Методы обработки планктона Качественная обработка планктона
Методы обработки планктона могут быть качественные и количественные, могут производиться над планктоном как в живом, так и в консервированном виде.
При качественной обработке в живом виде собранный материал надлежит исследовать вскоре после лова или на месте взятия пробы, или на ближайшем стационарном пункте (лаборатории, станции и пр.). Ввиду быстрого отмирания планктона при переносе проб на место обработки, следует защищать пробы от нагревания солнцем, не закупоривать их наглухо, уложить их во влажный мох или завернуть в мокрую тряпку.
Если нет возможности сразу же приступить к обработке, доставленные пробы перенести в холодное помещение: подвал, погреб. Самый просмотр живого материала производить возможно быстрее. Предметные и покровные стекла, пипетки для взятия капли материала не должны иметь следов фиксатора (формалина и пр.). Взятая пипеткой капля (лучше со дна) и перенесенная на предметное стекло накрывается покровным стеклом, и определению подвергаются прежде всего те организмы, которые в консервированном виде не определимы: жгутиковые, прочие простейшие, беспанцирные коловратки. Для парализования движения организмов применяется наркоз хлоралгидратом, кокаином, хлороформом, парами осмиевой кислоты; осторожное нагревание капли и прибавление вишневого клея тоже способствуют замедлению движения. Так как консервирование организмов сильно деформирует некоторых из них, особенно многих представителей наннопланктона, то при обработке их в живом виде выигрывается точность определения. Это достоинство изучения наннопланктона в живом виде очень подкупает в пользу если не полного применения этого способа, то, по крайней мере, хотя бы частичного.
Исследование планктона в консервированном виде производится следующим образом: часть осадка берется пипеткой (не той, которая употребляется при изучении планктона в живом виде) и переносится на предметное стекло, накрывается покровным стеклом и исследуется при малом увеличении микроскопа или под бинокуляром для зоопланктона и при большом увеличении для фитопланктона (также для всего наннопланктона). Пипетка для взятия капли не должна быть слишком узкой. При определении отмечается на глаз частота встречаемости отдельных форм, которая в записях регистрируется теми или иными условными обозначениями по пяти-шестибалльной шкале.
Для оценки встречаемости существуют и другие условные шкалы, среди которых можно указать на шкалу, помещенную в «Инструкции для микроскопического исследования и описания образцов планктона и грунта». Здесь предлагается разбавлять осадок пробы после отстаивания водой в отношении 1 : 3, из взболтанной смеси брать 3 капли на предметное стекло и просматривать их полностью. Для оценки встречаемости устанавливается такая шкала:
1. Не в каждом препарате — обозначается дробью, числитель которой показывает количество найденных экземпляров, а знаменатель число препаратов.
2. В каждом препарате в количестве не более 10 экземпляров — обозначается цифрой 1.
3. В каждом препарате в количестве 10 экземпляров, но не в каждом поле зрения — цифрой 2.
4. Н каждом поле зрения в количестве от 1 до нескольких экземпляров — цифрой 3.
5. В массе — знаком ∞
. 6. Если в препарате организмов 2—3, то при преобладающем из них после ∞ ставится восклицательный знак (!).
Для устранения или ослабления недостатка, связанного с деформацией некоторых организмов от фиксации, рекомендуется, насколько возможно чаще, предварительно или параллельно просматривать живой материал на месте взятия пробы или в лаборатории и делать соответствующие пометки, зарисовки, касающиеся морфологии отдельных форм, чтобы иметь надежные отправные пункты в случае сомнений, которые могут возникнуть при определении в консервированном виде. Продолжительная практика в определении организмов тоже может облегчить узнавание тех или других форм.