- •Министерство образования республики беларусь
- •Брест 2000
- •Тема 1.Физиология растительной клетки
- •Работа 2. Реакция на дезоксирибонуклеиновую кислоту (по Фельгену).
- •Работа 5. Изменение проницаемости цитоплазмы
- •Работа 6. Явление плазмолиза и деплазмолиза. Колпачковый плазмолиз.
- •Клеточного сока плазмолитическим методом
- •Работа 8. Определение сосущей силы клеток (по Уршпрунгу).
- •Работа 9. Зависимость сосущей силы от степени насыщения клеток водой.
- •Тема 2. Фотосинтез Работа 10. Разделение пигментов зеленого листа и их химические свойства.
- •Работа 11. Распределение пластидных пигментов методом бумажной хроматографии
- •Работа 12. Оптические свойства пигментов.
- •Работа 13. Фотосенсибилизирующее действие хлорофилла.
- •Работа 14. Определение интенсивности фотосинтеза по количеству co2, поглощенного растением.
- •Работа 15. Обнаружение фотосинтеза методом крахмальной пробы.
- •Тема 3. Дыхание Работа 16. Определение интенсивности дыхания по количеству поглощенного кислорода.
- •Выделенной углекислоты.
- •Работа 18. Потеря сухого вещества при прорастании семян.
- •Работа 19. Определение дыхательного коэффициента маслянистых семян.
- •Тема 4. Водообмен растений Работа 20. Сравнение транспирации верхней и нижней сторон листа хлоркобальтовым методом.
- •Работа 21. Определение транспирации и относительной транспирации весовым методом. Влияние внешних условий на транспирацию.
- •Работа 23. Водообмен ветки сосны.
- •Тема 5. Минеральное питание растений. Работа 24. Микрохимический анализ золы.
- •Работа 25. Определение содержания золы в разных частях растений.
- •Работа 26. Определение объема корневой системы, общей и рабочей адсорбирующей поверхности корней.
- •Работа 27. Антагонизм ионов
- •Опыт 1. Антагонизм ионов калия и кальция.
- •Опыт 2. Антагонизм ионов водорода и кальция
- •Тема 6: Рост растений Работа 28. Влияние гетероауксина на рост корней
- •Работа 29. Полярность черенков.
- •Работа31. Геотропизм.
- •Работа 32. Настические изгибы черешков под действием индолилуксусной кислоты (иук).
- •Работа 33. Превращение веществ при прорастании семян.
- •Тема 7: Устойчивость растений к неблагоприятным
- •Условиям среды
- •Работа 34. Защитное действие сахара на цитоплазму
- •При замораживании.
- •Работа 35. Превращение запасных веществ в побегах древесных растений в зимний период.
- •Работа 36. Влияние высокой температуры на проницаемость цитоплазмы.
- •Работа 37. Определение жаростойкости растений (по ф. Ф. Мацкову).
- •Работа 38. Определение температурного порога коагуляции цитоплазмы (по п. А. Генкелю).
- •Литература
- •Содержание
- •Тема 1. Физиология растительной клетки
- •Тема 2. Фотосинтез
- •Тема 7. Устойчивость растений неблаго- приятным условиям среды
- •Задачи:
- •Тема: фотосинтез Вопросы:
- •Задачи:
- •Тема: дыхание растений Вопросы:
- •Задачи:
- •Тема: водный режим растений Вопросы:
- •Задачи:
- •Тема: минеральное питание растений Вопросы:
- •Задачи:
- •Тема: рост и развитие растений Вопросы:
- •Тема: физиологические основы устойчивости растений к неблагоприятным условиям среды. Вопросы:
- •Аннотация Еремин в.М., Бойко в.И., Рой ю.Ф., Зеркаль с.В. Малый практикум по физиологии растений. - стр.
- •Сведения об авторах
Тема 6: Рост растений Работа 28. Влияние гетероауксина на рост корней
Материалы и оборудование: 1) семена пшеницы, подсолнечника и др.; 2) 0,01%-ный раствор гетероауксина; 3) колба; 4) чашки Петри (5 шт.); 5) пипетки градуированные на 10 мл (2 шт.) и на 1 мл; 6) клей; 7) бумага; 8) миллиметровая линейка.
Объяснение. Рост растительных клеток регулируется фитогормонами группы ауксина, из которых наибольшее значение имеет гетероауксин (С10Н9О2N).
В малых концентрациях эти вещества стимулируют рост, а в больших оказывают отрицательное влияние на растительные клетки.
Ход работы. Взять 5 чашек Петри, снабдить их этикетками и налить в них растворы гетероауксина разной концентрации:
В 1-ю чашку налить 10 мл 0,01%-ного раствора.
Во 2-ю чашку – 1 мл 0,01%-ного раствора и 9 мл воды,
В 3-ю чашку – 1 мл раствора из 2-й чашки и 9мл воды,
В 4-ю чашку – 1 мл раствора из 3-й чашки и 9 мл воды,
В 5-ю чашку – 10 мл воды. (Переносить растворы из одной чашки в другую можно одной и той же пипеткой, используя ее и для перемешивания растворов в чашках.)
Поместить в каждую чашку по 10, по возможности одинаковых семян, закрыть чашки крышками и поставить в теплое темное место. Через 5-7 дней измерить длину корешков всех проростков и занести полученные данные в таблицу.
Сделать вывод о влиянии концентрации гетероауксина на рост корней.
№ чашки |
Концентрация гетероауксина , % |
Общая длина корешков десяти проростков. |
1 2 3 4 5
|
0,01 0,001 0,0001 0,00001 0 |
|
Работа 29. Полярность черенков.
Материалы и оборудование: 1) побеги тополя или ивы корзиночной, 2) цилиндр стеклянный с пробкой, 3) скальпель, 4) фильтровальная бумага, 5) ножницы, 6) нитки.
Полярностью у растений называют различия в физико-химических свойствах, строении и физиологических особенностях морфологически противоположных концов растения и его отдельных частей. Полярность проявляется, например, в образовании на противоположных концах тела растения различных органов.
Одной из причин полярности черенков является одностороннее передвижение ауксина, стимулирующего в местах своего скопления развитие каллюса (наплыва) и придаточных корней.
Ход работы. Приготовить влажную камеру, для чего обложить стенки стеклянного цилиндра фильтровальной бумагой и налить па дно немного воды.
Вырезать из побега тополя или ивы три черенка, имеющих длину на 5—6 см меньше высоты цилиндра. У одного из черенков снять в средней части кольцо коры шириной около 1 см. Подвесить черенки при помощи ниток к пробке так, чтобы два черенка (в том числе окольцованный) находились в нормальном положении, а третий — в перевернутом. Опустить черепки в цилиндр, следя за тем, чтобы концы черенков не касались воды.
Через 2—3 недели проследить за образованием на черенках каллюса, придаточных корней и молодых побегов и сделать соответствующие рисунки.
В выводах отметить, по какой части стебля и в каком направлении передвигается ауксин.
Работа 30. Фототропизм.
Материалы и оборудование: 1) проростки овса высотой 3—4 см, выращенные в полной темноте в металлических или пластмассовых стаканчиках с почвой; 2) фототропическая камера — светонепроницаемый ящик с зачерненными внутренними стенками и небольшим отверстием в одной из стенок на высоте 5—6 см от дна; 3) фольга; 4) тушь;5) спички (одна из них заостренная).
Тропизмами называют процессы изгибания органов растений под влиянием односторонне действующих раздражителей. Тропизмы наблюдаются у органов с радиальной симметрией (стебель, корень, колеоптиль) и могут быть положительными (изгиб в сторону
раздражителя) и отрицательными (изгиб в противоположную сторону). Тропизмы — ростовые движения, обусловленные неравномерным ростом двух противоположных сторон какого-либо органа, причем быстрее растущая сторона становится выпуклой. Один из видов тропизмов — фототропизм — изгибание растущих частей растения под влиянием одностороннего (бокового) освещения. Явление фототропизма удобно наблюдать на колеоптилях злаков.
Ход работы. Осмотреть проростки овса, выращенные в темноте, и удалить изогнутые растения. Быстро нанести на одну сторону нескольких колеоптилей метки тушью на равных расстояниях друг от друга. На верхушки других проростков надеть светонепроницаемые колпачки (для приготовления колпачка обернуть кусочек фольги шириной около 1 см вокруг спички и скрутить сверху).
Поместить проростки в фототропическую камеру так, чтобы нанесенные на колеоптили метки оказались на затененной стороне, т. е. были обращены к стенке противоположной той, в которой имеется отверстие. Поставить камеру на подоконник или перед настольной лампой отверстием в сторону источника света.
Через сутки рассмотреть проростки, обратив внимание на расположение меток. Зарисовать проростки в начале опыта и в конце.
Сделать выводы, ответив на следующие вопросы:
1. Где находится место восприятия одностороннего освещения? 2. В какой зоне происходит фототропический изгиб? 3. Каков механизм фатотропического изгиба?
