
- •Законы Менделя.
- •Полигены (предложены Мазером). Полигенное наследование.
- •Гены-модификаторы
- •Хромосомная теория наследственности. (Морган и др.)
- •Генетический анализ неполного сцепления.
- •Карты хромосом.
- •Принципы построения цитологических карт:
- •Картирование генов у человека.
- •Метод отношения правдоподобия
- •Получение гибридных соматических клеток.
- •Картирование генов с использованием транслокаций и делеций.
- •Метод днк-зондов.
- •N мутант n
- •Молекулярные основы наследственности.
- •Структурные особенности строения и упаковки хромосом.
- •Приготовление хромосомных препаратов.
- •Денверовская классификация:
- •Полимеразная цепная реакция (пцр).
- •1983 Г. Карри Муллис метод анализа геномной днк.
- •Блот-гибридизация по Саузерленду (гибридизация in situ).
- •Плазмиды.
- •Геномная и тканеспецифичная днк. Библиотеки генов, их скрининг.
- •Секвенирование последовательностей днк.
- •Механизмы, нарушающие равновесие генов в популяции
- •Дрейф генов.
- •Генетика пола.
- •Мобильные элементы генома (мгэ).
- •Транспозоны млекопитающих.
- •Функциональное значение мгэ.
- •Изменчивость наследственного материала.
- •Мутационная теория. Классификация мутаций.
- •Закон гомологических рядов Вавилова.
- •Генеративные и соматические мутации.
- •Индуцированные мутации.
- •Хромосомные перестройки.
- •Полиплоидия.
- •Эксцезионная репарация. Темновая репарация и внеплановый синтез днк.
Плазмиды.
Плазмиды – небольшие двуцепочечные молекулы ДНК, которые могут присутствовать в различном числе копий в бактериальной клетке.
Открытие плазмид связано с изучением генетической природы антибиотикоустойчивости. Оказалось, что именно плазмиды могут нести гены, сообщающие клетке устойчивость к антибиотикам и потеря чувствительности бактерий к их действию как раз и происходит за счет отбора тех штаммов, в которых имеются плазмиды с сообщающей генетическую информацию.
Плазмиды имеют автономную систему репликации, обеспечивающую поддержание их количества в клетке на определенном уровне (от 1 до нескольких сотен плазмидных генов на клетку).
Обычно для клонирования выбирают плазмиды с ослабленным контролем репликации, что позволяет им накапливаться в клетке в большом количестве. Конструирование плазмидных клонирующих векторов состоит во внесении изменения контроля репликации и добавление или вырезание генов антибиотикоустойчивости или удобных для клонирования иных генетических элементов:
специфические сайты рестрикции
инициация и регуляция транскрипции и т.д.
Чаще для клонирования используют плазмиды pBR332 или Col E1 или их поизводные.
Кольцевую молекулу плазмидной ДНК можно легко перевести в линейную форму путем единичного разрыва в месте локализации уникального сайта рестрикции.
Присоединение (встраивание, инсерция) фрагмента чужеродной ДНК к концам линейной молекулы осуществляется с помощью специфических ферментов (лигазы), после чего гибридные плазмиды вновь принимают кольцевую форму. Разработаны достаточно простые и эффективные методы трансформации бактерий, т.е. искусственное введение плазмид в бактериальную клетку, при этом присутствующие в плазмидах гены антибиотикоустойчивости используют в качестве маркеров трансформирующих бактерии для их дальнейшего отбора.
При размножении трансформирующих бактерий происходит ↑ числа копий инсертированного фрагмента ДНК. Т.о. этот чужеродный для бактерии генетический материал может быть получен практически в любых количествах.
Также выделенная из бактерий плазмидная ДНК ли изолированный фрагмент может быть использован в дальнейшем как ДНК – зонд.
Для некоторых целей в качестве клонирующих векторов оказалось удобнее использовать фаги (бактериальные вирусы). Фаговая ДНК существует только в линейной форме, поэтому при её рестрикции образуются только 2 фрагмента, которые сшивают с чужеродной ДНК с образованием химерного фага, технически эта операция проще инсерции.
В последнее время большое распространение получило клонирование в космидах(конструкция, объединяющая в себе преимущества плазмид и фагов).
Космиды получены на основе плазмид, но в них введены генетические элементы фага, отвечающие за упаковку ДНК в фаговые частицы, такие векторы могут существовать не только в виде плазмид и бактериальной клетки, но и в виде фаговых частиц in vitro.
Космиды обладают большей клонирующей способностью по сравнению с плазмидными и фаговыми векторами и могут нести до 40 – 45 тыс.п.о. инсертированной ДНК.
Все вышеперечисленные векторы используют для клонирования прокариотических систем.
Векторы, пригодные для направленного переноса в эукариотическую клетку, конструируют на основе прокариотических или дрожжевых плазмид – единственные плазмиды, которые найдены в клетках эукариот, а также используют различные эукариотические вирусы (ретровирусы, аденоассоциированные вирусы).
При использовании плазмид в качестве клонирующих векторов в них вводят вирусные последовательности, ответственные за начало репликации. Введение векторов в эукариотические клетки часто осуществляют путем котрансформации, т.е. одновременно вводят плазмиды и сегмент чужеродной ДНК. Векторные последовательности, введенные в клетки эукариот могут сохраняться в течение нескольких дней в виде суперскрученных кольцевых молекул – эписом. Для клонирования субхромосомных фрагментов ДНК, содержащих целые гены, разработана система дрожжевых mini – хромосом (искусственные дрожжевые хромосомы УАС). Эти хромосомы конструируют на основе плазмидных векторов, содержащих в своем составе известные центромерные и теломерные последовательности хромосом дрожжей, необходимых для поддержания и репликации векторов в клетках хозяина, такие системы способны удерживать фрагменты чужеродной ДНК размером несколько сотен тыс. или даже миллионов п.о.