14

«Лабораторная диагностика туберкулёза»

1. Цель деятельности по данному разделу.

Важнейшая цель бактериологических исследований: максимально быстрое выявление наиболее эпидемически опасной категории пациентов – бактериовыделителей среди лиц с подозрением на туберкулёз по клиническим и/или рентгенологическим показаниям.

2. Список нормативных документов, регламентирующих работу по данному разделу.

Приказ Минздрава РФ от 21 марта 2003 года №109 «О совершенствовании противотуберкулёзных мероприятий в РФ».

3. Основное содержание по данной теме.

Приказом Минздрава России №109 от 21 марта 2003г. «О совершенствовании противотуберкулёзных мероприятий в РФ» утверждены инструкции по деятельности бактериологических лабораторий противотуберкулёзных учреждений, унифицированным методам микроскопических и микробиологических исследований при выявлении, диагностике и лечении туберкулёза.

Основные показатели, делающие бактериологию ключевым элементом диагностики:

• Бактериологическое подтверждение диагноза у 85% в/в больных с лёгочными формами (взрослые).

• Выделение культуры из мокроты через 14 дней у 75% в/в больных (лёгочные формы).

• Ответ лаборатории на лекарственную устойчивость через 3-4 недели у 80% в/в больных.

Эффективность исследований возрастает, если проводят контролируемый сбор материала от больного. Сбор материала опасная процедура, поэтому собирать материал для исследования нужно, соблюдая правила инфекционной безопасности. Материал для исследования на микобактерии туберкулёза собирают в стерильные флаконы с плотно завинчивающимися крышками, чтобы предотвратить заражение окружающей среды и предохранить собранный материал от загрязнения. Для получения оптимальных результатов исследования необходимо соблюдать следующие условия:

• сбор материала проводить до начала химиотерапии;

• материал для исследования необходимо собирать до утреннего приёма пищи и лекарственных препаратов;

• для исследования желательно собрать не менее 3 проб утренней мокроты. Собирают мокроту в течение 3 дней подряд;

• собранный материал необходимо как можно быстрее доставить в лабораторию;

правильно собранная мокрота имеет слизистый или слизисто-гнойный характер. Оптимальный объём исследуемой порции мокроты составляет 3-5мл. Если в данном учреждении не проводят микробиологические исследования, собранный диагностический материал должен быть централизованно доставлен в лабораторию при условии обязательного сохранения материала в промежутках между доставками в холодильнике или с применением консервантов. Доставляют материал в лабораторию в транспортировочных ящиках, которые легко можно продезинфицировать. Каждая проба должна быть снабжена соответствующей этикеткой, а вся партия – заполненным сопроводительным бланком. При первичном, так называемом диагностическом обследовании больного на туберкулёз необходимо в течение 2 или 3 ней исследовать не менее 3 порций мокроты, собранных под наблюдением медицинского персонала, что повышает результативность микроскопии. Первичный скрининг туберкулёза должны осуществлять все лечебно-диагностические учреждения системы здравоохранения. В противотуберкулёзных учреждениях используют схему обследования, предусматривающую не менее чем 3-кратное в течение 3 дней исследование мокроты или другого диагностического материала. В процессе лечения микробиологические исследования проводят регулярно не реже 1 раза в месяц в фазе интенсивной химиотерапии. При переходе к фазе долечивания исследования проводят реже – с интервалом в 2-3 месяца, при этом кратность исследования снижают до двух.

Особенность патологического материала при внелёгочных формах туберкулёза – малая концентрация микобактерий туберкулёза в нём, что требует более чувствительных методов микробиологического исследования, в первую очередь, методов посева на питательную среду. При туберкулёзе мочеполовой системы моча – наиболее доступный материал исследования. Забор мочи должен производиться специально обученной м/с. Наружные половые органы обмывают водой с мылом или слабым раствором калия перманганата. Тщательно обрабатывают наружное отверстие мочеиспускательного канала. В стерильный флакон собирают среднюю порцию мочи: у мужчин естественным путём, у женщин – с помощью катетера. Мочу из почечных лоханок собирают в стерильные пробирки при катетеризации одной или двух почек, в последнем случае – обязательно раздельно из каждой почки. Небольшое количество этой мочи центрифугируют, осадок исследуют.

У мужчин сперму, пунктаты яичек, секрет простаты подвергают центрифугированию для получения осадка. При любой локализации специфического процесса в половой сфере у мужчин массаж предстательной железы может способствовать выделению секрета, содержащего микобактерии туберкулёза.

Менструальную кровь у женщин собирают отсосом или с помощью колпачка Кафки. Полученный материал освобождают от эритроцитов, отмывая его дистиллированной водой с последующим центрифугированием. Осадок исследуют.

Выделения из шеечного канала матки собирают в какую-либо ёмкость или колпачок Кафки, т.е. желательно накопить 1-2 мл патологического материала.

Материал, полученный при оперативных вмешательствах на почках, половых органах, при биопсиях, соскобах эндометрия, гомогенизируют. Для этого его помещают в стерильную ступку и тщательно измельчают стерильными ножницами. К полученной взвеси добавляют стерильный речной песок в количестве, равном её массе, затем доливают 0,5-1,0 мл изотонического раствора натрия хлорида и всё растирают до образования кашицеобразной массы с добавлением изотонического раствора натрия хлорида (4-5мл). Затем массе дают отстояться в течение 1-1,5 мин., надосадочную жидкость исследуют.

При туберкулёзе костей и суставов – пунктат (гной натёчных абсцессов), полученный стерильным шприцем, помещают в стерильную посуду и сразу доставляют в лабораторию. Стерильной пипеткой, предварительно смоченной стерильным изотоническим раствором натрия хлорида, забирают 2-5 мл гноя, переносят его во флакон с бусами и добавляют ещё 2-3 мл изотонического раствора натрия хлорида. Флакон закрывают пробкой и встряхивают в шуттель-аппарате в течение 8-10 мин. Гомогенизированную взвесь исследуют. При свищевых формах костно-суставного туберкулёза берут гной из свища. Обильное отделяемое собирают непосредственно в пробирку. В случаях скудного выделения гноя промывают свищевой ход стерильным изотоническим раствором натрия хлорида, а промывные воды, собранные в пробирку, или кусочек тампона, пропитанного гноем, отправляют на исследование. Хирургический материал, полученный при оперативных вмешательствах на костях и суставах, может состоять из гнойно-некротических масс, грануляций, рубцовой, костной ткани, ткани синовиальных оболочек и других субстратов. Его обработку производят, как при туберкулёзе почек. Микробиологическое исследование синовиальной жидкости в 3% растворе натрия цитрата (в соотношении 1:1) для предупреждения свёртывания проводят непосредственно после пункции.

При туберкулёзе лимфатических узлов – гной, извлечённый во время пункции лимфатических узлов, исследуют также, как гной натёчных абсцессов. Ткани лимфатических узлов, полученные при оперативных вмешательствах, биопсиях, исследуют, как при других формах туберкулёза.

Исследование каловых масс на микобактерии туберкулёза производят чрезвычайно редко в связи с практически полным отсутствием положительных результатов.

Микроскопия микобактерий

Микроскопия мокроты – сравнительно быстрый, простой и недорогой метод, который должен быть использован во всех случаях при подозрении на туберкулёз. Кроме того, это исследование проводят для оценки эффективности химиотерапии и для констатации выздоровления или неудачного исхода лечения при отсутствии результатов культурального исследования.

Уже более 100 лет существует самый простой и быстрый метод выявления кислотоустойчивых микобактерий – это микроскопия мазка. Используют 2 вида микроскопического исследования:

• метод прямой микроскопии, когда мазок готовят непосредственно из диагностического материала;

• метод микроскопии осадка, подготовленного из обработанного деконтаминантами материала для культурального исследования.

Лучшие результаты микроскопического исследования получают при концентрировании диагностического материала (например, центрифугированием).

Чтобы обнаружить микобактерии туберкулёза с вероятностью 50% при проведении микроскопии, 1мл мокроты должен содержать более 5000 микробных клеток. Микобактерии отличаются от других микроорганизмов характерным составом своей клеточной стенки, состоящей из миколовых кислот, которые благодаря своим сорбционным свойствам обусловливают способность окрашиваться по методикам, выявляющим кислотоустойчивые микобактерии. Наиболее распространённый метод для выявления кислотоустойчивых микобактерий в мазке – окраска по Цилю-Нильсену. Метод основан на проникновении карболового фуксина в микробную клетку через мембрану, при одновременном воздействии нагревания и сильного протравливающего действия фенола. Микобактерии не воспринимают обычные анилиновые красители, в результате чего кислотоустойчивые микобактерии окрашиваются в малиново-красный цвет, а другие микробы и клеточные элементы – в голубой.

Помимо данной методики, применяют окраску флюорохромами для люминисцентной микроскопии, что позволяет достичь наилучших результатов. Применение этого метода повышает эффективность микроскопии на 10-15%. К недостаткам метода флюоресцентной микроскопии относят сравнительно высокую стоимость микроскопа и его эксплуатации.

Культуральный метод

Метод посева, или культуральный метод, отличается большей чувствительностью, чем микроскопия мазков, и имеет перед последним ряд преимуществ. Он позволяет обнаруживать несколько десятков жизнеспособных микобактерий в исследуемом материале и имеет большую диагностическую ценность. Это особенно важно при исследовании материала от впервые выявленных или леченных больных, выделяющих небольшое количество микобактерий. По сравнению с микроскопией, культуральное исследование позволяет увеличить число выявленных больных туберкулёзом более чем на 15-25%, а также верифицировать туберкулёз в более ранних стадиях, когда заболевание ещё хорошо поддаётся лечению. Очень важным преимуществом культурального исследования считают возможность получения культуры возбудителя, которая может быть идентифицирована и изучена в отношении лекарственной чувствительности, вирулентности и других биологических свойств. К недостаткам методов культивирования следует отнести их длительность (срок ожидания материалов достигает 10 недель), более высокую стоимость, сложность обработки диагностического материала. Для достоверной клинической интерпретации результатов микробиологического исследования необходимо соблюдать следующее правило: микроскопическое и культуральное исследования нужно производить параллельно из одной и той же пробы диагностического материала.

Питательные среды, используемые для получения культур микобактерий можно разделить на 3 группы:

• яичные (Левенштейна-Йенсена, Финна, Петраньяни);

• агаровые (Миддлбрука 7Н10, 7Н11);

• бульонные или жидкие (Миддлбрука 7Н9, 7Н12, Дюбо);

Повсеместно самым популярным методом выявления

возбудителя туберкулёза до настоящего времени считается

получение культуры М. tuberculosis (МБТ) на плотных

средах. В практических лабораториях нашей страны чаще

всего используют среды Левенштейна-Йенсена (ЛЙ) и Финн-2.

При этом культуральное исследование диагностического

материала занимает не менее 3-8 недель – именно в эти

сроки появляется рост МБТ на плотной среде, а отрицатель-

ным результатом считается отсутствие роста в течение 12

недель после поступления образца в лабораторию.

Интенсивность роста микобактерий

• (+) – 1-20 КОЕ в пробирке (скудное бактериовыделение);

• (++) – 20-100 КОЕ в пробирке (умеренное бактериовыделение);

• (+++) -> 100 КОЕ в пробирке (обильное бактериовыделение)

Агаровые среды Middlebrook 7Н10 и 7Н11 являются прозрачными и позволяют увидеть колонии на 10-12 день после посева. В то время как на непрозрачных средах, таких как ЛЙ, визуализированный рост появляется значительно позже. Прозрачность среды даёт возможность изучать микроколонии в чашках на ранних сроках при помощи диссекционного микроскопа.

Автоматизированные системы бульонного культивирования

Наиболее распространёнными и коммерчески доступными системами бульонного культивирования являются

ВАСТЕС 460, ВВL MGIT, ВАСТЕС MGIT 960 и МВ/ВасТ

ВАСТЕС 460: Принципиально иной уровень бактериологической диагностики туберкулёза был достигнут с появлением в начале 80-х годов полуавтоматической системы ВАСТЕС 460 для выращивания и идентификации микобактерий с использованием жидкой среды Middlebrook 7Н12. В данной системе рост микобактерии определяется путём регистрации уровня меченного СО₂, который образуется размножающимися микроорганизмами. Применение ВАСТЕС 460 позволило сократить сроки получения результатов выявления микобактерий до 14 дней, система оказалась пригодной для быстрой идентификации М. tuberculosis complex и определения лекарственной чувствительности возбудителя туберкулёза.

BBL MGIT – для преодоления сложностей, связанных с применением радиоизотопного метода, была разработана более совершенная технология регистрации роста микроорганизмов, BBL MGIT. В процессе потребления растворённого в среде О₂ растущими клетками индикатор начинает светиться при ультрафиолетовом облучении, а увеличение микробной популяции сопровождается усилением свечения индикатора, интенсивность которого оценивается при помощи трансиллюминатора.

ВАСТЕС MGIT – следующим шагом была система ВАСТЕС МGIT 960 – полностью автоматизированный комплекс для инкубации и мониторинга 960 индикаторных пробирок MGIT. В приборе ВАСТЕС инкубируются индикаторные пробирки после внесения диагностического материала, подвергаясь периодическому УФ-тестированию. Контроль роста микроорганизмов осуществляет встроенный в прибор компьютер. Жидкокристаллический дисплей даёт информацию о наличии положительных и отрицательных посевов.

МВ ВасТ – вторая коммерческая диагностическая система голландской фирмы Оrganon Teknika – МВ/ВасТ. Она использует технологию детекции СО₂ – во флаконах, содержащих сенсор, изменение цвета которого регистрируется компьютером, осуществляющим анализ и интерпретацию данных. Существенным достоинством МВ/ВасТ является относительная безопасность работы персонала лаборатории, поскольку процессорные флаконы не вскрываются, а инокуляция материала осуществляется иглой со шприцем через закреплённую резиновую пробку.

Лекарственная устойчивость

Штамм МБТ принято считать устойчивым или резистентным, если он проявляет более низкую чувствительность к лекарству, по сравнению с «дикими» штаммами, которые никогда не были в контакте с данным препаратом. «Дикие» штаммы – это лекарственно чувствительные культуры МБТ, имеющие не менее 1% устойчивых к препаратам микроорганизмов. В любом «диком» штамме всегда содержится 10^-7 – 10^-11 спонтаннорезистентных к лекарствам особей.

Лекарственная резистентность: одно из проявлений изменчивости микобактерий – появление лекарственно резистентных мутантов.

Первичная и приобретённая

• Первичная – у нелеченных больных

• Приобретённая – в результате неадекватного лечения происходит рост числа мутантов, устойчивых к противотуберкулёзным препаратам.

Методы определения лекарственной чувствительности

Фенотипические:

• Культуральные – при задержке роста на плотных или жидких средах в присутствии антибактериального препарата;

• Молекулярные – без культивирования, например, по маркёрам изменений в метаболизме бактерий;

Генотипические:

• Выявление специфических для каждого антибактериального препарата генных мутаций после амплификации (ПЦР) соответствующего участка ДНК.

Культуральное определение чувствительности М. tuberculosis к противотуберкулёзным препаратам

• Классические методы, такие как метод абсолютных концетраций или метод пропорций, выполняются на плотных средах, содержащих противотуберкулёзные препараты.

• Системы бульонного культивирования ВАСТЕС 460, ВВL MGIT, ВАСТЕС 960, МВ /ВасТ - препараты растворяются в бульоне.

Цель исследования ЛЧ состоит в том, чтобы определить отличается ли клинический изолят от «дикого» штамма МБТ по степени чувствительности к соответствующему антимикробному агенту:

• При оценке результата микробиологического исследования культура МБТ признаётся устойчивой, если микобактерии дают рост на питательной среде в присутствии критической концентрации заключённого в неё противотуберкулёзного препарата.

• Критическая концентрация – это самая низкая концентрация, которая подавляет рост 95% «диких» штаммов МБТ.

• Для каждой среды или системы культивирования подобраны соответствующие критические концентрации препаратов.

Метод абсолютных концентраций (метод разведений на плотной или жидкой питательных средах)

Набор пробирок:

• С питательной средой, модифицированной противотуберкулёзными препаратами разных концентраций;

• Контрольной пробирки без препарата;

• Пробирки, содержащей препарат для выявления роста нетуберкулёзных микобактерий.

Интерпретация результатов

• Чувствительная культура – при наличии < 20 колоний (при том, что имеется обильный рост на контрольной пробирке без препаратов)

• Устойчивая культура – при наличии > 20 колоний

Метод пропорций на плотных средах

Принцип: выявление процента бактерий, устойчивых к критической концентрации лекарственного препарата

Метод: сравнение числа колоний, выросших в присутствии лекарственного препарата, с числом колоний в контроле

Критерий оценки: устойчивость – более 1% по сравнению с числом колоний в контроле

Два подхода:

1. Непрямой метод: заражение чистой культурой

2. Прямой метод: заражение мокротой (БК+)

Непрямой тест

• Выполняется с бактериальной суспензией, приготовленной из первично изолированной культуры

• Преимуществом непрямого метода является возможность точно калибровать культуру, используя оптический стандарт мутности, поскольку результаты прямого метода в некоторых случаях не могут быть оценены из-за избыточного или из-за неудовлетворительного роста на контрольной среде без препарата.

Прямой тест

• Предусматривает инокуляцию бактериоскопически положительного материала непосредственно в среду, содержащую противотуберкулёзный препарат

• Преимущество: сокращение времени диагностики

• Недостаток: микробная контаминация, которая более часто наблюдается и может исказить оценку результатов.

Системы с использованием жидких питательных сред

Общие черты:

1. Автоматизированы полностью или частично

2. Ускоренное выявление роста бактерий (7-14дней) – по выделению СО₂ или по поглощению кислорода

3. При выделении культуры из мокроты добавляют комплекс антибиотиков для задержки роста контаминантов, что делает среду селективной

4. Определение лекарственной чувствительности – к препаратам 1-го ряда, непрямым методом, с использованием критических концентраций (для каждой системы)

5. Ответ лаборатории (с момента получения мокроты)- через 2-4 недели (включая выделение культуры)

Сроки выделения культуры возбудителя туберкулёза

• Классический метод – 19-81 день (45,62)

• Васtес^ТМ МGIT^TM 960 – 5-22 дня (12,95)

Разница в 3,52 раза

Сроки определения лекарственной чувствительности

• Классический метод – 21-28 дней (22,75)

• Bactec^TM MGIT^TM 960 – 5-11 дней (8,49)

Разница в 2,68 раза

Сроки выделения микобактерий и определение

лекарственной чувствительности (полный анализ –

от посева до ответа)

• Классический метод – 40-107 дней (68,44)

• Вactec^TM MGIT^TM 960 – 17-35 дней (25,05)

Разница (во сколько раз) в 2,73 раза

Проблемы, снижающие эффективность микробиологической диагностики туберкулёза:

• Низкая выявляемость микобактерий

• Длительные сроки культурального исследования на микобактерии

• Отсутствие чётких критериев оценки лекарственной чувствительности микобактерий

• Слабая взаимосвязь между бактериологами и клиницистами.

Молекулярно – биологический метод

Генетический способ лабораторной диагностики

инфекционных болезней: полимеразная цепная реакция.

Этот метод основан на обнаружении участка ДНК искомого

микроорганизма, что даёт возможность обнаружить

труднокультивируемые микроорганизмы. Главное

преимущество ПЦР – высокая чувствительность, позво-

ляющая обнаружить 100 и менее микробных клеток в 1 мл.

Анализ может быть выполнен в течение 5-6 часов от момента

доставки пробы в лабораторию.

Молекулярно-генетические методы при туберкулёзе служат

для:

• Обнаружения микобактерий

• Идентификации вида

• «Паспортизирования» штаммов

• Изучения источника и путей передачи возбудителя

• Выявления лекарственной устойчивости

• Изучение распространения различных видов микобактерий в определённом регионе

«ТБ-БИОЧИП»

Среди молекулярно-биологических методов, позволяющих выявить мутации в ДНК М. tuberculosis, наиболее близким к внедрению в лабораторную практику является метод биологических микрочипов, разработанный в Институте молекулярной биологии (ИМБ) им. Энгельгардта, - «ТБ-БИОЧИП». С его помощью можно определять наличие микобактерий туберкулёзного комплекса и проводить одновременное определение резистентности М. tuberculosis к двум препаратам R и Н. Если в какой-либо из ячеек регистрируется больший флюоресцентный сигнал, чем в соответствующей контрольной ячейке, то анализируемый образец имеет точечную мутацию, и соответственно, выдаётся заключение, что в анализируемом образце обнаружены микобактерии туберкулёза, устойчивые к R и/или Н.

«ТБ-БИОЧИП-2»

С учётом важности быстрого определения чувствительности М. tuberculosis к фторхинолонам у больных туберкулёзом с МЛУ в Институте молекулярной биологии (ИМБ) была разработана новая тест-система «ТБ-БИОЧИП-2», позволяющая определять 9 типов мутаций в области гена gyrA M. tuberculosis (регион, определяющий устойчивость к фторхинолонам)

Метод микрочипов является:

• Эффективным (91,9% выявляемости M. tuberculosis и определения их лекарственной чувствительности с помощью «ТБ-БИОЧИП» и «ТБ-БИОЧИП-2»)

• Быстрым (время проведения анализа включая, обработку биологического материала, составляет 48 ч.)

• Одновременного определения ЛЧ к изониазиду, рифампицину и фторхинолонам

• Чувствительным – данные ЛЧ к исследуемым препаратам с помощью «ТБ-БИОЧИП» полностью совпали с данными, полученными при культуральном исследовании на плотных средах

• Доказана эффективность применения «ТБ-БИОЧИП-2» для контроля чувствительности М. tuberculosis с МЛУ к фторхинолонам до и в процессе лечения

Преимущества определения чувствительности к лекарственным препаратам на биологических микрочипах

• Время анализа – 2 дня

• Возможность определения чувствительности – резистентности в любом биологическом материале

• Возможность определения чувствительности – резистентности к нескольким препаратам одномоментно

• Возможность определения типа мутации, ответственной за резистентность

Род MYCOBACTERIUM – в настоящее время включает в себя более 90 видов микобактерий, из которых 1/3 обладает способностью вызывать заболевания человека. Большинство микобактериозов вызвано микобактериями комплекса M. avium/M. intracellulare(МАС). Для определения вида микобактерий используют культуральные и биохимические методы. Культуральные методы основаны на способности образовывать пигмент, скорость роста и возможность роста культуры при различных температурах. Биохимические тесты выявляют различия ферментативной активности у разных видов микобактерий. Средний срок идентификации нетуберкулёзных микобактерий этими методами достигает 6 месяцев.

Хроматография

С целью ускорения сроков идентификации вида используют газожидкостную хроматографию высокого разрешения, с помощью которой можно анализировать различия в составе миколовых кислот клеточной стенки. С помощью этих метод идентифицировано более 60 видов микобактерий.

Тест-система «ТУБ-диф»

Представляет собой двухстадийную ПЦР, основанную на анализе разного количества повторяющихся элементов, позволяющую отличить М. tuberculosis, M. bovis, M. bovis BCG на электрофореграмме. При использовании тест-системы «ТУБ-диф» на электрофореграмме установлено чёткое отличие сигналов для каждого вида микобактерий, входящего в туберкулёзный комплекс.

Иммунологические (серологические) методы диагностики

Определение антител и антигенов микобактерий с использованием иммуноферментного (ИФА) – плашечного и dot, иммунохроматографического (ИХА), радиоиммунного (РИА) анализа и иммуноблоттинга. Чувствительность и специфичность любого метода зависит от использованного антигена. К сожалению, к настоящему времени исследователям не удалось выделить какой-либо антиген из микобактерий, позволяющий создать тест-систему с чувствительностью и специфичностью, приближающимися к 100%. Тем не менее, в этом направлении есть некоторые успехи.

Экспресс-методы

Кроме ИФА тест-систем, при использовании которых проведение реакции требует 2-3 часов. В настоящее время разрабатываются экспресс - методы, которые являются оптимальными для массового скрининга, их выполнение занимает 15-20 минут, они просты в исполнении, результат учитывается визуально, не требует дорогостоящих приборов.

Данные по работе детского отделения ГБУЗ РПТД Республика Башкортостан, г. Уфа:

Количество пролеченных больных 2011г- 144;

Из 144 пролеченных детей в детском отделении – туберкулёз всех локализаций составил – 55,6% (80);

В структуре лёгочного туберкулёза:

- туберкулёз в/грудных лимфатических узлов – 26,3% (2010г-22,4%)

- инфильтративный туберкулёз лёгких – 18,6% (2010г-36,2%)

- очаговый туберкулёз лёгких – 10,2% (2010г.- 6,9%)

Удельный вес внелёгочного туберкулёза – 18,5% (2010г.- 20,5%)

В структуре внелёгочного туберкулёза:

- туберкулёз костей и суставов – 9,25% (2010 –13,6%)

Из числа выбывших – 59 детей были впервые выявлены с туберкулёзным процессом с различными локализациями – 41% (2010г – 50%);

Осложнённое течение туберкулёза у впервые выявленных – 17% (2010г.- 16,1%);

У 3-х детей (одна девочка с ТВГЛУ и 2 подростка с инфильтративным процессом в лёгких) диагностировано бактериовыделение методом посева (2010г.- 1);

Абациллировано – 100% (3 из 3);

Закрытие полостей распада в 100% случаев (3);