов в крови.
К токсическим и терапевтическим факторам, влияющим на результаты лабораторных тестов можно отнести: этанол, кофеин, никотин, контрацептивы, психотропные препараты, наркотические средства, а также многочисленные лекарственные препараты, так как практически все лекарства изменяют содержание тех или иных компонентов.
Источники погрешностей на преаналитическом этапе внутри лаборатории
Хранение.Одним из основных факторов, определяющих график работы лаборатории, а также возможность транспортировки и хранения проб является устойчивость аналитов.
Устойчивость - это время, в течение которого первоначальное содержание (концентрация, активность и т.д.) аналита в пробе не изменяется при хранении пробы в строго определенных условиях. В ходе проведения исследований и их интерпретации важно иметь ввидувозможность изменения концентрации веществ при хранении пробы. Так, при отсутствии антигликолитического стабилизатора среднее снижение концентрации глюкозы в цельной крови в течение суток при комнатной температуре составляет 50% от исходной. Поэтому, для измерения концентрации глюкозы необходимо наличие определенного количества антигликолитического стабилизатора в исследуемой пробе крови. Стабилизаторы используются при исследованиях методом «мокрой химии». В том случае, если измерение глюкозы проводится с помощью глюкометра, использование антигликолитических добавок недопустимо. В этом случае исследование должно быть выполнено немедленно, непосредственно на месте взятия крови.
Для большинства исследований до момента центрифугирования кровь должна храниться при комнатной температуре. При хранении материала в холодильнике происходит замедление свертывания крови и образования сгустка.Как показывает опыт работы, без добавления активатора сгустка при температуре 20–25оС время свертывания крови составляет 1-1,5 часа (с учетом случаев замедления этого процесса при патологии). Поэтому, чтобы гарантировать свертывание крови и получение сыворотки в более короткие сроки используют активатор свертывания. Такие пробирки следует центрифугировать не ранее чем через 30 минут после взятия материала.
При необходимости длительного хранения материала удобно пользоваться вакутейнерами с разделяющим гелем. В этих пробирках инертный гель находится на дне пробирки. Масса этого вещества меньше массы кровяного сгустка и больше массы сыворотки. Во время центрифугирования гель поднимается вверх и формирует стабильный барьер, отделяющий сыворотку от фибрина и форменных элементов крови. Гель обеспечивает разделение сыворотки и сгустка до 48 часов без повторного центрифугирования. Пробирки с сепарирующим гелем следует центрифугировать не позднее, чем через 2 часа после взятия крови.
Организационные мероприятия на преаналитическом этапе.
Чтобы свести к минимуму преаналитические погрешности, необходимо:
Стандартизировать перевозку и доставку проб биологических материалов в клинические лаборатории.
Ввести определенные схемы применения пробирок для взятия биоматериалов.
Ввести стандартизированную маркировку лабораторных проб биологических материалов.
Применять первичные пробы биожидкостей, в том числе пробы в специальных пробирках с сепарирующими гелями и идентифицирующими этикетками.
Автоматизировать преаналитическую стадию.
Проводить контроль за соблюдением и выполнением принципов преаналитической стадии .
Порядок подготовки пациентов к лабораторному обследованию
В ходе многолетнего опыта работы лабораторий были выработаны определенные требования к процессу забора биологического материала на исследование, они следующие:
время взятия с 7 до 9 утра;
взятие крови проводится натощак;
исключить значительные физические нагрузки за 3 дня до исследования;
исключить приём алкоголя;
исключить приём лекарств, если они даются не по жизненным показаниями и могут оказать влияние на результаты, при этом продолжительность исключения лекарства зависит от периода выведения его из организма;
за 5 минут до сдачи крови обследуемый должен находиться в покое (сидеть или лежать);
время наложения жгута не должно превышать 1 минуту;
пальцы руки при венепункции не следует сжимать и разжимать;
не похлопывать ладонью по месту взятия с целью увеличения притока крови к нему;
придерживаться определённых мест для взятия крови (локтевая вена, вены предплечья, тыльной стороны кисти) и соблюдать методику взятия;
для исследования плазмы или форменных элементов, кровь забирают самотеком в пробиркис предварительно внесеннымантикоагулянтом; эти пробиркиобязательнодолжны иметь метку, до которой следует набрать кровь;
тотчас после взятия крови необходимо закрыть пробирку пробкой и, не взбалтывая её, несколько раз тщательно перемешать кровь, опрокидывая пробирку сначала пробкой вниз, затем пробкой вверх;
сыворотка и плазма должны быть свободны от гемолиза.
Порядок забора крови в вакутейнеры
При взятии крови в несколько вакутейнеров на разные виды лабораторных исследований порядок взятия крови должен быть следующим:
кровь для микробиологических исследований;
нативная кровь, без антикоагулянтов и других добавок для получения сыворотки (для большинства компонентов биохимических исследований);
цитратная кровь (для коагулогических исследований);
кровь с ЭДТА (для гематологических исследований);
кровь с ингибиторами гликолиза (фториды и т.д.) для исследования глюкозы.
Основной алгоритм выбора пробирок – кровь, которая берётся в пробирку без антикоагулянтов, должна быть взята до крови с антикоагулянтами во избежание загрязненияпоследними. Пробирка для коагулогических исследований должна набираться второй, чтобы исключить попадание в нее тканевых факторов свертывания.
Гемолиз и меры, по его предотвращению
Все вещества, находящиеся в исследуемой сыворотке или плазме, поглощают проходящий через пробу свет и в той или иной степени мешают определению исследуемых аналитов. Наиболее сильное влияние на конечный результат оказывает наличие в пробе продуктов гемолиза, билирубина и липидов сыворотки.
Уменьшение концентрации продуктов гемолиза эритроцитов добиваются следующими мерами:
соразмерное давление тканей плеча при накладывании жгута;
точный контроль времени наложения жгута (не более 1 мин);
взятие крови из вен острыми иглами с коротким срезом, достаточно большого диаметра;
кровь должна вытекать в пробирку для сбора по её стенкам самотёком, исключить аспирацию, выдувание крови, прерывание тока крови;
взятие крови в химически чистые сухие пробирки, без примесей детергентов и моющих средств;
целесообразно применение вакуумных пробирок;
контролировать, чтобы пробирка была заполнена до метки (+ 10%) для исключения неправильного соотношения кровь/антикоагулянт;
аккуратно перевернуть пробирку 6-8 раз для перемешивания с антикоагулянтом, исключая ее встряхивание и слишком интенсивное перемешивание;
исключить сильное нагревание илизамораживание образцов;
соблюдать сроки обработки крови;
при центрифугировании не превышать скорость осаждения и время центрифугирования;
в ходе получения сыворотки или плазмы добиваться полного отделения форменных элементов.
В случае возникновения гемолиза гемолизированные образцы не должны учитываться или подвергаться лабораторному исследованию (за исключением редких, «вынужденных» случаев).
Мутность пробы должна быть оценена, документирована и помечена в бланке анализа. Гомогенная мутность может указывать на гипертриглицеридемию, отчетливый сливкообразный слой, плавающий над прозрачным слоем биологической жидкости после центифугирования и хранения свыше 12 часов в холодильнике, указывает на наличие в образце хиломикронов.
Биологический материал, как правило, сохраняют до окончания выполнения всех анализов, что позволяет в случае необходимости повторить исследование.
Стандартная процедура получения плазмы и сыворотки из цельной венозной крови
Сыворотку получают из спонтанно свернувшейся цельной крови. Она не содержит факторов свертывания, кроме кальция. В нормальной крови сгусток образуется при комнатной температуре в течение 20–60 мин.Если это время не соблюдать, то может иметь место латентное (запоздалое) свертывание, что может привести к затруднению пипетирования и закупорке проточных элементов приборов (особенно в анализаторах).
Плазму получают из крови путем отделения форменных элементов при центрифугировании пробы крови. Плазма, в отличие от сыворотки, содержит факторы свертывания.
Преимуществами плазмы по сравнению с сывороткой являются:
меньшая опасность возникновения гемолиза;
более быстрое получение материала для исследования в связи с выключением этапа образования сгустка, что особенно важно при выполнении срочных анализов;
исключение потери части метаболитов за счет их разрушения при инкубации, необходимой при получении сгустка