
- •Реферат
- •Содержание
- •Введение
- •1 Аналитический обзор
- •Транстиретин
- •1.1.1 Строение и функции ттr
- •1.1.2 Роль мутаций гена ттr в образовании амилоидов
- •1.2 Амилоидоз
- •1.2.1 Представления об амилоидозах
- •1.2.2 Структура амилоида и фибрилл
- •1.2.3 Механизм образования амилоидных фибрилл
- •Общие сведения о кардиомиопатии
- •Методы выявления мутаций
- •Патентный поиск
- •Цель и задачи работы
- •Экспериментальная часть
- •Материалы исследования
- •4.1.1 Реактивы
- •4.1.2 Лабораторное оборудование
- •4.2 Методы исследования
- •4.2.1 Стандартные растворы
- •4.2.2 Выделение днк из замороженной крови
- •4.2.3 Электрофоретическое разделение днк в агарозном геле
- •4.2.4 Выделение и очистка амплификатов из агарозного геля
- •4.2.5 Полимеразная цепная реакция
- •4.2.6 Электрофоретическое разделение продуктов амплификации в 8% полиакриламидном геле (пааг)
- •4.2.7 Окрашивание гелей
- •4.2.7.1 Окрашивание бромистым этидием
- •4.2.7.2 Окрашивание пааг нитратом серебра
- •4.2.8 Анализ конформационного полиморфизма одноцепочечной днк (sscp)
- •4.2.9 Анализ полиморфизма длин рестрикционных фрагментов
- •Результаты и обсуждение
- •5.1 Результаты
- •4 Экзона гена ttr в 9% пааг
- •2 Экзона гена ttr в 12% пааг
- •5.2 Обсуждение полученных результатов
- •Список использованных источников
- •Приложение а Охрана труда и окружающей среды
- •1 Опасные и вредные производственные факторы
- •1.1 Химические вредные и опасные факторы
- •1.2 Психофизиологические вредные и опасные факторы
- •2 Категория помещения по взрывопожароопасности
- •3 Вентиляционная установка
- •4 Освещение помещения
- •5 Аптечка и ее содержимое
- •6 Меры первой помощи
- •7 Охрана окружающей среды
- •Приложение б Оценка технико-экономических результатов исследования
- •1 Краткое резюме
- •2 Расчет затрат на проведение исследовательской работы
- •2.1 Затраты на сырье, материалы и реактивы
- •2.2 Энергетические затраты
- •2.3 Затраты на заработную плату
- •2.4 Амортизационные отчисления
- •2.5 Смета затрат на проведение научно-исследовательской работы
- •7 Расчет уровня рентабельности и цены нир
4.2.2 Выделение днк из замороженной крови
Для выделения ДНК из лейкоцитов замороженной периферической крови использовали метод Кюнкеля [53].
Для этого потребовались:
Раствор I 0.32 М Сахароза
10мМ Трис-НСl pH 7.5
5мМ MgCl2
1% Тритон Х-100
Раствор II 0.075М NaCl
0.024М ЭДТА pH 8.0
1×ТЕ-буфер 10мМ Трис-HCl pH 8.0
0.5мМ ЭДТА
Фенол, хлороформ, 10% SDS, протеиназа К
Выделение проводится в течение двух дней.
День 1: все процедуры делаются на льду, центрифугируем при 4◦С
К 0,5 мл крови добавить 1 мл холодного раствора I, перемешиваем переворачиванием.
Центрифугировать 5000грт, 10 минут при 4◦С.
Слить надосадочную жидкость, и, не переворачивая, поставить на фильтровальную бумагу и дать стечь (около 1 минуты).
К осадку добавить 0,5 мл раствора I и ресуспендировать носиком.
Центрифугировать 5000грт, 10 минут при 4◦С.
Повторить п.3-5 несколько раз до получения белого осадка (возможно розоватого) ≈ 2-3 раза.
Слить надосадочную жидкость, дать стечь.
Добавить 0,465 мл раствора II, 0,025 мл 10% SDS, 0,01 мл протеиназы К и ресуспендировать осадок.
Инкубировать ночь, +37◦С в термостате
День2
Добавить 0,5 мл фенола, перемешать аккуратным переворачиванием 5 минут.
Добавить 0,5 мл хлороформа, аналогично перемешать.
Центрифугировать 6000грт, 10 минут при комнатной t◦.
Отобрать верхнюю водную фазу в другой эппендорф.
Добавить 0,5 мл хлороформа, перемешать 5 минут.
Центрифугировать 6000грт, 10 минут при комнатной t◦.
Отобрать верхнюю водную фазу в другой эппендорф, считая объем.
Добавить 2,5 объема 96% этилового спирта.
Ставим на полчаса в - 20◦С.
Центрифугировать 13000грт, 10 минут при комнатной t◦.
Слить спирт.
Добавить 0,5 мл 70% этилового спирта, дать постоять 5 минут.
Центрифугировать 13000грт, 10 минут при комнатной t◦.
Аккуратно слить спирт, остатки отобрать пипеткой, стенки промокнуть фильтровальной бумагой. Дать высохнуть при комнатной температуре.
Добавить 0,2 мл 1×ТЕ-буфер.
Полученную смесь оставляли на 1 сутки при комнатной температуре для растворения ДНК. Качество полученного образца ДНК определяли визуально при проведении электрофореза в агарозном геле.
4.2.3 Электрофоретическое разделение днк в агарозном геле
Электрофорез проводили в горизонтальных блоках 0.8% агарозного геля в аппарате для горизонтального электрофореза.
Состав геля: |
0.8% агароза 0.5х ТВЕ буфер 1 мкг/мл этидиум бромид |
Электродный буфер: |
0.5х буфер ТВЕ |
10х буфер ТВЕ: |
890 мМ Tris 890 мМ борная кислота (pH 8.0) 20М EDTA |
Для приготовления геля смесь компонентов прогревали до полного растворения агарозы, после чего охлаждали до 60°С, добавляли бромид этидия до концентрации 0.5 мг/мл и заливали на горизонтальную платформу размером 80x110мм. Толщина геля составляла 5 мм. Электрофорез проводили при постоянном токе 30 мА. Контроль миграции ДНК осуществляли по флуоресценции комплексов с бромистым этидием при возбуждении флуоресценции с использованием трансиллюминатора.