- •Аннотация
- •Содержание
- •Глава 1 криотерапия и биологические клетки 9
- •Глава 2 объекты и методики исследования клеток 29
- •Глава 3 исследование влияния холодового воздействия на клетки крови человека in vivo 34
- •Глава 4 термографический мониторинг кожных покровов пациента при общей газовой криотерапии 43
- •ПерЕчень условных обозначений
- •Введение
- •Криотерапия и биологические клетки
- •Применение криотерапии в биологических исследованиях
- •Предпосылки к применению криотерапии
- •Факторы, сдерживающие распространение криотерапии
- •Описание и принцип работы криокамеры “КриоСпейс”
- •Общая аэрокриотерапия: применение в спорте высших достижений
- •Кровь. Реологические свойства крови
- •Атомно-силовая микроскопия в исследованиях биологических объектов
- •Характеристики атомно-силового микроскопа nt-206
- •Принцип работы и возможности атомно-силового микроскопа
- •Объекты и методики исследования клеток
- •Подготовка образцов лимфоцитов для асм исследований
- •Атомно-силовая микроскопия
- •Определение локального модуля упругости с помощью силовой спектроскопии
- •Исследование влияния холодового воздействия на клетки крови человека in vivo
- •Морфология лимфоцитов
- •Результаты эксперимента и обсуждение
- •Термографический мониторинг кожных покровов пациента при общей газовой криотерапии
- •Термография в медицине
- •Технические характеристики тепловизора иртис-2000 и принцип работы
- •Рисунке 4.3 — Процесс экспорта данных из программы irPreview
- •Экспериментальное исследование восстановления температуры кожи после интенсивного общего газового охлаждения
- •Заключение
- •Список использованных источников
- •Приложение а Листинг программы
Объекты и методики исследования клеток
Подготовка образцов лимфоцитов для асм исследований
Происходит забор крови у спортсменов прошедших курс криотерапии, он составляет 10 процедур по 3 мин, минус110С. Периферическую кровь из локтевой вены в объеме 10 мл (или 5 мл) забирают в вакутейнер, содержащий гепарин или ЭДТА.
Разбавляют 5 мл крови 1:2 (т.е. равным объемом) физ. раствора (ФР) или ЗФР, мягко перемешивают, переворачивая пробирку.
В 15 мл центрифужную пробирку с коническим дном (стандартный пластиковый Фалькон) наливают 3 мл раствора фиколла (плотность 1, 077 г/мл) и осторожно наслаивают на него 10 мл разбавленной крови.
Пробирки центрифугируют в течение 30 мин в бакет-роторе при 1500 тыс. обр. при комнатной температуре.
В процессе центрифугирования эритроциты и гранулоциты “проваливаются” в градиент фиколла и оседают на дно пробирки. На верхней границе градиента при правильном разделении образуется рыхлое кольцо беловатого цвета, состоящее в основном из лимфоцитов с примесью моноцитов. Над слоем лимфоцитов находится плазма.
Плазму осторожно отсасывают практически до уровня клеточного кольца.
Лимфоциты осторожно собирают пипеткой и переносят в чистую коническую центрифужную пробирку, добавляют 10 мл ФР или ЗФР, мягко перемешивают и центрифугируют в течение 15 мин в бакет-роторе при 3000 тыс. оборотов при комнатной температуре.
Удаляют надосадочную жидкость отсасыванием и процедуру отмывки лимфоцитов повторяют еще один раз. Наполняем пробирки NaCl до 5мл, ресуспензируем, затем наполняем пробирки до 10 мл, так, чтобы V их был одинаков. Центрифугируем:15мин., 3000 тысяч оборотов. Отбираем всю надосадочную жидкость. На дне пробирки остаются клетки, добавляем NaCl столько сколько нужно нам для размешивания [42].
Полученную суспензию наслаиваем на предметное стекло и ждали высыхания образца. Для каждого спортсмена готовился образец препарата, содержащий клетки лимфоцитов. Каждому образцу присваивался порядковый номер и дата проведения эксперимента.
Приготовление раствора фиколла: 22 г фиколла растворяют в 240 мл дистиллированной воды в течение ночи при комнатной температуре и добавляют 44,6 мл верографина (76%). Плотность раствора контролируют с помощью поплавкового денсиметра (ареометра), она должна быть 1,077г/мл.
Примечание: фиколл растворяют изначально в немного меньшем объеме воды. После его полного растворения объем доводится водой до точной отметки. Плотность раствора можно скорректировать путем добавления небольших объемов верографина (повышение) или воды (понижение) [43].
Атомно-силовая микроскопия
АСМ исследования проводились на атомно-силовом микроскопе «НТ-206» («Микротестмашины», Беларусь). Обработку полученных данных осуществляли с помощью программы SurfaceExplorer («Микротестмашины», Беларусь) и программного обеспечения для расчета модуля упругости NanoFiz1.0. Эксперимент был выполнен в контактном режиме работы атомно-силового микроскопа с использованием зонда NSC 11, радиусом закругления 41 нм и жесткостью консоли 3 Н/м [44].
Исследования морфологии клеток и упругих характеристик их мембран проводились при температуре: 20°С. Данная температура была выбрана в связи с необходимостью изучения особенностей поверхности мембраны и изменения упругих характеристик клеток при данной температуре. Локальный модуль упругости клеток рассчитывали по модели Герца. Статистическая значимость различий определялась с помощью критерия Манна–Уитни, различие считалось достоверным при p<0,05.
Полученные математические данные обрабатывались в программах SurfaceExplore и Origin 60.
