Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Mikra_bilety.docx
Скачиваний:
0
Добавлен:
01.05.2025
Размер:
494.96 Кб
Скачать

2) Методы выявления чистых культур аэробов и анаэробов. Метод Дригальского.

Чистая культура – совокупность бактерий одного вида, полученных из одной колонии, клетки которой идентичны по биологическим свойствам (морфологическим, тинкториальным, культуральным, биохимическим (ферментативным) и т.д.).

Колония – популяция микроорганизмов-потомков одной клетки.

Штаммы – чистые культуры одного вида, выделенные в разное время из одного или нескольких различных источников. Вар (вариант) – различные штаммы одного вида, незначительно отличающиеся друг от друга. В зависимости от характера отличия выделяют морфовар, серо-, био-, фаговар.

Выделение чистой культуры – обязательный этап бактериологического исследования. Исследуемый материал (фекалии, гной и т.п.) содержит ассоциации микроорганизмов.

  • Методы, основанные на механическом разобщении микроорганизмов на питательных средах:

    • метод Пастера – последовательное разведение иссл.материала в жидкой питательной среде. Используется как один из этапов подсчета количества бактерий (КОЕ) в исходном материале;

    • метод Коха – метод пластинчатых разводок Коха – последовательное разведение иссл.материала в пробирках с расплавленным МПА, который заливают в стерильные чашки Петри, где МПА застывает. Инкубируют. В толще агара и на поверхности вырастают изолированные колонии. Используют для подсчета количества бактерий (КОЕ) в исходном материале;

    • метод получения клональных культур – перенос с помощью микроманипулятора одной бактериальной клетки и получение ее потомства – клона;

    • метод Дригальского – рассев исследуемого материала на поверхности питательного агара в чашке Петри о помощью шпателя, бактериальной петли или тампона с целью получения на поверхности среды изолированных колоний.

  • Методы, основанные на использовании биологических свойств микроорганизмов:

    • создание оптимальных условий для размножения отдельного вида микроорганизмов: применение элективных питательных сред, оптимальных температур, рН среды, концентрации СО2 и О2.

    • биологический метод:

      • заражение лабораторных животных, особо восприимчивых к данному виду м/о, с последующим выделением чистой культуры из органов или крови заболевших или погибших животных.

      • метод Щукевича – посев в конденсат свежеприготовленного скошенного МПА смесь подвижных и неподвижных бактерий. Неподвижные микроорганизмы растут в конденсате, а подвижные дают ползучий рост на всей поверхности питательной среды.

Метод Дригальского. Техника:

  • 1 этап. Посев «газоном» исследуемого материала по поверхности плотной питательной среды Для этого, приоткрыв левой рукой крышку, петлёй или пипеткой наносят посевной материал на поверхность питательного агара (после предварительной микроскопии). Инкубация при оптимальных условиях. Цель этапа: получение изолированных колоний.

  • 2 Этап.

    • Изучение выросших колоний (макро- и микроскопическое) :

      • форма (круглые, розеткообразные, листовидные и т. д.);

      • величина (крупные (диаметр более 4—5 мм), средние (2—4 мм) и малые (1—2 мм));

      • размер;

      • степень прозрачности;

      • зависящий от пигмента цвет — белого, ярко-синего, красного цветов и т. д.;

      • по поверхности — гладкие, морщинистые, исчерченные, плоские, выпуклые, плосковыпуклые, вдавленные;

      • по краю — с ровными, волнистыми, бахромчатыми краями; по структуре — могут иметь аморфную, зернистую, волокнистую внутреннюю структуру;

      • по консистенции — сухие, влажные, сочные, слизистые, как эмульгируется в воде;

      • результат окраски микропрепарата.

    • Отсев колоний, характерных для определенного вида на скошенный МПА или элективную среду. Инкубация при оптимальных условиях.

В чистой культуре, выращенной на скошенном питательном агаре, характер роста может быть сухим, влажным, ползучим, складчатым, пигментированным.

Цель этапа: получение чистой культуры.

  • 3 этап: идентификация выделенной чистой культуры по свойствам:

    • морфологические; тинкториальные (отношение к окраске);

    • культуральные (характер роста на питательных средах);

    • биохимические (ферментативные);

    • вирулентные (наличие ферментов патогенности);

    • токсигенные;

    • чувствительность к диагностическим (типовым) бактериофагам;

    • чувствительность к антибиотикам и другим веществам;

  • 4 этап: учет полученных результатов при изучении биологических свойств и заключение.

Для культивирования анаэробов необходимо понизить окислительно-восстановительный потенциал среды, создать условия анаэробиоза, т.е. пониженного содержания кислорода в среде и окружающем ее пространстве. Это достигается применением физических, химических и био­логических методов.

Физические методы. Основаны на выращивании мик­роорганизмов в безвоздушной среде, что достигается:

  • посевом в среды, содержащие редуцирующие и легко окисляемые вещества;

  • посевом микроорганизмов в глубину плотных пи­тательных сред;

  • механическим удалением воздуха из сосудов, в ко­торых выращиваются анаэробные микроорганизмы;

  • заменой воздуха в сосудах каким-либо индиффе­рентным газом.

В качестве редуцирующих веществ обычно использу­ют кусочки (около 0,5 г) животных или растительных тканей (печень, мозг, почки, селезенка, кровь, картофель, вата). Эти ткани связывают растворенный в среде кис­лород и адсорбируют бактерии. Чтобы уменьшить содер­жание кислорода в питательной среде, ее перед посевом кипятят 10—15 мин, а затем быстро охлаждают и зали­вают сверху небольшим количеством стерильного вазе­линового масла. Высота слоя масла в пробирке около 1 см.

В качестве легко окисляемых веществ используют глю­козу, лактозу и муравьинокислый натрий.

Лучшей жидкой питательной средой с редуцирующи­ми веществами является среда Китта — Тароцци, кото­рая используется с успехом для накопления анаэробов при первичном посеве из исследуемого материала и для поддержания роста выделенной чистой культуры анаэ­робов.

Посев микроорганизмов в глубину плотных сред про­изводят по способу Виньяль — Вейона, который состоит в механической защите посевов анаэробов от кислорода воздуха. Берут стеклянную трубку длиной 30 см и диа­метром 3—6 мм. Один конец трубки вытягивают в ка­пилляр в виде пастеровской пипетки, а у другого конца делают перетяжку. В оставшийся широкий конец трубки вставляют ватную пробку. В пробирки с расплавленным и охлажденным до 50°С питательным агаром засевают исследуемый материал. Затем насасывают засеянный агар в стерильные трубки Виньяль — Вейона. Капилляр­ный конец трубки запаивают в пламени горелки и трубки помещают в термостат. Так создаются благоприятные условия для роста самых строгих анаэробов. Для выде­ления отдельной колонии трубку надрезают напильни­ком, соблюдая правила асептики, на уровне колонии, ло­мают, а колонию захватывают стерильной петлей и переносят в пробирку с питательной средой для дальней­шего выращивания и изучения в чистом виде.

Удаление воздуха производят путем его механическо­го откачивания из специальных приборов — анаэроста-тов, в которые помещают чашки с посевом анаэробов. Переносный анаэростат представляет собой толстостен­ный металлический цилиндр с хорошо притертой крыш­кой (с резиновой прокладкой), снабженный отводящим краном и вакуумметром. После размещения засеянных чашек или пробирок воздух из анаэростата удаляют с помощью вакуумного насоса.

Замену воздуха индифферентным газом (азотом, во­дородом, аргоном, углекислым газом) можно производить в тех же анаэростатах путем вытеснения его газом из баллона.

Химические методы. Основаны на поглощении кисло­рода воздуха в герметически закрытом сосуде (анаэростате, эксикаторе) такими веществами, как пирогаллол или гидросульфит натрия Na2S204.

Биологические методы. Основаны на совместном вы­ращивании анаэробов со строгими аэробами. Для этого из застывшей агаровой пластинки по диаметру чашки вырезают стерильным скальпелем полоску агара шири­ной около 1 см. Получается два агаровых полудиска в одной чашке. На одну сторону агаровой пластинки засе­вают аэроб, например часто используют S. aureus или Serratia marcescens. На другую сторону засевают ана­эроб. Края чашки заклеивают пластилином или заливают расплавленным парафином и помещают в термостат. При наличии подходящих условий в чашке начнут размно­жаться аэробы. После того, как весь кислород в прост­ранстве чашки будет ими использован, начнется рост анаэробов (через 3—4 сут). В целях сокращения воздуш­ного пространства в чашке питательную среду наливают возможно более толстым слоем.

Комбинированные методы. Основаны на сочетании фи­зических, химических и биологических методов создания анаэробиоза.

Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]