
- •Азотсодержащие соединения
- •Опыт 1. Образование и гидролиз сернокислой соли дифениламина (дфа)
- •Опыт 2. Цветная реакция дфа с hno3 и нитратами
- •Опыт 3. Щелочной гидролиз ацетамида
- •Опыт 4. Дезаминирование ацетамида
- •Опыт 5. Получение и свойства метиламина
- •Опыт 6. Взаимодействие первичных аминов с азотистой кислотой
- •Опыт 7. Растворимость мочевины в воде и образование ее азотнокислой соли
- •Опыт 8. Дезаминирование мочевины
- •Опыт 9. Гидролиз мочевины, доказательство ее строения
- •Опыт 10. Разложение мочевины при нагревании. Образование биурета и циануровой кислоты. Биуретовая реакция
- •Аминокислоты и белки
- •Опыт 1. Доказательство амфотерных свойств глицина
- •Опыт 2. Дезаминирование аминокислоты
- •Опыт 3. Образование медной соли глицина
- •Опыт 4. Биуретовая реакция – качественная на пептидную связь
- •Опыт 5. Качественные (цветные) реакции на боковые аминокислотные радикалы
Аминокислоты и белки
Цель работы. Убедиться в амфотерном характере аминокислот и белков, освоить качественные (цветные) реакции белков для прогноза их первичной структуры (видов аминокислот).
Опыт 1. Доказательство амфотерных свойств глицина
1.1. В полную воды пробирку поместите каплю 0,002 н. H2SO4 и каплю метилоранжа (перемешать). Полученный розовый раствор разделите на две пробирки. В одну из пробирок с кислым раствором добавьте одну лопаточку сухого глицина. Сравните окраски растворов.
1.2. В полную воды пробирку внесите каплю 0,005 н NaOH и каплю фенолфталеина (перемешать). Полученный окрашенный (щелочной) раствор разделите на две пробирки. В одну из пробирок со щелочным раствором добавьте одну лопаточку сухого глицина. Сравните окраски растворов.
Напишите реакции, объясняющие изменения окрасок индикаторов.
Опыт 2. Дезаминирование аминокислоты
Аминокислоты, как и первичные амины, взаимодействуют с азотистой кислотой HNO2 с выделением азота – эту реакцию используют для количественного определения аминокислот ( по оъему N2).
К 1 мл 10 %-го глицина добавьте несколько кристаллов NaNO2 и 0,5 мл 0,5 н. HCl. При встряхивании пробирки наблюдается выделение N2 в виде мелких пузырьков (с помощью влажного красного лакмуса убедитесь, что выделяется не NH3).
Запишите уравнения реакций.
Опыт 3. Образование медной соли глицина
В сухую пробирку вносят 0,5 г CuCO3 и 1,5-2 мл 2 %-го раствора глицина. Смесь нагреют на пламени спиртовки – появляется синяя окраска раствора. Часть раствора переливают в другую пробирку и добавляют 2 капли 10 %-го раствора NaOH. Выпадает ли осадок? Приведите объяснение.
Оставшуюся часть раствора охлаждают в стакане с ледяной водой. Постепенно выпадают кристаллы трудно раствормой медной соли аминоуксусной кислоты:
Образование комплексных, окрашенных в синий цвет медных солей характерно для -аминокислот.
Опыт 4. Биуретовая реакция – качественная на пептидную связь
В две пробирки налейте по 1 мл растворов белка и желатина, добавьте по 1 мл 30 %-го NaOH и по стенкам пробирки по 2-3 мл CuSO4. Наблюдайте появление окраски.
Окрашивание дают: биурет (отсюда название реакции), полипептиды, белки, амиды, имиды и некоторые другие соединения.
Образующиеся при биуретовой реакции окрашенные соединения являются внутренними медными комплексами хелатного строения:
Опыт 5. Качественные (цветные) реакции на боковые аминокислотные радикалы
5.1. Ксантопротеиновая реакция является качественной на аминокислотные радикалы, содержащие ароматические фрагменты (тирозин, триптофан, фенилаланин) – желтое окрашивание обусловлено образованием полинитросоединений:
В две пробирки прилить по 1 мл растворов белка и желатина, в каждую добавить по 4-5 капель концентрированной HNO3. Пробирки нагреть на пламени спиртовки в течение 2-3 мин. Наблюдать за изменением окраски, объяснить появление ее или отсутствие.
5.2. Сульфгидрильная реакция – качественная на серосодержащие аминокислотные радикалы (цистин, цистеин). Черное окрашивание обусловлено образованием осадка PbS:
В две пробирки прилейте по 1 мл растворов белка и желатина и добавьте в каждую по 1,5 мл 30 %-го NaOH. Кипятите оба щелочных раствора по 2-3 мин. К горячим растворам добавьте по 0,5 мл Pb(CH3COO)2 и вновь нагрейте до образования черного осадка. Объясните наличие или отсутствие осадка PbS.
5.3. Нингидриновая реакция
На полоску фильтровальной бумаги нанесите по капле растворов глицина, желатина и яичного белка (1,5-2 см между пятнами). Пятна просушите над электроплиткой и на высохшие места нанесите по капле нингидрина. После повторного нагревания на фильтре появляются характерные окрашивания.
нингидрин
(трикетогидрин -
денгидрат)
окрашенное
соединение
Большинство аминокислот дает голубое или лиловое окрашивание, аспарагин – оранжево-коричневое, пролин и оксипролин – желтое. Нингидриновая реакция широко используется для колориметрического определения аминокислот, иминокислот, первичных и вторичных аминов и белков.
Сделать общий для опытов 6.1–6.3 вывод – сравнить первичные структуры (виды аминокислот) яичного белка и желатина.