- •Министерство образования республики беларусь
- •Брест 2000
- •Тема 1.Физиология растительной клетки
- •Работа 2. Реакция на дезоксирибонуклеиновую кислоту (по Фельгену).
- •Работа 5. Изменение проницаемости цитоплазмы
- •Работа 6. Явление плазмолиза и деплазмолиза. Колпачковый плазмолиз.
- •Клеточного сока плазмолитическим методом
- •Работа 8. Определение сосущей силы клеток (по Уршпрунгу).
- •Работа 9. Зависимость сосущей силы от степени насыщения клеток водой.
- •Тема 2. Фотосинтез Работа 10. Разделение пигментов зеленого листа и их химические свойства.
- •Работа 11. Распределение пластидных пигментов методом бумажной хроматографии
- •Работа 12. Оптические свойства пигментов.
- •Работа 13. Фотосенсибилизирующее действие хлорофилла.
- •Работа 14. Определение интенсивности фотосинтеза по количеству co2, поглощенного растением.
- •Работа 15. Обнаружение фотосинтеза методом крахмальной пробы.
- •Тема 3. Дыхание Работа 16. Определение интенсивности дыхания по количеству поглощенного кислорода.
- •Выделенной углекислоты.
- •Работа 18. Потеря сухого вещества при прорастании семян.
- •Работа 19. Определение дыхательного коэффициента маслянистых семян.
- •Тема 4. Водообмен растений Работа 20. Сравнение транспирации верхней и нижней сторон листа хлоркобальтовым методом.
- •Работа 21. Определение транспирации и относительной транспирации весовым методом. Влияние внешних условий на транспирацию.
- •Работа 23. Водообмен ветки сосны.
- •Тема 5. Минеральное питание растений. Работа 24. Микрохимический анализ золы.
- •Работа 25. Определение содержания золы в разных частях растений.
- •Работа 26. Определение объема корневой системы, общей и рабочей адсорбирующей поверхности корней.
- •Работа 27. Антагонизм ионов
- •Опыт 1. Антагонизм ионов калия и кальция.
- •Опыт 2. Антагонизм ионов водорода и кальция
- •Тема 6: Рост растений Работа 28. Влияние гетероауксина на рост корней
- •Работа 29. Полярность черенков.
- •Работа31. Геотропизм.
- •Работа 32. Настические изгибы черешков под действием индолилуксусной кислоты (иук).
- •Работа 33. Превращение веществ при прорастании семян.
- •Тема 7: Устойчивость растений к неблагоприятным
- •Условиям среды
- •Работа 34. Защитное действие сахара на цитоплазму
- •При замораживании.
- •Работа 35. Превращение запасных веществ в побегах древесных растений в зимний период.
- •Работа 36. Влияние высокой температуры на проницаемость цитоплазмы.
- •Работа 37. Определение жаростойкости растений (по ф. Ф. Мацкову).
- •Работа 38. Определение температурного порога коагуляции цитоплазмы (по п. А. Генкелю).
- •Литература
- •Содержание
- •Тема 1. Физиология растительной клетки
- •Тема 2. Фотосинтез
- •Тема 7. Устойчивость растений неблаго- приятным условиям среды
- •Задачи:
- •Тема: фотосинтез Вопросы:
- •Задачи:
- •Тема: дыхание растений Вопросы:
- •Задачи:
- •Тема: водный режим растений Вопросы:
- •Задачи:
- •Тема: минеральное питание растений Вопросы:
- •Задачи:
- •Тема: рост и развитие растений Вопросы:
- •Тема: физиологические основы устойчивости растений к неблагоприятным условиям среды. Вопросы:
- •Аннотация Еремин в.М., Бойко в.И., Рой ю.Ф., Зеркаль с.В. Малый практикум по физиологии растений. - стр.
- •Сведения об авторах
Работа 11. Распределение пластидных пигментов методом бумажной хроматографии
Материалы и оборудование: 1) свежие листья, 2) ацетон, 3) СаСО3, 4) петролей эфир или бензин, 5) кварцевый песок, 6) полоска хроматографической бумаги (1,5х2х20 см), 7) фарфоровая ступка, 8) колба Бунзена со стеклянным фильтром, 9) бюксы или баночки с притертыми пробками (2 щт), 10) цилиндр, закрытый пробкой с крючком, 11) насос Камовского.
Хроматографический метод разделения пигментов впервые предложенный проф. М.С.Цветом, имеет в настоящее время большое число вариантов. Широко используется для разделения пигментов и метод бумажной хроматографии. Он основан на различной адсорбции пигментов на бумаге
и разной растворимости в растворителях: чем лучше адсорбируется вещество, тем ближе к линии старта будет располагаться его зона.
Ход работы: Свежие листья растереть в ступке, добавляя кварцевый песок и СаСО3. Экстрагировать пигменты 100%-м ацетоном и профильтровать вытяжку в колбу Бунзена через стеклянный фильтр. Вытяжку (раствор пигментов) слить в емкость с притертой пробкой (на 2 – 3 гр материала около 25 мл ацетона). Эта операция проделывается одной бригадой, которая готовит вытяжку на всю подгруппу.
Полоску хроматографической бумаги опускают на несколько секунд в приготовленную вытяжку, при этом раствор пигментов поднимается на 1,5–2 см. Бумагу высушивают в токе воздуха (вентилятор) и снова опускают в вытяжку, повторяя операцию 5 – 7 раз, пока у верхней границы пигмента не образуется желто-зеленая полоса. Теперь нижний конец полоски погружают на несколько секунд в чистый ацетон, чтобы все пигменты поднялись на бумаге на 1 – 1,5 см. В результате на бумаге образуется стартовая полоса, в которой находится смесь пигментов. Полоску высушивают в токе воздуха до исчезновения запаха ацетона и помещают прикрепив к пробке, вертикально в цилиндр на дне которого находится слой петролейного эфира и бензина. Полоска должна так контактировать с жидкостью, чтобы растворитель не касался зоны пигментов.
Спустя 10 – 15 мин растворитель поднимается по бумаге на 10 – 12 см, при этом произойдет распределение пигментов. Отметить на полосе границы зон, зарисовать хроматограмму, обозначив на ней пигменты. Внизу будет расположен хлорофилл В, над ним – хлорофилл А, затем ксантофилл, а выше всех – каротин. Сделать вывод о причинах разделения пигментов на бумаге и указать степень адсорбции разных пигментов.
Работа 12. Оптические свойства пигментов.
Материалы и оборудование: 1) спиртовые или ацетоновые растворы хлорофилла разной концентрации, 2) раствор каротина (бензиновая вытяжка корнеплода моркови) и ксантофилла (получены разделением по Краусу), 3) спектроскопы, 4) настольные лампы, 5) цветные карандаши.
Одним из основных свойств пигментов листа является их способность поглощать световую энергию; однако это поглощение характеризуется избирательностью, т.е. разные участки спектра поглощаются неодинаково. Это доказывается разложением пропущенного через пигмент света при помощи призмы. В отдельных участках спектра будут видны темные полосы, что говорит о поглощении этих лучей. Полученный спектр назы-
вается спектром поглощения. Если сравнить спектры поглощения пигментов разной концентрации (можно брать раствор одной концентрации, но с разной толщиной слоя), можно определить степень поглощения отдельных лучей: чем концентрированнее раствор, тем сильнее он поглощает свет, и даже в слабопоглощаемых участках будут темные полосы. Лучи, которые поглощаются наилучшим образом, можно определить даже по спектру слабоконцентрированного раствора.
Хлорофилл обладает способностью к флюоресценции, т.е. свечению, возбуждаемому освещением. Свет, испускаемый при флюоресценции, имеет всегда большую длину волны, по сравнению с поглощенным, так как часть поглощенной энергии выделяется в виде тепла. У хлорофилла наблюдается красная флюоресценция.
Ход работы: Направить поток света в щель спектроскопа и отрегулировать четкость и яркость спектра. Поочередно помещать пробирки с раствором хлорофилла разной концентрации перед щелью спектроскана. Отметить положение черных полос, которые соответствуют поглощенным лучам. Сравнить -спектр поглощения хлорофилла и бензиновой вы-тяжки моркови. Заполнить таблицу, зарисовать цветными карандашами спектры поглощения с нанесенными черными линиями.
Растворы |
Ф |
С |
Г |
З |
Ж |
О |
К |
1. Хлорофилл
очень слабый
слабый
средний
концентрированный
очень концентрир.,
2. Каротин
Пронаблюдать флюоресценцию хлорофилла, рассмотрев пробирку с вытяжкой сначала в проходящем свете, затем в отраженном. Сделать вывод об изменении окраски и причинах.
