- •1. Bordetella pertussis - возбудитель коклюша.
- •Задача 2.
- •3. Лабораторная диагностика менингококковых инфекций осуществляется бактериоскопическим, бактериологическим, серологическим методами. Применяются и экспресс-методы диагностики.
- •Задача 3.
- •Задача 4.
- •Задача 5.
- •1. Mycoplasma pneumoniae -возбудитель острой пневмонии.
- •Задача 6.
- •Задача 7.
- •3. Иммунитет при туберкулезе
- •Задача 8.
- •Задача 9.
- •1. Corynebacterium diphtheriae -возбудитель дифтерии
- •Задача 10.
- •1. 3. Легионеллы - возбудители легионеллеза.
- •2. Патогенез легионеллеза
Задача 9.
1. Corynebacterium diphtheriae -возбудитель дифтерии
Дифтерия - острое инфекционное заболевание, характеризующееся фибринозным воспалением на месте входных ворот (чаще всего глотки) и тяжелой интоксикацией организма с преимущественным поражением сердца, почек и нервной системы.
Возбудители дифтерии - токсигенные штаммы C.diphtheriae. Они входят в группу коринеформных бактерий, относятся к роду Corynebacterium. К этому же роду принадлежат C.pseudodiphtheriae, C.xerosis и другие представители нормальной микрофлоры слизистых оболочек (их сборное название - "дифтероиды"), от которых необходимо дифференцировать C.diphtheriae.
C.diphtheriae - грамположительные, небольшие, тонкие палочки, склонные к полиморфизму. Их отличительные признаки: наличие включений волютина на концах клеток и расположение бактерий в микропрепарате под углом - в виде латинских букв V, Y, L, растопыренных пальцев и т.п.
C.diphtheriae культивируют на специальных средах: теллуритово-кровяном агаре, свернутой сыворотке и др. По типу дыхания коринебактерии - факультативные анаэробы. По культуральным и биохимическим признакам их подразделяют на биовары - gravis, mitis, intermedius.
Дифтерийные бактерии имеют довольно сложную антигенную структуру и серологически неоднородны. Полисахаридный антиген клеточной стенки определяет их группоспецифичность, по К-антигену их подразделяют на серовары.
Токсигенность C.diphtheriae обусловлена их инфицированием и лизогенизацией умеренными бактериофагами, чаще всего В-фага-ми. Бактериофаг вносит в бактериальную клетку tox-ген, индуцирующий образование дифтерийного токсина. Штаммы, не инфицированные подобными бактериофагами, или утратившие лизогенность, не продуцируют токсин и не способны вызывать дифтерию, т.е. они не вирулентны.
В настоящее время дифтерией чаще болеют взрослые и дети старшего возраста. Это связано с массовой плановой вакцинацией детей младшего возраста, у которых формируется достаточно стойкий антитоксический иммунитет. Если не проводится своевременная ревакцинация, происходит постепенное ослабление иммунитета и повышается восприимчивость к дифтерийной инфекции.
Источник инфекции - больной или бактерионоситель, Кроме основного воздушно-капельного способа заражения, возможен и контактно-бытовой, так как C.diphtheriae может сохраняться на инфицированных предметах в высохших пленках (посуде, книгах, игрушках и пр.) в течение нескольких дней. Представляет опасность и инфицирование продуктов, например молока.
2. Факторы патогенности C.diphteriae:
1. Факторы адгезии и колонизации, которые до настоящего времени не идентифицированы. Возможно эти функции выполняют: пили, микрокапсула, компоненты клеточной стенки, с помощью которых C.diphtheriae прикрепляются к эпителиоцитам слизистой и колонизируют их.
2. Инвазивные свойства связаны с гиалуронидазой, нейраминидазой и гемолизином, которые участвуют в развитии некротических процессов слизистой оболочки и разжижении основного вещества соединительной ткани.
3. Дифтерийный токсин (гистотоксин) - основной фактор патогенности. Подобно многим бактериальным токсинам, он состоит из фрагментов А и В, выполняющих, соответственно ферментативную и рецепторную функции. Фрагмент В связывается с белковыми рецепторами на клетке-мишени, способствуя проникновению в нее фрагмента А, который обладает НАД-гликогидролазной и АДФ-рибозилтрансферазной активностью. Действуя внутриклеточно, фрагмент А расщепляет НАД и инактивирует (АДФ-риболизирует) фактор элонгации-2, который отвечает за построение пептидных цепей на рибосомах в эукариотических клетках. В результате прекращается биосинтез белка и наступает гибель клеток.
4. Корд-фактор (димиколат трегалозы) нарушает процессы дыхания в митохондриях эукариотических клеток, прежде всего в фагоцитах, обладает антифагоцитарной активностью.
3. Особенности противодифтерийного иммунитета
Иммунитет после перенесенной дифтерии отличается значительной стойкостью, носит преимущественно антитоксический характер. В последнее время уделяется внимание и антибактериальному иммунитету, его роли в предотвращении развития инфекции на начальном этапе и в противодействии формированию бактерионосительства.
5. Лабораторная диагностика дифтерии
Основной метод диагностики дифтерии - бактериологический, обычно с предварительной бактериоскопией. Серологический метод используют для определения токсигенности возбудителя и, значительно реже, для выявления антитоксинов в сыворотке крови больного.
Материалы для исследования: пленки или слизь из зева, носа, глаза и других областей в зависимости от локализации поражений. Клинический материал берут сухим тампоном, пленки отделяют пинцетом. Материал для микроскопии и посева берут отдельными тампонами. Бактериологическое исследование рекомендуется начать не позднее чем через 3 часа после взятия материала.
Бактериоскопии подвергаются микропрепараты, приготовленные с тампона и окрашенные по Граму, Леффлеру, Нейссеру. При обнаружении палочек с морфологией и расположением, характерным для C.diphtheriae (зерна волютина на полюсах клеток), дают предварительный ответ: "обнаружены палочки, подозрительные на дифтерийные; исследование продолжается".
Бактериологическое исследование. Производят посев инфицированным тампоном на чашки с теллуритовым кровяным агаром (среда Клауберга и др.), на которых могут вырасти радиально исчерченные колонии серого цвета (бивар gravis) или черные гладкие колонии несколько меньшего размера (биовар mitis). Потемнение колоний C.diphtheriae происходит вследствие их способности восстанавливать теллур из теллурита калия, (теллурит калия включают в среду для подавления роста грамотрицательной микрофлоры). Колонии отсевают на скошенные среды - сывороточный агар или свернутую лошадиную сыворотку. Выделенную культуру идентифицируют на основании изучения ее морфологических, культуральных, биохимических свойств и определения токсигенности. C.diphtheriae ферментирует глюкозу, галактозу, цистеин, не расщепляет сахарозу и мочевину.
Определение токсигенности - очень важный тест при идентификации выделенной культуры коринебактерий, так как продуцировать экзотоксин способны только патогенные штаммы C.diphtheriae и именно они являются возбудителями дифтерии. Токсигенность определяют с помощью двойной диффузии в геле (метод Оухтерлони).
Для постановки реакции нейтрализации в геле по Оухтерлони берут чашки Петри с фосфатно-пептонным агаром. На поверхность питательной среды помещают стерильную полоску фильтровальной бумаги (2,0x8 см), смоченную стандартной антитоксической противодифтерийной сывороткой, содержащей 500 МЕ/мл. По обеим сторонам бумажки на расстоянии 1 см от нее симметрично засевают испытуемые дифтерийные культуры бляшками или штрихами. Контроли: посев заведомо нетоксигенной и токсигенной культур. Результаты учитывают через 24,48 и 72 часа инкубации при 37°С. Если культура токсигенна, то между полоской бумаги и ростом культуры образуются белые линии преципитации в результате встречной диффузии антитоксина и токсина. Образующиеся дугообразные линии должны совпадать с линией преципитата контрольной токсигенной культуры.
Можно определять токсигенность у выделенных культур C.diphtheriae также при помощи вариантов реакции непрямой гемагглютинации - РОНГА и РНАТ. Эти реакции позволяют получать результат в день исследования (нередко через 1-2 часа) и отличаются высокой чувствительностью.