
- •Глава 8 методы генной инженерии. Промышленный синтез белков, инсулина, соматотропина и интерферона
- •8.1. История создания генетической инженерии
- •8.2. Схема строения молекулы днк и триплетность генетического кода
- •Модель днк
- •8.3. Ферменты в генной инженерии
- •8. 4. Технология получения рекомбинантной молекулы днк
- •Рекомбинантной молекулы днк
- •8. 5. Векторы, используемые для клонирования днк
- •8. 6. Экспрессия генов в бактериальных клетках и микроорганизмах
- •До копирования всего структурного гена
- •С большой рибосомной субъединицей
- •В качестве объекта для клонирования и экспрессии
- •8.7. Метод электрофорезного разделения днк и этапы идентификации днк по Саузерну
- •Для электрофореза днк в агаровом геле
- •Идентификации днк методом Саузерн-блот гибридизации
- •8. 8. Секвенирование днк и получение генов
- •Семейства меченных фрагментов днк
- •Полученной методом секвенирования днк
- •Днк ферментативным методом
- •8. 9. Амплификация (увеличение числа копий) фрагментов днк с помощью метода полимеразной цепной реакции (пцр)
- •Фрагмента днк
- •8.10. Генетическая инженерия и ее возможности для практики
- •8. 11. Промышленный синтез белков
- •«Расплодки»
- •8. 12. Биотехнология получения инсулина, гормона роста и интерферона
- •При синтезе интерферона человека в e. Coli.
- •Глава 9
- •9. 2. Трансгенные животные (метод получения)
- •9. 2. 1. Методы введения чужеродного гена в организм животного
- •9.2.2. Создание разных видов трансгенных животных
- •9. 2. 3. Клонирование
- •В яйцеклетку (по Беквисту)
- •Методом пересадки ядер
- •9. 2. 4. Межвидовые пересадки эмбрионов и получение химерных животных
- •9. 2. 5. Получение гомозиготных диплоидных потомков
- •Диплоидных потомков
- •9. 2. 6. Создание партеногенетических животных
- •9. 2. 7. О генетическом риске и биобезопасности в биоинженерии и трансгенных технологиях
- •9. 3. Государственное регулирование безопасности генно-инженерной деятельности в Республике Беларусь
- •Глава 10 иммобилизованные ферменты
- •10. 1. Понятие «инженерная энзимология»
- •И иммобилизация ферментов
- •И Saccharomyces carlsberqensis, используемые для получения фермента инвертазы
- •10.2. Механизм биотехнологического действия ферментов
- •10. 3. Технология глубинного культивирования микроорганизмов – продуцентов ферментов.
- •10. 4. Технология выделения и очистки ферментных препаратов
- •10. 5. Иммобилизованные ферменты. Методы иммобилизации
- •10. 6. Практическое применение иммобилизованных ферментов
- •При растворении тромбов в кровеносных сосудах
- •«Искусственная почка»
- •Глава 11
- •Гидроксилирование кортизола
- •11. 2. Методы контроля репродуктивной функции у животных
- •11. 3. Нейро-гуморальная регуляция внутрияичниковых процессов. Рост и развитие эмбрионов
- •Внутрияичниковых процессов
- •11. 4. Биотехнология получения потомков животных желаемого пола
- •Быков производителей по полу
- •Глава 12 получение аминокислот и белка одноклеточных организмов
- •12.1. Содержание незаменимых аминокислот в белках некоторых микроорганизмов
- •12. 2. Выращивание кормовых дрожжей
- •12.3. Белковые концентраты из бактерий
- •На газообразных углеводородах
- •12.4. Кормовые белки из водорослей
- •12. 5. Белки микроскопических грибов
- •12. 6. Кормовые белковые концентраты из растений
- •12. 7. Производство незаменимых аминокислот
- •Из аспарагиновой кислоты
- •12. 8. Производство кормовых витаминных препаратов
- •12. 9. Кормовые липиды
- •12. 10. Производство ферментных препаратов
- •Глава 13
- •13. 2. Результаты использования пребиотиков
- •13. 3. Эффективность использования гербиотиков и симбиотиков
- •13. 4. Результаты применение заквасок для силосования
- •Заключение
- •Литература Основная
- •Дополнительная
- •Содержание
11. 2. Методы контроля репродуктивной функции у животных
Достигнутые в последние 30 лет успехи в области биологии размножения сельскохозяйственных животных и, прежде всего, в эндокринологии значительно расширили возможности регулирования воспроизводительной функции у животных биотехнологическими методами.
Одним из наиболее выдающихся достижений первой половины 20 века в области биотехнологии размножения животных следует считать открытие основных функций передней доли гипофиза. Целая серия замечательных разработок в этой области позволила установить, что через эту часть гипофиза осуществляется прямая или опосредованная регуляция широкого спектра биологических процессов в организме.
Передняя доля гипофиза у млекопитающих секретирует три гормона, которые оказывают стимулирующее и регуляторное действие на функцию половых желез. К ним относятся: фолликулостимулирующий гормон (ФСГ), лютеинизирующий гормон (ЛГ) и пролактин (или лютеотропный гормон (ЛТГ). Последний из гормонов, как выяснилось впоследствии, проявляет лютеотропные свойства только у грызунов.
Познания закономерностей процесса воспроизведения у самок сельскохозяйственных животных базировалось на определении динамики секреции гонадотропных и половых гормонов в разные фазы полового цикла. Уровни секреции гонадотропных и половых гормонов являются носителем обширной информации о функциональной активности гипофиза и половых желез на разной стадии репродуктивной жизни животного, а также важным критерием активного контроля за эффективностью вмешательства в процессы воспроизведения животных с целью их регулирования.
В первые 6-8 дней после отёла концентрация ЛГ в крови коров невелика. Затем этот показатель постепенно повышается. Этот процесс происходит параллельно с увеличением содержания ЛГ в гипофизе, хотя скорость накопления его в гипофизе выше, чем увеличение его уровня в крови коров. Преимущественное возрастание концентрации ЛГ в гипофизе обусловлено биологической необходимостью создания запаса этого гормона для его предовуляторного выброса. Выделение из гипофиза другого гонадотропного гормона – ФСГ также увеличивается одновременно с развитием фолликулов.
С 7-10 дня после отёла секреция ЛГ переходит в пульсирующую форму с интервалом 60-80 мин с последующим проявлением предовуляторного подъёма у овулировавших коров или отсутствия подъёма у неовулировавших коров.
Уровень ЛГ в периферической крови свиней измеряют радиоиммунологическим методом. При этом обнаруживается подъём у всех животных в день охоты и в день, предшествовавший охоте. При взятии охоты с интервалом 6 ч исследователи наблюдали дополнительный подъём ЛГ в лютеиновую фазу цикла. Наибольший подъём ФСГ наблюдался между 2 и 3 днями цикла, хотя подъём концентрации гормона в крови начинался одновременно с подъёмом предовуляторного уровня ЛГ. Наряду с основным пиком ФСГ проявлялись дополнительные пики в другие периоды цикла, которые совпадали по времени с подъёмом ЛГ.
У овец предовуляторный пик ЛГ проявляется в первые 12-16 ч после начала охоты и продолжается 8-10 ч. Величина его превышает базальный уровень в 30-50 раз. Овуляция наступает между 21 и 26 ч после пика ЛГ. Установлен небольшой подъём ЛГ на 14-15 день цикла.
Подъём концентрации ФСГ у овец установлен в день охоты (200 нг/мл). В другие дни цикла концентрация ФСГ в сыворотке крови составляет 100-160 нг/мл.
У кобыл, в отличие от других видов сельскохозяйственных животных, вместо короткого предовуляторного пика ЛГ концентрация этого гормона повышается постепенно в течение эструса и достигает пика через 1-2 дня после овуляции, а затем постепенно понижается в течение нескольких дней.
Концентрация ФСГ в сыворотке крови кобыл повышается в конце эструса и повторно в середине диэструса, за 10-13 дней до следующей овуляции. Эти пики ФСГ примерно в четыре раза превышают базальный уровень.
Важным звеном в понимании механизма регуляции полового цикла у животных является изучение секреции половых гормонов яичников. Выявлена одинаковая закономерность изменения уровня половых гормонов в крови основных видов сельскохозяйственных животных. В конце полового цикла происходит резкое падение уровня прогестерона. В отличие от жвачных, падение уровня прогестерона в крови свиней повышается в течение 5 дней, а у овец – 4 дней. Это, по-видимому, обусловлено большим числом жёлтых тел у свиней, чем у коров и овец.
Концентрация прогестерона в сыворотке крови кобыл обычно находится на низком уровне в период эструса, быстро повышается через 24-28 ч после овуляции, достигая пика через 5-7 дней. Этот уровень сохраняется в последующие 5-6 дней, а затем резко понижается между 14-16 днями.
Вслед за резким падением прогестерона в конце полового цикла у животных наблюдается быстрый подъём концентрации эстрогенов. Выявлен подъём уровня эстрогенов, предшествующий предовуляторному выделению ЛГ, что характеризует эстрогены как физиологический пускатель, стимулирующий необходимое для овуляции выделение ЛГ у овец и коров. Уровни эстрогенов в крови коров и овец повышаются в три раза в течение полового цикла: в начале цикла до подъёма уровня прогестерона, в середине цикла и перед регрессией жёлтого тела. Именно в этот период наблюдается заметное увеличение числа крупных фолликулов в яичниках коров.
Высокая концентрация эстрогенов в крови коров в ранний послеотёльный период необходима для поддержания высокого тонуса мускулатуры матки и быстрой её инволюции, а также для торможения процессов выделения ФСГ и ЛГ. Это также предупреждает преждевременное проявление охоты и овуляции, когда ещё не завершена инволюция матки. С уменьшением концентрации эстрогенов в крови их тормозящее действие снижается, что способствует выделению обоих гонадотропинов, росту и развитию фолликулов; новый короткий подъём уровня эстрогенов в крови в период перед полиовуляцией стимулирует предовуляторный выброс ЛГ.
Уровень прогестерона в крови у коров резко падает примерно за 24-28 ч до отёла, а при наступлении отёла снижается до минимума. В первые 2-3 недели после отёла концентрация прогестерона в крови коров держится на низком уровне. При первом выбросе ЛГ происходит небольшое и кратковременное повышение секреции прогестерона. Именно это повышает чувствительность гипоталамо-гипофизарного комплекса, вследствие чего стимулируется секреция гонадотропных гормонов гипофиза, которая обеспечивает предовуляторный выброс ЛГ и первую овуляцию.
Одним из значительных достижений второй половины 20 века было открытие гонадотропин-релизинг гормона (Гн-РГ), или гонадолиберина, контролирующего гонадотропную функцию гипофиза. Осуществляется это следующим образом:
Нервные окончания из гипоталамуса выделяют нейрогормональные вещества, которые переносятся вниз через гипофизарную ножку в переднюю долю гипофиза и оказывают влияние на секреторную активность гипофизарных клеток. Была установлена структура Гн-РГ, состоящего из 10 аминокислот (декапептид), и идентичность его у животных всех видов. Отсутствие видоспецифичности Гн-РГ, в отличие от гипофизарных гонадотропинов, и его несложная структура привлекли внимание исследователей с целью его химического синтеза и применения для регулирования сроков овуляции у животных. И это предвидение учёных подтвердилось. Вскоре он был синтезирован и в России созданы его аналоги, в частности, сурфагон. Препарат имеет чётко выраженную лютеолитическую функцию и способствует процессу полиовуляции фолликулов у коров – доноров эмбрионов.
Сегодня препарат получают в достаточных количествах, что позволило перейти к изучению его роли в регуляции воспроизводительной функции у сельскохозяйственных животных.
Еще одно открытие в области биотехнологии второй половины 20 века касаются лютеолитического фактора, простагландина F2-альфа (ПГФ2-альфа). Установлено, что после удаления матки жёлтое тело функционирует в течение продолжительного периода времени, и это является убедительным доказательством существования лютеолитического фактора в матке. Доказано, что маточный лютеолизин переносится из яичниковой вены в яичниковую артерию и поступает через артериальную кровь в яичник.
У коров, свиней и овец ПГФ2-альфа выделяется из матки в виде выбросов волнообразно, каждый продолжительностью несколько часов и с интервалами времени. Регрессия жёлтого тела обычно наступает через 2 суток после начала выделения синтетического гормона ПГФ2-альфа, а охота на третьи или четвёртые.
Промышленностью синтезировано несколько аналогов препарата в форме эстрофана (Чехия), просольвина (Голландия), магэстрофана (Россия). Регрессия жёлтого тела после их инъецирования происходит через 24-48 часа, охота наступает через 76 часов.