Рубрикация заболеваний желудка и двенадцатиперстной кишки по мкб-10

1. Функциональная (неязвенная) диспепсия – К30

2. Хронический гастрит эритематозный (поверхностный) – К29.3

3. Хронический гастрит атрофический – К29.4

4. Хронический гастрит неуточненный - К29.5

5. Дуоденит – К29.8

6. Гастродуоденит неуточненный - К29.9

7. Язвенная болезнь желудка – К25

8. Язвенная болезнь двенадцатиперстной кишки – К26

Диагностическая программа для выявления гастродуоденальных заболеваний

Минимальная:

1. Сбор анамнеза, направленный на выявление предрасполагающих и этиологических факторов, давности заболевания.

2. Клиническое обследование с выявлением характера и локализации болей.

3. Общий анализ крови для выявления признаков воспаления.

4. Расширенная копрограмма для выявления признаков нарушения переваривания.

5. Кал на гельминты.

6. УЗИ органов брюшной полости – позволяет выявить вовлеченность сопряженных органов в патологический процесс.

Максимальная:

1. Эзофагогастродуоденоскопия с биопсией слизистой оболочки для выявления изменений в гастродуоденальной слизистой оболочке и их характера.

2. Выявление Helicobacter pylori.

3. Внутрижелудочная рН-метрия или фракционное желудочное зондирование для определения характера кислотообразования.

4. Рентгенологическое исследование желудка (по показаниям) для выявления моторно-эвакуаторных нарушений и косвенных признаков воспалительного или язвенного процесса (в случае невозможности провести ЭГДС).

Методы диагностики инфекции h.Pylori

Гистологический метод ­ определение H.pylori в препарате биоптата слизистой оболочки желудка, окрашенном по Романовскому-Гимзе, Генте, толуидиновым синим, Вартину-Старии считается «золотым стандартом» в диагностике H.pylori.

Бактериологический метод – посев биоптата слизистой оболочки желудка или ДПК на дифференциально-диагностическую среду с целью выделения чистой культуры H.pylori. Недостатком метода является значительная отсроченность получения окончательного результата.

Цитологический метод ­ выявление H.pylori при микроскопии мазка-отпечатка с биопсийного материала слизистой оболочки, окрашенного по методу Романовского-Гимзы. Используется только в России.

Иммногистохимический метод – обработка биопсийного материала, фиксированного в формалине и залитого в парафин, моноклональными антителами против H.pylori. Готовые к применению коммерческие наборы с моноклональными антителами работают при разведении 1:200000 и избирательно окрашивают только H.pylori. Метод очень чувствительный и выявляет хеликобактерии при исключительно низкой обсемененности слизистой оболочки, когда другие методы дают ложноотрицательные или сомнительные результаты.

Биохимический метод, или уреазный тест ­ основан на способности H.pylori выделять фермент уреазу, которая расщепляет мочевину с образованием аммиака. При проведении классического уреазного теста биоптат слизистой оболочки желудка помещают в реактив, содержащий мочевину, индикатор, например, феноловый красный, и буферный раствор. При наличии H.pylori, выделяется уреаза. Образующийся при этом аммиак повышает рН среды и изменяет цвет желтого реактива на оттенки от розового до ярко малинового. Быстрота изменения окраски индикатора зависит от уреазной активности, которая в свою очередь зависит от количества бактерий. Таким образом, окончательный результат при использовании этого метода может быть получен как через несколько минут, так и через несколько часов. В настоящее время созданы быстрые уреазные тесты (Хелпил-тест, De-nol-test, CLO-test), которые позволяют врачам-эндоскопистам определять H.pylori биоптате в течение нескольких минут непосредственно после забора материала в присутствии пациента, что ускоряет назначение соответствующей терапии.

Дыхательный тест ­ неинвазивный метод диагностики, в основу которого положено изменение цвета наполнителя индикаторной трубки при прохождении через нее выдыхаемого воздуха, в том случае, если ребенок инфицирован H.pylori (Хелик-тест). Преимущество метода для использования в педиатрии обусловлено неинвазивностью, хотя чувствительность его несколько ниже, чем инвазивных тестов.

Полимеразная цепная реакция (ПЦР) – современный, высоко чувствительный метод. Он основан на определении ДНК хеликобактерий в различных биологических субстратах: слюне, желудочном соке, биоптате слизистой оболочки желудка, кале.

Обнаружение специфических антихеликобактерных IgA и IgG иммуноферментным анализом или экспресс-тестами на основе реакции преципитации или иммуноцитохимии с использованием капиллярной крови больного. У детей применяются редко, т.к. нарастание титра антител идет очень медленно (ребенок может быть уже инфицирован H.pylori, а специфических антител еще нет). Кроме того, после эрадикации H.pylori антитела продолжают циркулировать еще в течение длительного времени, что не позволяет использовать метод для контроля лечения хеликобактериоза.