
- •1.3. Нормальные значения эхокардиографических показателей, мм, в зависимости от массы тела у собак
- •1.3.2.4. Общий план диагностических исследований
- •1.3.3. Методология диагноза и прогноза заболеваний
- •1.4. Пути и способы терапевтического воздействия на организм животного
- •1.4.1. Способы введения лекарственных веществ
- •1.4.2. Физиотерапевтические методы
- •1.4.3. Трансплантация тканей
- •1.5. Дозы лекарственных веществ
- •1.6. Анестезиология, интенсивная и инфузионная терапия
- •1.7. Медикаментозные средства, применяемые для оищеи анесшши
- •1.8. Действие основных анестетиков на сердечно-сосудистую систему
- •1.9. Виды потерь и способы их замещения
- •1.7. Принципы рационального кормления
- •1.10. Энергетическая потребность собак в зависимости от массы (по Донату, 1975)
- •1.8. Эутаназия
1.4.3. Трансплантация тканей
Свободную пересадку тканей в ветеринарии применяют в заместительных целях как метод восстановительной хирургии. Трансплантаты берут как у самого больного животного, так и от трупов животных гомологичного или гете-рологичного вида. В зависимости от этого различают аутсгрансплантаты, го-мотрансплантаты и ксенотранспланта-ты. Свободные трансплантаты в организме не «приживляются», а подвергаются перестройке, служа субстратом для замещения трансплантированной ткани аутологичной тканью хозяина. Наибольшей скоростью перестройки характеризуются аутотрансплантаты. Кроме того, они не вызывают реакций отторжения, в связи с чем аутотрансплантация имеет первостепенное значение. Широко используют трансплантацию кожи, роговицы глаза, костей.
Трансплантация кожи. Пересадку выполняют в целях пластической хирургии для замещения больших дефектов кожи. Может носить как первичный, так и вторичный характер.
Аутотрансплантация небольших кусочков кожи на незаживающий кожный дефект. Эта операция дает лучшие результаты, чем пересадка больших пол-нослойных лоскутов. На боковой поверхности шеи больного животного выкраивают кожный лоскут веретенообразной формы. После удаления клетчатки лоскут разрезают на узкие полоски шириной до 1 см, каждую полоску рассекают поперек на кусочки длиной до 1 см. Их осушают от крови и складывают в стерильную марлевую салфетку. Трансплантируют сразу. Грануляции кожного дефекта смачивают спирто-эфиром. Затем в них делают «карманы» в шахматном порядке на расстоянии 2...2,5 см друг от друга. Для этого вонзают остроконечный скальпель в грануляции под углом 18...20° на глубину 10...15 мм. Не вынимая скальпеля, расширяют «карман» и пинцетом вкладывают в него кусочек кожи эпидермисом наружу. Эластичные створки грануляций прижимают кусочек кожи с боков и сверху к подлежащим тканям и тем самым прочно его фиксируют. Через1...2 ч после трансплантации всю грануляционную поверхность орошают бальзамическим линиментом и оставляют открытой. В дальнейшем процедуру повторяют каждые 3 дня. Чтобы избежать возможных повреждений трансплантатов, собакам надевают на шею предохранительный воротник. На 9...10-й день кусочки аутотрансплантатов прочно прирастают и образуют зону роста эпителия.
Аутотрансплантация полнослойных больших лоскутов кожи. Кожный лоскут выкраивают, как указано в предыдущей методике, соразмерно площади дефекта. Удаляют с него подкожную клетчатку и затем скальпелем делают проколы в шахматном порядке на расстоянии 2...2,5 см друг от друга. Трансплантат накладывают на дефект эпидермисом наружу. Затем подшивают его кетгутом к коже дефекта, не допуская значительного натяжения в зоне швов. Центральную часть лоскута подшивают к ложу дефекта одной или несколькими кетгутовыми лигатурами. Трансплантат покрывают стерильными марлевыми салфетками в 5...6 слоев, пропитанными бальзамическим линиментом, и накладывают фиксирующую повязку.
Трансплантация полнослойного лоскута кожи на питающей ножке. На шее или в области ребер больного животного делают параллельно два вертикальных разреза кожи и подкожной клетчатки, сохраняя питающие мостики. Образованную между разрезами полоску кожи отсепаровывают от подлежащих тканей. Соотношение длины и ширины лоскута для сохранения нормального кровоснабжения должно быть 3:1.
Лоскут сшивают в трубку прерывистыми шелковыми швами эпидермисом наружу, формируя питающую ножку, затем зашивают рану. Спустя 14 дней после восстановления тканей трансплантируют лоскут. Для этого верхний конец питающей ножки обрезают, выкраивая его с запасом кожи, необходимым для закрытия дефекта. Края свободной части трансплантата сопоставляют с краями дефекта и сшивают их, закрывая таким образом дефект. Питающая ножка обеспечивает кровообращение в трансплантате, поэтому не происходит его отмирания и рана заживает первичным натяжением. Через 10 дней удаляют швы и отсекают питающую ножку.
Аллотрансплантация роговицы глаза. С лечебной целью кератопластику (обычно послойную) применяют при кератитах и изъязвлениях роговицы, которые не поддаются медикаментозному лечению, а также при стойких помутнениях, обусловленных другими причинами.
Специальным трепаном диаметром 4 мм делают несквозной круговой разрез передних слоев бельма на глубину 0,4 мм (толщина роговицы у собаки равна 0,8 мм) и скребцом отслаивают лоскут роговицы. На его место вставляют такой же кусочек роговицы, полученный от трупа и консервированный в течение 2...3 дней при температуре 2...4°С. Пересаженный аллотрансплан-тат фиксируют прерывистыми швами к краям дефекта.
Трансплантация костей. Метод используют для замещения дефектов, образующихся при травматическом повреждении скелета, повреждении костей хроническими воспалительными процессами. Трансплантаты вводят в дефект как необходимый субстрат, на основе которого произойдет восполнение дефекта нормальной костной тканью. Для этого используют костные опилки (гомо-, ксенотрансплантат), кортикальные трансплантаты и костную крошку (аутотрансплантат). Костные опилки готовят заранее из костей других животных. Костную крошку и кортикальные трансплантаты получают прямо в ходе операции из крыла подвздошной кости или ребра. Трансплантатами туго заполняют дефект, фиксируя их в ложе мягкими тканями и кетгутом. После этого оперированную конечность иммобилизируют на 2...3 мес.
Техника получения и консервации костных опилок. Костные опилки готовят при помощи электропилы или фрезы из свежеполученных трубчатых костей (обычно крупного рогатого скота). Тонким слоем их насыпают в кювету и помещают в холодильник при — 4...—10 "С для высушивания. За 24 ч до употребления опилки пересыпают в чашки Петри и стерилизуют в парах сухого формалина. Срок использования костных опилок при таком способе консервации 1...2 мес.
Техника получения костной крошки. Через дополнительный разрез кожи и подкожной клетчатки над крылом подвздошной кости образуют доступ к его верхнезаднему гребню. Гребень кости по окружности выделяют из мягких тканей на 2...5 см, после чего срубают его долотом. Костный трансплантат высушивают стерильной салфеткой и измельчают люэровскими щипцами. В таком измельченном виде аутотрансп-лантат переносят в дефект.
Приготовление кортикальных трансплантатов. Готовят из локтевой или малоберцовой кости. Кожу и ткани разрезают вертикально вдоль на нужную длину (длину разреза, а следовательно, длину кортикального трансплантата определяют по размерам дефекта). Вертикально вскрывают надкостницу и отслаивают ее по окружности кости на всем протяжении разреза. При помощи пилы Джигли, не затрагивая надкостницу, вырезают фрагмент кости необходимой длины. Аутотрансплантатом заполняют дефект, фиксируя его в тканях.
Гемотрансфузия. Переливание цельной крови или ее компонентов — эффективный метод лечения мелких домашних животных. Однако в каждом случае следует оценить целесообразность гемотрансфузии. Чтобы максимально снизить осложнения, угрожающие жизни, необходим строгий контроль доноров, методов сбора крови и ее хранения.
Показаниями служат: острые крово-потери — 30...60 мл/кг (1/3...2/3 общего объема крови); острые кровопотери с показателем гематокрита 20 % и ниже; хронические кровопотери с показателем гематокрита 15% и ниже; недостаточность факторов свертывания крови; подготовка пациента к операции (для восстановления показателя гематокрита до 25 %).
Противопоказания: аутоиммунные гемолитические анемии с показателем гематокрита 10...15%; повторное переливание крови или ее компонентов; беременность животного.
Выбор доноров. Животные должны быть клинически здоровы, массой более 20 кг, вакцинированы, дегельмин-тизированы, обработаны против эктопаразитов, с показателем гематокрита более 20%. Кровь доноров необходимо регулярно исследовать (клинический и биохимический анализы).
Сбор и хранение крови. У донора без опасности для жизни можно взять не более 15...20 мл/кг крови. Восполнение форменных элементов происходит за 3...4 нед. Яремная вена — наиболее доступное место для взятия крови.
Животное подвергают гепариниза-ции (150МЕ/кг) в течение 1 ч. Участок венепункции тщательно обрабатывают асептическими препаратами. Кровь должна течь свободно, так как это уменьшает активацию тромбоцитов и факторов свертывания. Кровь берут в коммерческие пластиковые пакеты из поливинилхлорида, содержащие стабилизационный раствор из расчета 14мл на 100мл крови. Во время процедуры осторожно перемешивают содержимое пакета, чтобы обеспечить адекватную антикоагуляцию. При отсутствии коммерческих стабилизаторов можно приготовить следующий консервант: лимонная кислота — 4,8 г, цитрат натрия—16, глюкоза —25 г, дистиллированная вода —до 1000 мл. Приготовленный раствор стерилизуют в сухожаро-вом шкафу.
Контейнер с собранной кровью должен быть подписан с обозначением донора, даты сбора и температуры хранения. Эритроциты остаются жизнеспособными в течение З...4нед при температуре 4 °С. Оптимальный срок хранения для эритроцитов 9... 11 дней, через 14... 19 дней их количество резко сокращается. При нарушении правил хранения (нагревание до 10°С) кровь непригодна для переливания.
Плазму, отделенную от эритроцитов и замороженную в течение 6 ч после сбора, хранят в домашнем морозильном шкафу при —20 °С около 4 мес. Свежезамороженная плазма служит источником плазменных белков и факторов свертывания крови.
Исключение реакций несовместимости. Первое переливание крови достаточно безопасно, даже если переливается неизвестная группа.
Антигены различных групп крови выявляют с помощью специфических антител в прямых и непрямых реакциях агглютинации. Для определения совместимости крови используют большую и малую перекрестные пробы.
При выполнении большой перекрестной пробы 1 каплю суспензии эритроцитов донора (трижды промытых в 3...5%-м растворе хлорида натрия) смешивают с 1 каплей сыворотки реципиента на микротитровальных плато или предметном стекле.
При малой перекрестной пробе ис пользуют 1 каплю суспензии эритроцитов реципиента и 1 каплю сыворотки донора.
Если животному ранее проводили гемотрансфузию, то необходимо выполнить перекрестную пробу в пробирках. Две капли суспензии эритроцитов донора помещают в пробирку с двумя каплями сыворотки реципиента и оставляют на 15 мин при комнатной температуре. Во второй пробирке смешивают эритроциты реципиента и сыворотку донора. Затем обе пробирки центрифугируют при 1000 мин^1 в течение 2 мин. В случае агглютинации и гемолиза делают вывод о несовместимости крови.
Скорость внутривенной трансфузии цельной крови или ее компонентов зависит от клинического состояния пациента. В первые 30 мин скорость не должна превышать 0,25 мл/кг. Количество необходимой гемотрансфузии (мл) можно рассчитать следующим образом:
где А"—постоянный коэффициент (А"=70); А/т — масса тела реципиента, кг; Я/я —требуемый гемоглобин; НЬр — гемоглобин реципиента; Я/ад — гемоглобин донора.
Осложнения. Посттрансфузионные реакции классифицируют на острые и замедленные. Острые реакции клинически проявляются беспокойством, гипотонией, слюнотечением, рвотой, повышением температуры тела, недержанием мочи и кала, реже шоком и смертью. Замедленная реакция на трансфузию крови проявляется гемолизом эритроцитов, вызывая билирубинемию, билирубинурию и снижение количества гемоглобина.
Лечение. Применяют те же средства, что и при лечении шока.