
- •Эффективность пцр-маркеров генов устойчивости пшеницы к бурой ржавчине
- •5.3.3 Обсуждение результатов исследования маркеров
- •1.1.3 Симптомы болезни
- •1.2 Использование молекулярных маркеров для идентификации генов устойчивости пшеницы к бурой ржавчине
- •1.2.1 Гены устойчивости пшеницы к бурой ржавчине (Lr-гены)
- •1.2.2 Молекулярные маркеры Lr-генов
- •1.2.2.1 Restriction Fragment Length Polymorphism (rflp) и Randomly Amplified Polymorphic dna (rapd) – маркеры
- •1.2.2.2 Sequence Tagged Site (sts) маркеры
- •1.2.2.3 Sequence-Characterized Amplified Regions (scar) маркеры
- •1.2.2.4 Cleaved Amplified Polymorphic Sequences (caps) маркеры
- •1.2.2.5 Микросателлитные маркеры (ssr – маркеры)*
- •1.2.2.6 Single Nucleotide Polymorphism (snp) маркеры
- •1.2.3 Использование молекулярных маркеров для идентификации генов устойчивости пшеницы к бурой ржавчине Lr24 и Lr34
- •1.2.3.1 Идентификация гена Lr24
- •1.2.3.2 Идентификация гена Lr34
- •2 Патентный поиск
- •3 Цель и задачи работы
- •4 Экспериментальная часть
- •4.1 Материалы исследования
- •4.2 Методы исследований
- •4.2.1 Выделение днк из пшеницы
- •4.2.2 Электрофорез в горизонтальных агарозных гелях [75]
- •4.2.3 Проведение полимеразной цепной реакции [75]
- •5 Результаты и обсуждения
- •5.1 Определение концентрации днк в рабочем растворе
- •5.2 Изучение маркера гена Lr24
- •5.2.1 Оценка специфичности пяти днк-маркеров гена Lr24
- •5.2.2 Оценка специфичности пяти днк-маркеров гена Lr24 на сортах мягкой пшеницы
- •5.2.3 Обсуждение результатов исследования маркеров гена Lr24
- •5.3 Изучение маркеров гена Lr34
- •5.3.1 Оценка специфичности трех днк-маркеров гена Lr34
- •5.3.2 Идентификация гена Lr34 у сортов мягкой пшеницы
- •5.3.3 Обсуждение результатов исследования маркеров гена Lr34
- •6 Выводы
- •7 Список использованных источников
1.2.2 Молекулярные маркеры Lr-генов
1.2.2.1 Restriction Fragment Length Polymorphism (rflp) и Randomly Amplified Polymorphic dna (rapd) – маркеры
До недавнего времени традиционными методами идентификации генов устойчивости являлись гибридологический анализ и фитопатологический тест. В начале 90-х годов прошлого столетия данные методы были дополнены молекулярными. Для идентификации ряда генов устойчивости и их картирования были использованы RFLP и RAPD – маркеры.
RFLP (ПДРФ) – используется как метод молекулярного анализа геномов — для идентификации и клонирования генов, а также для построения генетических карт. Суть метода заключается в том, что ДНК обрабатывается ферментами рестрикции и затем гибридизуется методом блот-гибридизации по Саузерну определенными молекулярными маркерами, меченными радиоактивной или нерадиоактивной меткой. Основные преимущества RFLP-анализа заключаются в его универсальности и высокой воспроизводимости, а при использовании в селекционном процессе - возможностиь определенияить положенияе генов на хромосоме. Для анализа необходимы значительные количества ДНК и требуется ее тщательная очистка. Значительных расходов требует поддержание большой библиотеки RFLP-клонов, приобретение реактивов и материалов, а также обеспечение безопасности при работе с радиоактивными материалами, что ограничивает использование этот метода массово. RFLP - маркеры разработаны для идентификации генов Lr3, Lr9, Lr13, Lr19, Lr20, Lr23, Lr24, Lr27+31, Lr32 и Lr34 (Таблица 2).
В сравнении с RFLP-анализом методы, основанные на PCR-технологии, требуют выделения значительно меньших количеств ДНК, при этом не требуетсянужно поддержание библиотеки клонов для гибридизационных зондов, саузерн-блоттинге и работе с радиоактивными изотопами. В зависимости от природы праймеров и способа идентификации продуктов амплификации различают несколько методов PCR-анализа. Первым появился метод случайно выбранных последовательностей ДНК (RAPD), в котором используют стандартные наборы праймеров (чаще всего праймеры состоят из десяти нуклеотидов), продукты амплификации разделяют в агарозном геле. Малый размер нуклеотидной последовательности праймера увеличивает вероятность нахождения комплементарного ей участка в обеих нитях ДНК, поэтому один и тот же праймер используется и в качестве прямого, и в качестве обратного праймера. RAPD-маркеры не связаны с определенными последовательностями генома, поэтому такой анализ RAPD анализ не требует предварительной информации о структуре изучаемых последовательностей.
Для удобства в практическом использовании большинство RFLP и RAPD маркеров, сцепленных с генами устойчивости к бурой ржавчине, были конвертированы в специфичные STS, CAPS, SCAR и другие типы маркеров (Таблица 2) [4].
Таблица 2 — Маркеры Lr-генов
Lr-ген |
Источник гена |
Маркеры |
Локализация в геноме |
Литературный источник |
Lr1 |
Triticum aestivum |
RFLP, STS |
5DL |
[5] |
SNP |
[6] |
|||
Lr3 |
T. aestivum |
RFLP |
6BL |
[7] |
ISSR |
[8] |
|||
Lr9 |
Aegilops umbellulata |
RAPD, STS |
6BL |
[9] |
RAPD-SCAR |
[10] |
|||
RFLP |
[11] |
|||
Lr10 |
T. aestivum |
RFLP, STS |
1 AS |
[12] |
Lr13 |
T. aestivum |
RFLP |
2 BS |
[13] |
SSR |
||||
Lr16 |
T. aestivum |
SSR |
2 BS |
[14] |
Lr18 |
T. timopheevii |
N-band |
5BL |
[15] |
Lr19 |
Agropyron elongatum |
RFLP |
7DL |
[11] |
Isozyme |
[16] |
|||
AFLP, STS |
[17] |
|||
SCAR |
[18] |
Продолжение таблицы 2
Lr-ген |
Источник гена |
Маркеры |
Локализация в геноме |
Литературный источник |
Lr20 |
T. aestivum |
RFLP |
5 AL |
[7] |
RAPD, STS |
[19] |
|||
Lr21 |
Ae. tauschii |
RFLP, PCR-based marker |
1DL |
[20] |
STS |
[21] |
|||
Lr23 |
T. turgidum |
RFLP |
2BS |
[22] |
Lr24 |
A. elongatum |
RFLP |
3DL |
[11] |
RAPD, STS |
[23] |
|||
RAPD, SCAR |
[24] |
|||
Lr25 |
Secale cereale |
RAPD, SCAR |
4BL |
[25, 26] |
Lr26 |
Secale cereale |
RFLP, RGA, AFLP, SCAR |
1BL/1RS trans. |
[27, 28, 29] |
STS |
[30] |
|||
1B/1R trans. |
[31] |
|||
Lr27 |
T. aestivum |
RFLP |
3BS |
[22] |
Lr28 |
Ae. speltoides |
RAPD, STS |
4 AL |
[32] |
RAPD, TPSCAR |
[33] |
Продолжение таблицы 2
Lr-ген |
Источник гена |
Маркеры |
Локализация в геноме |
Литературный источник |
Lr29 |
Ag. elongatum |
RAPD, SCAR |
7DS |
[25] [34] |
Lr31 |
|
RFLP |
4BL |
[22] |
Lr32 |
Ae. tauschii |
RFLP |
3DS |
[11] |
RAPD |
[35] |
|||
Lr34 |
T. aestivum |
RFLP |
7DS |
[22] |
RFLP, SSR |
[36] |
|||
SSR |
[37] |
|||
Lr35 |
A. speltoides. |
RFLP, STS |
2B |
[38, 39] |
Lr37 |
A. ventricosa |
RAPD, SCAR |
2AS |
[40] |
PCR marker specific for the N genome; CAPS |
[41, 42] |
|||
STS, SCAR, Pst1AFLP, SCAR |
[43, 44] |
|||
Lr39 |
Ae. tauschii |
SSR |
2DS |
[45] |
Продолжение таблицы 2
Lr-ген |
Источник гена |
Маркеры |
Локализация в геноме |
Литературный источник |
Lr46 |
T. aestivum |
AFLP |
1BL |
[46] |
SSR |
[36] |
|||
Lr47 |
A. speltoides. |
CAPS |
7AS |
[47] |
RFLP, PCR-specific primers for the T. speltoides S genome allele of Xabc465 Alternative codominant PCR marker |
[48] |
|||
Lr50 |
T. timopheevii ssp. armeniacum |
SSR |
2BL |
[49] |
Lr51 |
A. speltoides. |
CAPS |
1BL |
[50] |