Терапия коров и тёлок при функциональных нарушениях яичников

Для лечения животных с дисфункцией яичников используют препараты гонадотропных гормонов (гравогормон, сывороточный гонадотропин, СЖК, КЖК, ХГ, ФСГ, ЛГ и др.), простагландина F_2 (эстуфалан, клатрапростин, эстрофан, ремофан, магестрофан и др.) и гонадолиберинов (сурфагон, диригестран, супергестран и др.). В определённых случаях применяют так же нейротропные препараты (прозерин, карбахолин) и препараты гормонов яичников (прогестагены, эстрогены).

Гормональные препараты нормализуют эндокринную и генеративную функцию яичников, повышают сократительную функцию матки, активизируют в ней пролиферативно-секреторные процессы и обеспечивают восстановление плодовитости коров и тёлок.

Коровам с гипофункцией яичников, проявляющейся задержкой овуляции или ановуляцией, в день проявления феноменов стадии возбуждения полового цикла (перед или после осеменения животного) внутримышечно инъецируют сурфагон в дозе 20-25 мкг или другие гонадолиберины или овогон – ТИО в дозе 1-1,5 тыс. ИЕ.

Животным с ановуляторными половыми циклами назначают также сывороточный гонадотропин, который вводят подкожно за 2-3 дня до предполагаемого наступления очередной стадии возбуждения (17-19 день после предыдущего полового цикла и осеменения) в дозе 2,5 тыс. м. е. (5-6 м. е. на 1 кг массы тела).

При ановуляторном половом цикле, сопровождающимся лютеинизацией неовулировавшего фолликула, определяемого в яичнике при ректальном исследовании на 6-8 день в виде полостного образования с тугой флюктуацией, однократно внутримышечно вводят один из вышеуказанных препаратов простагландина F_2 в дозе 2 мл, а при проявлении стадии возбуждения (при осеменении) – сурфагон в дозе 20-25 мкг или овогон-ТИО в дозе 1-1,5 тыс. ИЕ.

При гипофункции яичников, сопровождающейся анафродизией, коровам однократно вводят гонадотропин СЖК в дозе 3,0-3,5 тыс. м.е. (6-7 м.е./кг массы тела). Для обеспечения овуляции в день проявления стадии возбуждения полового цикла (при осеменении) инъецируют сурфагон в дозе 20 мкг. Животным, не проявившим стадию возбуждения полового цикла, через 21-22 дня после гинекологического исследования и подтверждения диагноза, гонадотропин СЖК вводят повторно в той же дозе.

При гипофункции яичников, проявляющейся недостаточной функцией жёлтого тела, при проявлении очередного цикла в день осеменения однократно подкожно вводят 2,5 тыс. м.е. гонадотропина СЖК (4-5 м.е. на кг массы тела).

Если гипофункция яичников у коров сопровождается атонией и гипотонией матки, введение гонадотропных средств целесообразно сочетать с применением водных растворов нейротропных препаратов: карбахолин (0,1 %), прозерин (0,5 %) или фурамон (1,0 %). Любой из указанных препаратов вводят двукратно с интервалом 24 часа по 2,0-2,5 мл, а через 4-5 дней однократно инъецируют гонадотропин СЖК в дозе 1,5-2,0 тыс. м.е.

Для лечения коров с фолликулярными кистами яичников используют разные схемы назначения гормональных препаратов. По одной из них лечение осуществляют путём однократного введения гонадотропина СЖК в дозе 5-6 тыс. м.е. или хорионического гонадотропина в дозе 4-5 тыс. ЕД. Животным, не проявившим стадию возбуждения полового цикла, после гинекологического исследования и при выявлении признаков лютеинизации стенок кисты на 10-12 день инъецируют один из вышеуказанных препаратов простагландина в дозе 2 мл.

В другом случае для лечения можно использовать гонадотропин-релизинг-гормон (сурфагон), который инъецируют по 10 мкг трёхкратно с интервалом 24 часа, или однократно – диригестран в дозе 200-250 мкг, или лютеинизирующий гормон овогон – ТИО однократно в дозе 3 тыс. ИЕ.

По третьей схеме лечения коровам ежедневно в течение 7-8 дней парентерально вводят по 50-75 мг прогестерона с одновременной дачей внутрь по 50-100 мг йодистого калия, а через 2-3-е суток однократно инъецируют гонадотропин СЖК в дозе 3,0-3,5 тыс. м.е.

Лечение коров с лютеиновыми кистами яичников осуществляют путём однократного внутримышечного введения одного из препаратов простагландина в дозе 2 мл с одновременной инъекцией 2,5-3,0 тыс. м.е. гонадотропина СЖК.

При кистах яичников, сопровождающихся атонией и гипотонией матки, в качестве дополнительных лечебных средств можно использовать нейротропные препараты.

Бесплодным коровам с персистентными желтыми телами или с функционирующими желтыми телами полового цикла однократно вводят один из препаратов простагландина в вышеуказанных дозах. Для повышения терапевтической эффективности введение препаратов простагландина сочетают с однократной инъекцией гонадотропина СЖК в дозе 2,5-3,0 тыс. м.е.

При использовании гормональных препаратов для восстановления плодовитости у половозрелых тёлок дозы гонадотропных препаратов снижают на 700-1000 м.е., а простагландина – на 150-200 мкг.

Во всех случаях использования гормональных препаратов для нормализации функции яичников у животных желательно назначать препараты витаминов, макро- и микроэлементов.

При использовании гормональных и гормоноподобных биологически активных препаратов для нормализации половой функции животных следует обязательно соблюдать следующие требования. Во-первых, препарат назначают животным не ниже средней упитанности и на фоне нормализации обмена веществ путём улучшения кормления и назначения витаминно-минеральных премиксов. Во-вторых, применению препаратов должно предшествовать клинико-гинекологическое обследование животных с точной диагностикой функционального состояния половых органов. И, в-третьих, должны полностью выдерживаться рекомендуемые схемы лечения

4. Проведите исследование физико-химических свойств мочи у лошади.

Цвет мочи. Его определяют в прозрачном стеклянном цилиндре. Зависит от содержания в моче пигментов (урохрома, уробилина, уроэритрина и порфирина), количества ее и плотности. При полиурии моча светло-желтая или даже бесцветная, при олигакурии — интенсивно окрашена. В норме у лошадей моча от бледно-желтого до буро-желтого цвета. Цвет мочи меняется в зависимости от состава кормов. Моча лошадей мутная от наличия в ней муцина и углекислого кальция, что возникает при аммиачном брожении, вследствие разложения двууглекислого кальция. Консистенция у лощадей она слизистая от наличия в ней муцина и нуклеоглобина, образующихся в почечной лоханке и мочевом пузыре. У лошадей моча напоминает запах прелого сена или прелых яблок. Относительная плотность мочи зависти от количества растворенных в ней плотных веществ и у здоровых животных колеблется в широких пределах. Она зависит от концентрационной способности почек, кормления, количества принятой воды, содержания, эксплуатации, функции потовых желез кожи, сердца, дыхания, кишечника. Плотность мочи измеряют ареометром, урометром. Мочу наливают в цилиндр и погружают в него урометр, который не должен касаться дна цилиндра. Отмечают деления на шкале по нижнему мениску. Если температура мочи отличается от температуры, на которую рассчитан урометр, то вносят поправку; на каждые 3°С повышения или понижения добавляют или вычитают 0, 001 величины установленной плотности.

Качественное определение белка. Кипятят 3-5 мл мочи после добавления нескольких капель 10 % - ного раствора уксусной кислоты. При наличии белка образуется опалесценция или хлопьевидный осадок. При низкой плотности мочи к 5-10 мл ее добавляют 1-2 мл насыщенного раствора поваренной соли и 3-6 капель 30 %-ного раствора уксусной кислоты.

Проба с азотной кислотой (Геллера). В пробирку наливают 2-3 мл мочи, подслаивают ниткой 1-2 мл 50%-ного раствора азотной кислоты или мочу осторожно наслаивают по стенке пробирки. В присутствии белка на границе жидкостей появляется белое кольцо из свернувшегося белка. При содержании белка 0,0033 % кольцо появляется через 3 мин. Такое же кольцо дают протеозы, бальзамические вещества, нуклеальбумины, муцин, желчные пигменты. Моча, богатая уратами, может дать кольцо выше границы жидкостей. При легком подогревании оно исчезает. Муть, появившаяся от присутствия муцина, располагается выше границы жидкостей и выражена нерезко.

Количественное определение белка в ветеринарной практике проводят редко. Используют методы Эсбаха и Робертса-Стольникова. Последний основан на пробе с азотной кислотой. Делают с дистиллированной водой разведения мочи 1:2, 1:4,, 1:8, 1:16, 1:64. Подслаивают раствор азотной кислоты, отмечают, в какой пробирке через 3 мин образуется белое кольцо. Умножают на степень разведения мочи и получают процентное содержание в ней белка.

Определение альбуминоз. К 5 мл мочи добавляют 5-7 капель 20 %-ного раствора сульфосалициловой кислоты. Получается осадок, который при нагревании растворяется. Когда в моче имеются и белок, и протеозы, хлопьевидный осадок или опалесценция при нагревании не исчезают. Нагретое до кипения содержимое пробирки фильтруют. Помутнение фильтрата после охлаждения указывает на наличие в моче протеоз. которые проходят через фильтр, а белок остается.

Проба с сернокислой медью (Гайнеса). Кипятят 3 мл реактива Гейнеса, добавляют 5-6 капель мочи и доводят до кипения. Проба положительная, если появляется желто-бурое (кирпичное) окрашивание от восстановления серно-кислой меди до закиси меди. Чувствительность пробы до 0,03 %. Реактив Гайнеса готовят следующим образом: 2 г сульфата меди растворяют при нагревании в 100 мл смеси из равных количеств чистого глицерина и дистиллированной воды и добавляют 150 мл 5%-ного раствора едкого калия.

Проба Ниляндера (с азотнокислым висмутом). В 2 мл мочи прибавляют 3-4 мл реактива Ниляндера, смесь нагревают до кипения. При наличии сахара в моче содержимое пробирки окрашивается в коричневый или черный цвет.

Нормальная моча содержит глюкозу в виде следов и поэтому она не обнаруживается качественными пробами. Различают глюкозурию физиологическую и патологическую. Физиологическая наблюдается в течение короткого времени при избыточном введении с кормом углеводов, особенно у беременных животных. Возникает она вследствие ограниченной способности почечного эпителия (канальцев) к реабсорци глюкозы. Она может быть при сильном беспокойстве животных, испуге (чаще у собак),перед родами и после них, при закупорке сосков, при отнятии сосунов от маток. В этих случаях в моче появляется не глюкоза, а лактоза.

Желчные пигменты и кислоты

К ним относятся билирубин, биливердин, билигумин, билифусцин и производные билирубина — уробилиноген и уробилин. Основные желчные кислоты - холевая и таурофолиевая.

Проба Богомолова. К 5 мл мочи приливают 1-2 капли 10 % раствора сернокислой меди (медного купороса) и 2 мл хлороформа, закрывают пробирку пробкой, тщательно взбалтывают (перевертывают 15-20 раз). Проба на урибилин положительная, если хлороформ окрашивается в розовый цвет. Она выявляет уробилин при его содержании 0,1 мг % и больше.

Проба с метиленовой синькой. В пробирку наливают 2 мл мочи, добавляют каплю 0,2 % раствора метиленовой синьки. При положительной пробе на билирубин появляется зеленое окрашивание, при отрицательной -синее.

Проба Флоренса. К 5 мл мочи приливают 6-7 капель крепкой серной кислоты, 2-3 мл эфира и осторожно взбалтывают. Дают отстояться. Эфирную вытяжку переносят в другую пробирку, куда предварительно наливают 1-2 мл крепкой соляной кислоты. При положительной пробе на границе слоев образуется в зависимости от количества уроблиниа розовое или красное кольцо. В свежей моче животных преимущественно находится уробилиноген; чтобы он окислился до уробилина, добавляют каплю настойки йода или перосульфата аммония. Для определения уробилина при наличии в моче билирубина освобождают ее от него прибавлением к 5 мл мочи 2 мл 10 % раствора хлористого кальция и нескольких капель аммиака или 2 мл 10 % хлористого бария.

Проба Флоренса дает положительную реакцию у здоровых животных, поэтому ее применяют для выявления полного отсутствия уробилина в моче. Это наблюдается при обтурационной желтухе и при диффузных поражениях почек, когда нарушается концентрационная их функция.

Проба с хлористым барием. К 5-10 мл профильтрованной мочи добавляют 3-5 мл 10 % раствора хлористого бария. Содержимое перемешивают, встряхивают и оставляют на несколько минут до образования осадка. При наличии билирубина в моче образуется осадок желтого цвета.

Определение желчных кислот

Проба Штраузбургера. Растворяют в моче немного тростникового сахара, опускают в мочу полоску фильтровальной бумаги, вынимают и высушивают. На полоску наносят каплю концентрированной серной кислоты. Проба положительная, если появляется красное окрашивание.

Проба с серным цветом (Гея). В пробирку наливают мочу и насыпают немного (на кончике ножа) сухого серного цвета. Если он тонет, проба положительная, если нет - отрицательная. Проба положительная при концентрации желчных кислот и солей выше 0,01 %.

Кетоновые тела.

К ним относятся ацетон, ацетоуксусная и бетаоксимасляная кислоты -продукты неполного окисления жиров и отчасти белков, которые образуются главным образом в печени, а расщепляются в тканях.

Проба Лестраде. Реактив Лестраде состоит из нитропруссида натрия -1,0 сульфата аммония - 20,0 карбоната натрия безводного. Реактивы растирают в ступке до получения мелкого однородного порошка, который хранят в закупоренной стеклянной банке в сухом месте. Определение: предметное стекло кладут на лист фильтровальной бумаги, на него помещают небольшое количество ( на кончике скальпеля ) реактива, капают 2-3 мл мочи. Проба положительная, если реактив окрашивается в течение 1-3 мин от розового до темно-фиолетового цвета.

Индикан (индоламинопропионовая кислота) образуется в результате гнилостных процессов в тонком отделе кишечника и распада белков тканей.

Под влиянием гнилостной микрофлоры в тонком кишечнике аминокислота - триптофан - теряет боковую цепь - аминогруппу, образуется индол, который в печени соединяется с серной и глюкороновой кислотами. Индоксилсерная и индоксилглюкороновая кислоты соединяются с калийными солями, в результате чего образуется безвредное для организма вещество -индикан, который почками выделяется из организма.

10.

1. Гиповитаминоз А у молодняка сельскохозяйственных животных: этиология, патогенез, клиническое и морфологическое проявления, диагностика, лечение и профилактика.

А-гипоавитоминоз Ретинол в растит кормах не содержиться, а синтезируется в орг из провитамина-каротина. Недостаточность береммных матерей каротином приводит к рождению молодняка с недостаточностью ретинола в печени и жировом депо. В молозиве может снизиться содержание каротина и ретинола. Так же возникает при диспепсии, гастроэнтериты всасывание ретинола затруднено, бронхопневмания усиленное разрущение ретинола. Ретинол необходим для: синтеза зрительного пурпура, роста и развития костной ткани, функционирования эндокринных желез. Патологоанотомические изм перерождение и ороговевание эпителиал покровойв, шелушение кожи, копытный рог, шерсть, волос теряет блеск. Эпителий стенки жкт превращ в многослойный, атрофир железы, эти же изменения в тк легких, дых и мочеполов системе.Конъюк и рогов глаза сухие, гной конъюктивиты, панофтальмия, риниты, ларингиты, циститы, снижение орган к инфекциям. Симптомы:задержка роста,конъюктивиты, кератиты, диспепсии, гастроэнтериты, у ягнят нервные явления, снижается болевая чувствит, тетаничес судорги, паралич дых сис. Поросята рожд уродами, плохо растут, покровы бледно-желтые, манежн движения,параличи, отекают веки, воспаления среднего уха. Лечение:рыбий жир, масляный раствор витам А в 1 мл от 100 до 300 тыс МЕ, при нарушении функц жкт препараты Витамина вводят в.м. В рацион животных включают корма в каротином. Профилактика:Обеспеч рационном берем жив. Стельные коровы 60-80 мг на 100 кг, суягловые овцематки 20-3- мг на 100 кг, кобылы 40-50 мг на 100 кг., витаминные подкормки.

2. Артриты и артрозы: этиология, патогенез, дифференциальная диагностика, лечение и профилактика.

Артрит- воспаление сустава.

Для артрита характерны боли в суставе, особенно при движении, нередко имеются ограничения его подвижности, припухлость, изменение формы, иногда кожа над суставом краснеет и появялется лихорадка. Встречаются артрит одного сустава (моноартрит) и многих (полиартрит). Артрит может начаться сразу и сопровождаться сильными болями в суставе (острый артрит) или развиваться постепенно (хронический артрит).

Этиология. Причиной развития артритов может быть бактериальная, вирусная или грибковая инфекции суставов. Обычно проникновение инфекции в суставы происходит через кровеносную систему из другой части организма, это может произойти при травме, хирургическом вмешательстве. Также причиной могут быть травма, аллергия, нарушение обмена веществ, заболевания нервной системы, недостаток витаминов

Симптомы. Симптомами инфекционного артрита являются покраснение, припухлость, ощущение боли при надавливании, часто наблюдаются общие симптомы инфекционного заболевания - повышение температуры тела, озноб, боль во всем теле.

Артрит может возникать внезапно или развиваться постепенно. Движение в этом суставе обычно нарушено, хотя иногда наблюдается тугоподвижность.

Виды артрита В зависимости от характера поражения основные типы артритов объединяют в два класса: воспалительный артрит и дегенеративный артрит.

К воспалительным артритам относятся: инфекционный артрит; ревматоидный артрит; подагра; реактивный артрит. Они связаны с воспалением синовиальной оболочки.

К дегенеративным артритам относятся: -остеоартроз и -травматический артрит

Эти заболевания связаны с повреждением суставного хряща, покрывающего концы костей в месте их сочленения.

Лечение. При серозном артрите первые 2-3дня холод, затем тепло. Проводят аспирацию экссудата и введение внутрь сустава гидрокортизона с антибиотиками. Циркулярный новокаиновый блок. Для рассасывания экссудата- раздражающие мази.

При гнойном процессе местно и системно антибиотики, вскрытие и промывание сустава новокаин-фурацилиновым раствором, новокаиновые блокады в начале процесса. Так же проводят противосептическую и симптоматическую терапию.

Артроз — хроническое заболевание суставов невоспалительно­го характера, протекающее в виде дегенеративно-дистрофических изменений в суставном хряще и сочленяющихся костях, сопро­вождающееся реактивно-репаративными изменениями, приводя­щими сустав к деформации.

Более часто болезнь возникает у лошадей. Наблюдается у круп­ного рогатого скота, свиней. Артрозы обнаруживают на скакатель­ных, реже запястных, коленных, лопаткоплечевых, венечных и копытных суставах.

Этиология и патогенез. Единого мнения о развитии артрозов нет. Чаще болезнь находят у животных с нарушенным витаминно-минеральным обменом или же болеющих рахитом и остеомаляци­ей. К развитию артрозов предрасполагают алиментарные хрони­ческие интоксикации, длительные ацидотические состояния организма, гормональные расстройства, вызывающие нарушения углеводно-белкового и минерального обменов. Определенное значение в возникновении артрозов придается конституциональ­ной слабости суставного хряща и костей, возрастным изменениям и нарушению их питания, а также переобременению при непра­вильной постановке конечностей или аномалиях суставных по­верхностей. Возникновение артроза обусловливается недостат­ком кальция, фосфора, ретинола (витамина А), микроэлемен­тов (кобальта и меди), гиподинамией, чрезмерным раздоем ко­ров при высокой молочной продуктивности. Перенапряжение суставов у быков при взятии спермы при недостаточно активном моционе предрасполагает к появлению у них артроза.

При развитии остеодистрофии отмечается дистрофия и дегенерация суставного хряща. Он размягчается, разволокняется и подвергается асбестовому перерождению, поверхность его стано­вится шероховатой. Дегенерированный хрящ утрачивает эластичность, приобретает серо-желтый или коричнево-желтый цвет, быстро снашивается. Появляются асептическое очаговое омертве­ние и различной величины узур, поэтому в отдельных местах сус­тавные концы костей приходят в непосредственное соприкосно­вение. В дальнейшем отмечается истончение, искривление и над­ломы подхрящевой костной пластинки.

Уменьшение функции суставных хрящей обусловливает воз­никновение компенсаторных явлений в виде костных разрастаний по суставному краю и склерозирования субхондральных участков костной ткани, образуя так назы­ваемые костные губы.

В костях сустава развивается прогрессирующий остеосклероз. Вследствие атрофии и полного исчезновения хряща суставная щель сужается. Изменения в периартикулярных тканях иногда бывают незначительными. В ряде случаев в них наблюда­ются фиброзные разращения; иногда связки, прикрепляющиеся к костям, и фиброзные образования подвергаются метапластическо-му окостенению. Фиброзный слой капсулы сустава утолщается, синовиальный — изменений не имеет. Количество синовии в сус­таве становится очень незначительным.

Клинические признаки. Развитие клинических и патоморфологических изменений при артрозе идет постепенно. Начальные ста­дии болезни практически не выявляются. В развитии артроза вы­деляют три стадии.

В первой, начальной, стадии видимых признаков отклонений от нормы не обнаруживается. Рентгенологически выявляют незначи­тельные шиповидные костные разрастания по суставному краю; вы­сота суставной щели нормальная или же незначительно уменьшена. В костях обнаруживается начинающийся пятнистый остеопороз.

Во второй стадии нарушаются функции пораженного сустава. Животные больше лежат, встают неохотно и со стонами, быстро утомляются. Появляется хромота, усиливающаяся по мере движе­ния; нередко при этом в суставе слышен крепитирующий хруст. Животное часто переступает с ноги на ногу, стремясь изменить положение всего тела. Отмечается ослабление нервно-мышечного тонуса. На рентгеновском снимке устанавливают уменьшение вы­соты суставной щели в 2—3 раза по сравнению с нормой. Краевые костные разрастания проявляются отчетливо и имеют относительно широкое основание. В костях — выраженный остеопороз и яв­ления остеосклероза.

Третья стадия артроза проявляется явными клинико-рентгенологическими и патоморфологическими изменениями. У больного жи­вотного проявляется сильная хромота. Движения напряженные, по­ходка пружинисто-связанная. При пальпации больного сустава, в час­тности тарзального, выявляется плотная, безболезненная припух­лость, более выраженная с дорсомедиальной стороны сустава. Сустав деформирован. Наряду с этим отмечают признаки общей остеодистрофии. При исследовании сыворотки крови обна­руживают пониженное содержание кальция, фосфора, каротина и ре­зервной щелочности. На рентгеновских снимках заметны массивные костные образования по суставному краю костей (костные губы). Суставная щель максимально сужена.

Лечение. Прежде чем приступить к лечению, следует выявить ос­новную причину заболевания. Важно исследовать состояние обме­на веществ у животных. При установлении развития артрозов на почве нарушения обменных процессов в организме принимают меры к восстановлению нарушенного обмена веществ. В начальных стадиях заболевания организуют диетическое кормление, ограни­чивают эксплуатацию животного. Исключают из рациона кислые корма и концентраты. Корм должен содержать необходимое коли­чество питательных веществ, витаминов, солей кальция, фосфора, микроэлементов. В рацион необходимо ввести овощи, зеленое сено, лучше люцерновое. Важно организовать зеленую подкормку, регулярный моцион, ультрафиолетовое облучение. Внутривенно крупным животным вводят 250мл 40%-ного раствора глюкозы с добавлением 1—1,5 г аскорбиновой кислоты. Дают с кормом три-кальцийфосфат, обесфторенный кормовой фосфат по 50 г. При ле­чении артрозов у быков-производителей следует сбалансировать рацион по каротину, кальцию и фосфору, уменьшают эксплуата­цию. Чтобы бык не переобременял суставы, площадка, где он дела­ет садку, должна иметь небольшой уклон вперед.

Делают массаж пораженных суставов, парафиновые и озоке-ритовые аппликации. Можно втирать раздражающие линимен­ты. В параартикулярные ткани в 2—3 точки вводят 128 ед. лидазы, растворенной в 0,5—1%-ном новокаине.

В запущенных случаях лечение артроза не дает положительных результатов.

С профилактической целью можно проводить анализ кормов на содержание фосфора, кальция, каротина, кальциферола (вита­мина D) и систематически исследовать животных на минеральную недостаточность. При больших дачах жома и силоса необходимо их раскислять, при недостаточной ингаляции применяют ультра­фиолетовое облучение.

3. Задержание последа у коров: этиология, диагностика, методы лечения и профилактика.

О задержании последа можно говорить, если он не выделился у кобылы чз 35 мин; у коровы — через 6 ч (10— 12 ч); овцы, козы, свиньи, собаки, кошки и крольчихи — через Зч после рождения. Задержание последа может быть у животных всех видов, но чаще оно наблюдается у коров, что отчасти объясня­йся своеобразием структуры плаценты- взаимосвязи между ее плодной и мате­ринской частями. Особенно часто за­держание последа наблюдается как ос­ложнение после аборта. Оно может быть полным, если все плодные оболочки не выделяются из родовых путей, и непол­ным (частичным), когда в полости матки остаются отдельные участки хориона или одиночные плаценты (у коров). У кобыл в матке остаются сосудистая оболочка и наружный слой аллантоиса, алланто-амнион почти всегда изгоняется вместе с плодом.

Имеются три непосредственные при­чины задержания последа:

1) недостаточная напряженность последовых схваток и атония матки;

2) сращение (спайки) плодной части плаценты с материнской вследствие па­тологических процессов в эндометрии или хорионе плода;

3) повышенный тургор тканей карункулов.

Большое значение в качестве пред­располагающего фактора имеют усло­вия содержания, в частности недоста­точный моцион. У животных всех видов, не пользующихся прогулками во вр беременности, задержание последа мо­жет быть массовым явлением. Этим же объясняются наиболее частые задержа­ния последа в зимне-весенний период.

Как предрасполагающие к задержа­нию последа можно расценивать все те факторы, которые понижают тонус мышц матки и всего тела роженицы: ис­тощение, ожирение, отсутствие в раци­оне солей кальция и других минераль­ных веществ; водянка плодных оболо­чек, двойни у однородящих животных, слишком большой плод, а также гено­тип матери и плода.

В основе упомянутых сращений мо­гут быть инфекционные болезни (бру­целлез и др.), которые обусловливают возникновение процессов, нарушаю­щих взаимосвязь между плодной и мате­ринской частями плаценты и вызываю­щих воспаление хориона и слизистой оболочки матки. Особенно часто задер­жание последа наблюдается в хозяй­ствах, неблагополучных по бруцеллезу, притом не только при абортах, но и при нормальных родах.

Прочное соединение ворсин хориона с криптами материнской плаценты воз­можно и при глубоком нарушении об­мена вещества, когда возникает атония матки с развитием в ней соединитель­нотканных элементов.

Диагноз. При полном задержании последа из наружных половых органов выступает красный или серо-красный тяж. Поверхность его бугристая у коро­вы (плаценты) и бархатистая у кобылы. Иногда наружу свешиваются только лоскуты мочевой и околоплодной обо­лочек без сосудов в виде пленок серо-бе­лого цвета. При сильно выраженной атонии матки в ней остаются все обо­лочки (обнаруживаются при пальпации матки).

Для установления неполного задер­жания последа необходимо тщательно его исследовать. Плаценту осматрива­ют, пальпируют и, если имеются показа­ния, проводят микроскопический и бактериологический ее анализ.

Выделившийся послед расправляют на столе или фанере. Нормальный пос­лед кобылы имеет равномерную окраску, бархатистую плацентарную и гладкую аллонтоидную поверхность. Весь алланто-амнион светло-серого или беловатого цвета, местами с перламутровым оттен­ком. Облитерированные сосуды, образу­ющие большое количество извивов, со­держат немного крови. Оболочки на всем протяжении одинаковой толщины (от­сутствие соединительнотканных разра­щений, отеков). Толщина оболочек лег­ко определяется пальпацией. Чтобы определить, целиком ли вы­делился послед, ориентируются по со­судам плаценты, представляющим со­бой замкнутую сеть, окружающую весь плодный пузырь. Во вр родов пред­лежащий участок оболочек разрывает­ся вместе с проходящими по нему сосу­дами. По обрывам сосудов и судят о це­лостности всей оболочки: при сближе­нии разорванных краев их контуры должны дать совпадающую линию, а центральные концы разорванных сосу­дов при соприкосновении их с перифе­рическими отрезками — образовать не­прерывную сосудистую сеть. Если, на­пример, в полости матки остался учас­ток хориона, это легко выявляется при расправлении сосудистой оболочки по несовпадающим краям разрыва и по резко прерывающимся сосудистым стволам. По местоположению обнару­женного в сосудистой оболочке дефек­та можно определить, в каком месте матки осталась оторвавшаяся часть последа. В дальнейшем при пальпации рукой полости матки удается прощу­пать и остаток последа.

Такой метод исследования дает воз­можность выяснить не только величину задержавшейся части последа, но иног­да и причину задержки. Кроме того, од­новременно можно обнаружить анома­лии развития плаценты, перерождения и воспалительные процессы в слизистой оболочке матки и, наконец, сделать зак­лючение о жизнеспособности новорож­денного, о течении послеродового пери­ода и возможных осложнениях беремен­ности и родов в будущем.

У коров особенно часто бывает частичное задержание последа, так как у них воспалительные процессы большей частью локализуются в отдельных пла­центах. При тщательном осмотре выде­лившегося последа нельзя не заметить дефект на протяжении сосудов, питав­ших оборвавшуюся часть хориона.

У коров при полном задержании пос­леда обычно из наружных половых орга­нов выступает значительная часть плодных оболочек, опускающихся до уровня скакательных суставов и ниже. Под воз­действием внешних факторов, главным образом загрязнения, выпавшие части последа начинают быстро разлагаться, особенно в теплое время года. Поэтому уже на 2-е сутки, а иногда и раньше в по­мещении, где находится такая корова, появляется неприятный гнилостный за­пах. Некроз последа распространяется и на его отделы, находящиеся еще в матке, что приводит к скоплению в ее полости распадающихся полужидких кровянис­тых слизеподобных масс.

Быстрое развитие микрофлоры в раз­лагающихся тканях сопровождается об­разованием токсических веществ; вса­сывание их из матки создает картину об­щей интоксикации организма. У живот­ного ухудшается аппетит, иногда по­вышается температура тела, резко сни­жается удой, расстраивается деятель­ность желудка и кишок (профузный по­нос). Мышцы матки становятся атоничными; инволюция нарушается; шейка в большинстве случаев длительно остает­ся открытой (до полного очищения мат­ки). Наряду с этим сильно сокращается брюшной пресс; животное стоит с очень выгнутой спиной и подтянутым жи­вотом.

При частичном задержании послед начинает разлагаться несколько позднее (на 4—5-й день). Разложение проявля­ется признаками гнойно-катарального эндометрита. У коров с оставшимся в матке последом или частью его распаду подвергаются не только послед, но и ма­теринские части плацент. Из половых органов выделяется большое количе­ство гноя с примесью слизи и сероватых крошковидных масс.

Очень редко задержание последа протекает без осложнений. Распавшие­ся части плаценты удаляются с лохиями, полость очищается, и функция полового аппарата полностью восстанавливается. Задержание последа при несвоевремен­ном врачебном вмешательстве, как пра­вило, завершается трудно поддающимися лечению патологическими процесса­ми в матке и бесплодием. У кобылы задержание последа обычно сопровождается тяжелым общим состоянием. Уже чз неск часов после рождения плода замечают общее угнетение, повышение темпера­туры тела, учащение дыхания, жив тужится и стонет. Иногда (при сильной атонии матки) внешние признаки от­сутствуют. Если своевременно не при­нять мер, нередко развивается септице­мия со смертельным исходом в течение первых 2—3 дней. Нередко вследствие сильного натуживания матка выпадает. Частичное задержание последа в виде отдельных кусков плодных оболочек вызывает стойкий гнойный эндометрит, абсцессы, общее истощение организма. У о в е ц послед задерживается ред­ко, у коз, как и у свиней, задержание очень часто приводит к септикопиемии. У собак задержание последа осо­бенно опасно: оно быстро, иногда мол­ниеносно осложняется сепсисом.

Методы отделения последа. Предло­жено много способов отделения последа как консервативных, так и оператив­ных, ручных.

Способы отделения последа имеют некоторые особенности у животных каждого вида.

Корове, если послед у нее не отде­лился через 6—8 ч после рождения пло­да, можно ввести синэстрол 1%-ный — 2—5 мл, питуитрин —8—10 ЕД на 100 кг массы, окситоцин — 30-60 ЕД или сделать массаж матки через прямую кишку. Внутрь дают сахар — 500 г. Спо­собствует отделению последа при ато­нии матки привязывание его бинтом к хвосту, отступив на 30 см от его корня. Ко­рова стремится освободить хвост путем его перемещения из стороны в сторону и назад, что побуждает матку к ее сокра­щениям и отхождению последа. Этот простой прием следует использовать как с лечебной, так и с профилактической целями.

Разобщить ворсины и крипты можно введением между хорионом и слизистой оболочкой матки пепсина с соляной кислотой (пепсина 20 г, соляной кисло­ты 15 мл, воды 300 мл).

Око­лоплодная жидкость, введенная в дозе 1—2 л корове через рот, уже через 30 мин повышает тонус мышц матки и учащает ее сокращения. Околоплодную жидкость применяют с профилактической и лечеб­ной целями при задержании последа. Во вр разрыва плодного пузыря и при изгнании плода околоплодные воды со-бирают(8—12 л от одной коровы) в хорошо вымытый горячей водой таз и сливают в чистую стеклянную посуду. В таком виде их можно хранить при температуре не выше 3 °С в течение 2—3 сут.

При задержании последа рекомендуется выпаивать околоплодные воды че-рез 6—7 ч после рождения плода в кол-ве 3—6 л. Если отсутствуют сращения плацент, то, как правило, по проше­ствии 2—8 ч послед отделяется. Амнистрон – преп выделенный из околопл вод, (его вводят внутримышечно в дозе 2 мл) оказы­вает постепенное и вместе с тем дли­тельное действие на матку. матки При задержании последа на почве атонии матки и повышенного тургора ее тканей хороший эффект дают использо­вание электроотделителя конструкции, подкожные инъекции окситоцина или питуитрина (30— 40 ЕД), молозива от той же коровы в дозе 20 мл, препаратов простагландина, блокада по В. В. Мосину и другие приемы новокаиновой терапии. Осо­бенно эффективно внутриаортальное введение 1%-ного раствора новокаина в дозе 100 мл (2 мг на 1 кг массы животно­го) с одновременным введением 30%-ного раствора ихтиола внутриматочно в количестве 500 мл. По­вторные введения проводят через 48 ч. Если в течение 24—48 ч консервативные способы лечения не дают эффекта, осо­бенно при сращении плодной части плаценты с материнской, то прибегают к оперативному отделению последа.

По окончании подготовки правой руки захватывают левой рукой выступа­ющий участок плодных оболочек, скру­чивают его вокруг оси и слегка натягива­ют, стараясь не оборвать. Правую руку вводят в матку, где легко удается выя­вить участки прикрепления плодной плаценты, ориентируясь по ходу напря­женных сосудов и тканей сосудистой оболочки.

Плодную часть плаценты отделяют от материнской части осторожно и пос­ледовательно; указательный и средний пальцы подводят под плаценту хориона и несколькими короткими движениями отделяют от карункула. Иногда удобнее захватить край плодной плаценты боль­шим и указательным пальцами и осто­рожно вытягивать ворсины из крипт.

Особенно трудно манипулировать с последом в верхушке рога, так как при атоничной матке и короткой руке аку­шера пальцы не достигают карункулов. Тогда несколько подтягивают за послед рог матки к шейке или, расширив паль­цы и упираясь ими в стенку рога, осторожно приподнимают его кверху, и за­тем, быстро сжав руку, продвигают ее вперед и вниз. Повторяя несколько раз прием, удается «надеть» рог матки на руку, добраться до плаценты и, захватив ее, отделить. Работа облегчается, если выступающую часть последа скручивать вокруг его оси: от этого его объем умень­шается, свободнее проходит рука через шейку матки и несколько подтягивают­ся кнаружи глубоко располож плаценты. Иногда маточные карункулы отрываются и возникает кровотечение, но оно быстро и самостоятельно оста­навливается.

При частичном задержании последа неотделившиеся плаценты легко выяв­ляются пальпацией: карункулы имеют округлую форму и упругую консистен­цию, остатки же последа тестоваты или бархатисты.

Во вр операции надо следить за чистотой, неоднократно мыть руки и вновь втирать в кожу обволакивающее вещество.

После окончательного отделения пос­леда полезно ввести в матку не более 0,5 л люголевского раствора; используют так­же пенициллин, стрептомицин, стрепто­цид, маточные палочки или свечи с нитрофуранами, метромакс, экзутер. Однако нельзя Применять сразу несколько анти­биотиков с одинаковой органотропной токсичностью, это обусловливает синер­гизм и развитие тяжелых осложнений. Следует учитывать чувствительность па­тогенной микрофлоры к применяемым антибиотикам.

При отсутствии гнилостного процес­са в матке считается более целесообраз­ным применять сухой метод отделения последа; при нем в матку не вводят ни­каких дезинфицирующих растворов ни до, ни после оперативного отделения последа. При этом методе бывает меньше раз­личных осложнений, быстрее восста­навливается способность животных воспроизводить потомство и их про­дуктивность. При гнилостном разложении после­да необходимо спринцевать матку с обя­зательным последующим удалением ра­створа.

В целях профилактики эндометритов у коров после отделения последа нужно в течение 5—7 дней продолжать консер­вативное лечение, обеспечивающее по­вышение тонуса матки и предупрежда­ющее размножение в ней микрофлоры. Хороший эффект дают различные мето­ды новокаиновой терапии, внутримы­шечное введение 10—15 мл 7%-ного ра­створа ихтиола на 40%-ном растворе глюкозы, внутриматочные свечи. Все эти способы следует сочетать с приме­нением естественных методов повыше­ния резистентности организма и после­родовой активизации половой функции (активный моцион и др.).

4. Выполните эпиплевральную блокаду пограничного симпатического ствола и чревных нервов по В.В. Мосину.

Показания. Профилактика и лечение воспалительных процес­сов органов брюшной и тазовой полостей; обезболивание органов брюшной полости; нормализация тонуса гладких мышц; острые и хронические атонии преджелудков; тимпания рубца.

Крупных животных фиксируют в положении стоя, мелких — лежа. Тщательно готовят операционное поле.

Техника блокады. Иглу длиной 8...10 см и толщиной до 1,5 мм вкалывают у крупных животных впереди последнего ребра, а у мелких — по заднему его краю в желобе, образованном подвздош-но-реберной и длиннейшей мышцами, отступив на ладонь от ос­тистых отростков грудных позвонков. Иглу вводят под углом 30...35° к горизонтали и продвигают до упора в тело позвонка. По мере введения иглы инъецируют 0,5%-ный раствор новокаина, плавно отклоняя иглу от первоначального положения кверху и одновременно медленно продвигая ее в глубину до мо­мента свободного вытекания раствора под давлением поршня в надплевральную клетчатку. Введя 5... 10 мл раствора, шприц отсое­диняют. При правильном положении иглы из ее канюли каплями вытекает раствор, а игла колеблется синхронно пульсации аорты и дыхательным движениям.

При проколе плевры капли жидкости из иглы не выходят, а на­оборот, через иглу в плевральную полость поступает воздух. В этом случае иглу чуть-чуть извлекают и, изменив ее положение, завер­шают введение раствора новокаина. Аналогично поступают при блокаде на противоположной стороне.

Раствор новокаина вводят из расчета 0,5 мл/кг массы животно­го равными порциями с каждой стороны Собакам, овцам, козам, свиньям и кошкам вводят 2 мл/кг массы тела. При необходимости блокаду можно повторить через 7... 10 дней.

11.

1. Алиментарная тетания молодняка сельскохозяйственных животных: этиология, патогенез, диагностика, лечение и профилактика

Тетания характеризуется повышенной нервно-мышечной возбудимостью и возникновением эпилептоидных припадков. На основании гематологических исследований различают тетанию при пониженном содержании магния (гипомагниемия), а также при одновременном снижении в крови кальция и магния. Преимущественно заболевают телята старше 2 мес. На откорме болезнь наблюдается у молодняка в возрасте 12 24 мес . Этиология. Непосредственная причина болезни нарушение кальциево-магниевого обмена в организме вследствие недостатка этих элементов в кормовом рационе. Тетания у новорожденных телят возникает из-за недостатка в их организме кальция и магния при резком уменьшении этих элементов в организме матерей в период плодоношения, неполноценном молозиве коров-матерей, поносе у телят, при котором нарушается всасывание кальция и магния. Тетания от недостатка магния развивается, если телята получают бедные магнием корма: молоко, обрат, заменители цельного молока, приготовленного без добавки магниевых соединений, выщелоченное сено, солому. У телят в возрасте 1,5 2,5 мес причиной тетании может быть длительное их выращивание только на молочных рационах при весьма ограниченных дачах других кормов. Тетания от недостатка кальция возникает при откорме животных на рационах, в которых преобладают барда, концентраты, корнеклубнеплоды, солома злаковых, выщелоченное сено. Животные заболевают тетанией не только из-за недостатка в кормовом рационе кальция или магния, но и в результате нарушения их усвоения организмом. Если в рационе содержится много фосфора, например при откорме на барде, больших дачах концентратов, недостатке витамина D, то у животного уменьшается всасывание кальция слизистой оболочкой пищеварительного канала. При обилии в кормовом рационе кальция происходит повышенное выделение магния с калом и мочой. В том случае, когда в кормовом рационе изобилует белок, у жвачных в содержимом рубца появляется повышенная концентрация аммиака, вследствие чего происходит образование нерастворимых и неусвояемых фосфатов магния. Такие явления происходят, например, при обильных дачах концентрированных кормов, скармливании мочевины при недостатке в рационе легкопе-реваримых углеводов сахара и крахмала. Пониженное содержание магния в крови возникает при циррозе печени. Патогенез. И. П. Павлов указывал, что основными процессами нервной деятельности являются возбуждение и торможение, поэтому нарушение равновесия между ними вызывает патологическое состояние. Нарушение равновесия между этими процессами возникает при ослаблении функциональной способности нервных клеток и проявляется усилением возбуждения при ослаблении тормозного процесса. При недостатке кальция и магния в крови происходит нарушение равновесия между процессом торможения и возбуждения в сторону преобладания последнего, так как кальций и магний понижают возбудимость нервной клетки. Вследствие слабости тормозного процесса возбуждение нарастает до взрывчатости и разрешается эпилептоидным припадком, во время которого из коры и подкорковых центров исходит поток импульсов к мышцам головы, шеи, грудных конечностей и мышцам, участвующим в дыхании. Судорожный приступ заканчивается расслаблением мускулов. Симптомы. На откорме заболевает наиболее развитый молодняк хорошей упитанности, чаще бычки. В связи с медленным развитием болезни в клинической картине выделяют ее начальный период, в котором повышенная нервно-мышечная возбудимость проявляется кратковременным припадком, продолжающимся 1 2 мин. Животные совершают беспорядочные движения, бегают на широкорасставленных ногах, устремляются вперед, наталкиваются на стены и перегородки; отмечают мускульную дрожь, возникающую самопроизвольно или после прикосновения к животному. У некоторых больных животных наблюдают неподвижный взгляд, скрежет зубами, чавканье с выделением пены изо рта. Температура тела нормальная, частота пульса и дыхание незначительно повышены. Иногда наблюдают снижение аппетита, гипотонию преджелудков. В начальный период болезни после припадка животное встает и в промежутке до следующего припадка выглядит внешне здоровым. Следующий припадок может возникнуть через 1 2 дня. В дальнейшем припадки учащаются. Если животному в это время не оказать лечебной помощи, то спустя несколько дней наступает такая степень нервно-мышечной возбудимости, что эпилептоидный припадок может произойти при сильных раздражителях извне. К таким раздражителям относятся прививки, взятие проб крови, лечебные манипуляции, раздача корма, кормление животных, шум, крик, перегон скота, взвешивание и др. При тяжелом течении, когда в крови снижается содержание магния (ниже 1 мг%), припадки судорог возникают без внешнего раздражителя. Эпилептоидный припадок продолжается от нескольких до 20 мин. В начале припадка животное беспокоится, и если оно не на привязи, то быстро и беспричинно двигается по станку, иногда громко мычит. Вследствие потери равновесия животное падает, голова запрокидывается назад (опистотонус), ноги вытягиваются и совершают плавательные движения. Глаза выпячиваются и закатываются под верхнее веко. Изо рта выделяется пенистая слюна. Дыхание до 60 дыхательных движений в 1 мин, пульс до 80 100 и даже 200 ударов. Сердечный толчок стучащий. На шерстном покрове появляется пот. Довольно часто в группе животных, где выявляют больных, особенно у телят старше 5 6-месячного возраста, отмечают признаки рахита. Биохимическое исследование крови при тетании проводилось многими исследователями, результаты их даны в таблице При гипокальциевой тетании у телят, больных рахитом и свободных от него, содержание в крови общего кальция и неорганического фосфора было очень сниженным , магния нормальным. При гипомагниевой тетании происходят увеличение кальция в крови и снижение неорганического фосфора. Патолого-анатомические изменения. Множественные кровоизлияния на эндокарде и эпикарде, серозных оболочках кишечника, брыжейке, в мышцах. Перерождение сердечной мышцы, печени и почек. При продолжительном заболевании гипомагниевой тетанией у телят старшего возраста возникают очаги обызвествления на эндокарде, стенках кровеносных сосудов, селезенке, почках. Диагноз. По характерной клинической картине эпилептоидного припадка установление диагноза не представляет трудности. Однако необходимо провести исследование крови на содержание кальция и магния, витамина А" и каротина. Не рекомендуется брать пробы крови от животного непосредственно после припадка, так как кратковременно повышается содержание магния в крови. Необходимо отличать болезни, которые также сопровождаются эпилептоидными припадками: гиповитаминоз А, беломышечную болезнь, полиэнцефаломаляцию, менингоэнцефалит. При постановке дифференциального диагноза учитывают, что могут быть сочетания, например, тетании и гиповитаминоза А. Из инфекционных болезней следует дифференцировать болезнь Ауески и листериоз. Лечение. Необходимо как можно раньше выявлять больных путем внимательного наблюдения за животными, особенно во время припадков тетании, которые возникают после действия внешнего раздражителя. Больных животных отделяют в санитарные станки. Поскольку тетания сопровождается понижением содержания в крови кальция и магния, больному молодняку вводят препарат камагсол или лучше камагсол внутривенно в дозе 50 100 мл раз в сутки в течение нескольких дней подряд. Для лечения применяют кальция хлорид, кальция глюконат и магния сульфат. В связи с тем что после внутривенного введения указанных препаратов через 3 40 мин, а иногда через 6 9 ч возможно тяжелое нарушение сердечной деятельности, рекомендуется применять указанные препараты (за исключением кальция хлорида) внутримышечно. Кальция глюконат в 10%-ном растворе внутримышечно вводят телятам по 10 20 мл, молодняку на откорме 30 40 мл, по разу в день в течение 3 5 дн. подряд, кальция хлорид внутривенно в 10%-ном растворе телятам 10 20 мл, молодняку на откорме 30 50 мл 5 дн. подряд. Для предупреждения неблагоприятного действия раствор вводят медленно, через тонкую иглу и с добавлением 3 5 мл 40%-ного раствора глюкозы: Одновременно инъецируют магния сульфат внутримышечно или подкожно в 10%-ном растворе: телятам 20 50 мл, молодняку на откорме 50 100 мл. Так как дифференцировать тетанию от полиэнцефа-ломаляции трудно, больным животным необходимо вводить и витамин Вь Для лучшего усвоения кишечником из корма кальция и магния применяют внутримышечно масляный концентрат витамина Бэ или Бг в дозе 3 5 10 мл. При сохранившемся аппетите больным животным вместе с кормом дают магния сульфат в дозе 0,5 1 10 г, окись магния 0,5 3 10 г в сутки в течение 10 15 дн. Профилактика. Для группы или стада, где были выделены животные, больные тетанией, проводят профилактическую терапию: кормовой рацион пополняют богатым магнием люцерновым сеном, пшеничными или ржаными отрубями, кальциевыми или магниевыми добавками. Внутримышечно вводят масляные концентраты витаминов А и Б. При недостатке кальция проводят ультрафиолетовое облучение или содержат животных на выгульных двориках, или калдах.

2. Баланиты и баланопоститы : этиология, клиническое и морфологическое проявление, лечение, профилактика.

Воспаление препуциального мешка (постит) и воспаление головки полового члена (баланит) наблюдаются у жив-х всех видов. Особенно часто баланопоститы встречаются у быков-производителей, волов, буйво­лов, баранов и хряков.

Этиология. Баланопоститы обычно развиваются по следующим при­чинам: загрязнение навозной жижей живота и препуция при антисани­тарном стойловом содержании жив-х; задержание мочи в препуциальном мешке вследствие скопления в нем смегмы или выведения полового члена во время мочеиспускания, что иногда наблюдается после кастрации; раздражение сл. обол. препуция резкокислой мочой, образова­ние которой отмечается при высококонцентрированном типе кормления быков-производителей; механические повреждения препуция и полового члена во время случки, взятия спермы с помощью искусственной вагины, неумелой фиксации при повале жив-го, а также при выпасе жив-х на пастбище с кустарниками или сорными растениями; внедрение в сл. обол. препуциального мешка специфических возбудителей (спи­рохет, вирусов, грибов, бацилл некроза, личинок стронгилят и др.), к-рые, по данным многих авторов, вызывают язвенные баланопоститы.

Предрасполагающим фактором к баланопоститам может служить особенность анатомического строения препуциального мешка у быков. Очень длинный и узкий препуций быка выстлан тонкой сл. обо­л., склонной при самом незначительном ее раздражении к воспале­нию, а половой член во время мочеиспускания часто остается в полости препуция. Скопившаяся там моча способствует даже у здоровых жив-х восп. препуциального мешка.

Не менее важным условием, способствующим возникновению и разви­тию баланопоститов, является постоянное присутствие на сл. обол. препуциального мешка обильной микрофлоры (стафилококки, кишечная палочка, вульгарный протей и др.), которая при самых незначи­тельных повреждениях тканей может вызвать гнойное восп.

Патогенез. Указанные причины, каждая в отдельности или в различном сочетании, вызывают восп. процесс в тканях препуциального мешка и полового члена. Течение восп. процесса принимает затяжной характер и в ряде случаев осложняется изъ­язвлением кожи и сл. обол. препуциального мешка, обильным разращением фиброзной ткани в области наружного кольца препуция, сужением отверстия препуция – фимозом.

Восп. препуциального мешка и головки полового члена могут возникать раздель­но, но чаще они наблюдаются вместе и протекают как баланопостит. В начальной стадии баланопоститов поражается кожа в области наружного отверстия препуция. В дальнейшем восп. процесс переходит на сл. обол. препуциального мешка. Препуций опухает, становится болезненным, покрасневшим и горячим. При внедрении гноеродной мик­рофлоры процесс принимает характер гнойно-фиброзного воспаления.

Клинич. признаки. В начале заболевания у жив-го отмеча­ются вялость и частое мочеиспускание. Кожа в области препуция при­пухшая, покрасневшая и болезненная. Из препуциального мешка выделя­ется серозный или серозно-слизистый экссудат, который склеивает волосы, окружающие препуциальное отверстие. При длительном истечении экссу­дата кожа вокруг препуциального отверстия мацерируется и изъязвляется, в подкожной клетчатке препуция образуются гнойнички. В остром периоде б-ни больные быки, бараны и хряки часто отказываются от садки или покрывают самок недостаточно энергично.

С течением времени восп. процесс распростр. не только по окружности препуциального отверстия, но и на тело и головку полового члена, нижнюю стенку живота и мошонку.

Сл. обол. препуция воспалена, отверстие препуция настоль­ко сужено, что в него с трудом удается ввести палец. В полости препуция содержится б. кол-во гнойного экссудата с примесью некротиче­ской ткани. Больное жив-е угнетено, отказывается от корма, худеет. При развитии флегмонозного процесса возможны омертвение тканей пре­пуциального мешка и полового члена, развитие сепсиса со смертельным исходом.

Лечение. Лечебные мероприятия проводят с учетом клинического проявления и стадии течения б-ни. В острой и подострой стадиях восп. процесса, связанного с баланопоститом, после тщательного удаления из препуциального мешка скопившейся слизи применяют анти­септические, противовоспалительные, вяжущие и прижигающие лекар­ственные ср-ва, в частности калия перманганат в р-ре и в виде присыпки в смеси с борной к-той, йодоформом или нафталином; белый стрептоцид в порошке и в р-рах; р-р риванола; пенициллин, стреп­томицин и синтомицин в порошке, в р-рах, в мазях и эмульсиях.

Если отечность тканей препуциального мешка препятствует свободно­му выведению полового члена наружу для обработки его лекарственным веществом, то применяют сакральную, проводниковую или инфильтрационную анестезию (по И. И. Магда).

В стадии фибринозного разращения тканей в области препуциального мешка назначают тепловые процедуры в виде вапоризации, аппликаций лечебных грязей, прогревания лампами соллюкс или инфраруж. Можно также применять тканевую и УВЧ-терапию.

В случае развивающегося фимоза прибегают к оперативному лечению.

При баланопоститах, протекающих с резко выраженным воспали­тельным отеком и признаками флегмоны, делают разрезы в виде отдельных насечек наружного листка крайней плоти. В этих случаях уменьшается внутритканевое напряжение, улучшается местное крово- и лимфообраще­ние, усиливается выделение наружу токсических продуктов, что бла­готворно влияет на течение болезненного процесса.

3. Скрытый эндометрит у коров: этиология, патогенез, признаки, методы диагностики, лечение и профилактика.