4.2. Дополнительная литература

4.2.1. Спектроскопические методы исследований в физиологии и биохимии. – Л.: Наука, 1987. – 204 с.

4.2.2. Физико-химические методы молекулярной биологии. – М.: Изд-во Моск. ун-та., 1978. – С. 65 – 95; 127 –173.

4.2.3. Бурштейн Э. А. Люминесценция белковых хромофоров. – М.: ВИНИТИ «Итоги науки и техники». Серия БИОФИЗИКА. – Т. 6, 1976. – 216 с.

4.2.4. Черницкий Е. А. Люминесценция и структурная лабильность белков в растворе и клетке. – Минск.: Наука и техника, 1972. – 280 с.

4.2.5. Эккерт Р. и др. Физиология животных. – М.: Мир, 1991. – Т. 1. Фоторецепторы. – С. 239 – 250.

4.2.6. Лакович Дж. Основы флуоресцентной спектроскопии. – М.: Мир, 1986. – 496 с.

4.3. Экспериментальная часть

4.3.1. Инструкция по эксплуатации фотоэлектроколориметра = ФЭКа, модели КФК-2

1. За 15 мин. до начала фотометрии, под контролем лаборанта или преподавателя, дежурный убеждается, что стрелка гальванометра находится в положении «механический 0», открывает крышку кюветного отделения прибора, вставляет его вилку в сетевую розетку и, тумблером на задней панели слева, включает прогрев ФЭКа.

2. Перед началом измерений, вращая рукоять светофильтра, на передней панели прибора слева, установить нужный диапазон светового потока = пучка.

3. Убедиться, что рукоять чувствительности прибора на передней панели справа, соответствует цветовому диапазону рукояти светофильтра.

4. Подготовить фотометрические кюветы нужной толщины, насухо протереть марлевой салфеткой их оптические грани и, убедиться в отсутствии на них пятен и др. грязи. ВНИМАНИЕ! Поскольку каждый ФЭК оснащен лишь одним набором кювет, изготовленных из полированного оптического стекла, пользоваться ими можно лишь над рабочим столом и брать рукой, только за боковые грани, оберегая от царапин и ударов.

5. Убедиться, что стрелка включенного гальванометра находится в положении «электрический 0».

6. Заполнить контрольную кювету дистиллятом или, указанным в соответствующей методике контрольным раствором, убедиться в отсутствии капель и потеков на ее оптических гранях, строго вертикально вставить ее в дальнее гнездо кюветодержателя и, рукояткой в центре передней панели ФЭКа, до упора ввести кювету в световой пучок.

7. В соответствии с п. 6, заполнить вторую кювету исследуемым раствором и вставить ее в свободное гнездо кюветодержателя, примерно на том же расстоянии от источника света. ВНИМАНИЕ! При анализе серии однотипных образцов, избегая излишних промывок кюветы, начинать фотометрию с наиболее разбавленных проб.

8. Закрыть крышку кюветного отделения до звяка шторки и, вращая на передней панели вверху рукояти грубой, а затем и тонкой настройки, установить стрелку гальванометра на 0 шкалы D = А. ВНИМАНИЕ! При положении стрелки между делениями шкалы - округлять цифру до целого значения.

9. Не открывая крышки кюветного отделения, переместить до упора рукоять кюветодержателя в противоположение, заменив тем самым в световом потоке, контрольную кювету исследуемой.

10. Убедиться, что стрелка гальванометра успокоилась и занести показания ФЭКа в протокол опыта.

11. Открыть крышку кюветного отделения, вынуть из кюветодержателя кювету с исследуемым раствором и, декантировать ее содержимое обратно в соответствующую пробирку. ВНИМАНИЕ! Для последующих измерений, во избежание потеков на стенках, кювету не переворачивать, а удерживая вверх дном, осушить ее торец фильтровальной бумагой.

12. При последующих измерениях, руководствоваться пп. 6-11 данной инструкции.