
- •Введение
- •I. Биофизика
- •Лабораторная работа №1 Изучение энергии активации биологических процессов на примере работы Na-, к-атф-азы
- •Влияние температуры на ферментативную активность Na-, к-атф-азы.
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа № 2 Определение концентрации пигментов в растениях по спектрам поглощения
- •Упражнение 1. Определение концентрации хлорофиллов a и b в экстрактах из зеленых листьев
- •Упражнение 2. Изучение зависимости поглощения от концентрации вещества
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа №3 Влияние температуры на скорость биологических реакций
- •Упражнение 1. Определение температурного коэффициента гемолиза эритроцитов крови человека
- •Упражнение 2. Влияние концентрации кислоты на скорость гемолиза
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа №4 Влияние уф-облучениия на светопропускание раствора эритроцитов
- •Упражнение 1. Исследование гемолиза эритроцитов под действием освещения в присутствии красителя
- •Упражнение 2. Исследование зависимости гемолиза от времени освещения
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа №5 Физико-химические методы в биологии Определение вязкости растворов
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа №6 Определение проницаемости кожи лягушки для ионов
- •Упражнение 1. Изучение динамики распределения ионов
- •Упражнение 2. Влияние ингибиторов и блокаторов на проницаемость кожи лягушки
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа № 7 Изучение электропроводности крови и эритроцитов
- •Упражнение 1. Изучение электропроводности цельной крови, эритроцитов и плазмы
- •Упражнение 2. Изучение влияния гемолиза на электропроводность эритроцитов
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа № 8 Регистрация потенциала действия нерва лягушки при различных температурах
- •Изготовление препарата изолированного седалищного нерва лягушки
- •Упражнение 1. Наблюдение пд нерва лягушки и расчет скорости проведения возбуждения по нерву
- •Упражнение 2. Расчет энергии активации процесса проведения возбуждения в нерве
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа № 9 Измерение осмотической устойчивости эритроцитов
- •Упражнение 1. Изучение гемолиза с помощью колориметра
- •Упражнение 2. Измерение осмотической устойчивости эритроцитов
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа №10 Определение концентрации сахара в растворе поляриметром
- •Упражнение 1. Определение удельного вращения сахара и глюкозы
- •Упражнение 2. Определение концентрации раствора сахара
- •Упражнение 3. Исследование зависимости удельного вращения глюкозы от длины волны
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •II. Физиология
- •Лабораторная работа №1 Приготовление нервно-мышечного препарата
- •Лабораторная работа №2 Определение значения реобазы и хронаксии
- •Лабораторная работа №3 Регистрация мышечных сокращений
- •Лабораторная работа №4 Оптимум и пессимум частоты и силы раздражения
- •Лабораторная работа №5 Строение мышечной ткани
- •Лабораторная работа №6 Определение степени развития мышц плеча у человека
- •Лабораторная работа №7 Сила мышц и силовая выносливость
- •Лабораторная работа №8 Изучение утомления скелетных мышц
- •Лабораторная работа №9 Регистрация и анализ электрокардиограммы человека
- •Контрольные вопросы:
Упражнение 1. Исследование гемолиза эритроцитов под действием освещения в присутствии красителя
Цель работы: исследовать влияние красителя и УФ-облучения на гемолиз эритроцитов.
Принцип метода. При изучении эритроцитов (гемолиза) уменьшается мутность суспензии, а, следовательно, увеличивается светопропускание: раствор становится более прозрачным. В связи с этим изменение пропускания суспензии эритроцитов может служить контролем гемолиза.
Приборы и реактивы: фотоколориметр, установка для облучения эритроцитов, кварцевые пробирки, пипетки.
Ход работы:
Пропускание эритроцитов можно определить на фотоэлектроколориметре. Чтобы поглощение гемоглобина не препятствовало измерению светорассеяния, проводят гемолиз с красным светофильтром (670 нм), т.е. в спектральной области, где гемоглобин не поглощается и светопропускание зависит исключительно от мутности (светорассеяния).
В качестве источника для облучения суспензии эритроцитов используют УФ-лампу. Готовят 1% суспензию эритроцитов в физиологическом растворе, 0,04% раствор эритрозина или метиленовой сини на физиологическом растворе (8 мг эритрозина на 20 мл физиологического раствора). В 2 пробирки наливают по 4,0 мл раствора эритрозина и добавляют в каждую по 1 мл 1% суспензии эритроцитов (пробы 1, 2). В две контрольные пробирки вливают по 4,0 мл физиологического раствора и по 1 мл взвеси эритроцитов (проба 3, 4). После тщательного перемешивания растворов пробы 1 и 3 облучают в кварцевых пробирках в течение 10 мин. Пробы 2 и 4, служащие темновым контролем, в это время должны находиться в темном месте при той же комнатной температуре.
Затем все пробы оставляют в темноте, и их пропускание измеряют через каждые 15 мин в течение часа. Раствором сравнения обычно служит 0,04% раствор эритрозина на физиологическом растворе. Можно использовать также дистиллированную воду. Результаты измерений следует представить в виде графика зависимости пропускания Т от времени после облучения для всех четырех проб:
Проба 1 эритроциты + краситель + освещение;
Проба 2 эритроциты + краситель без освещения;
Проба 3 эритроциты + освещение без красителя;
Проба 4 эритроциты без красителя и освещения.
Упражнение 2. Исследование зависимости гемолиза от времени освещения
При многих простых фотохимических процессах число прореагировавших молекул (n) пропорционально дозе, т.е. интенсивности света (I) и времени облучения (t):
.
При постоянной интенсивности действие света пропорционально времени облучения. В биологических системах фотохимические процессы зависят от времени и интенсивности облучения.
Цель работы: изучить влияние продолжительности облучения на гемолиз эритроцитов.
Ход работы:
Приготавливают 4 кварцевые пробирки, содержащие по 4,0 мл 0,04% раствора эритрозина в физиологическом растворе и 1% суспензии эритроцитов (см. упражнение 1). В другие 4 пробирки помещают по 4,0 мл 1% суспензии эритроцитов (без красителя). Облучают пробы так же, как и в предыдущем упражнении. Время облучения должно быть различным для каждой пары пробирок (с красителем и без него): 10, 20 и 30 мин.
Определение гемолиза в пробах (см. упражнение 1) осуществляют примерно через час после облучения; это время необходимо для развития полного гемолиза в поврежденных эритроцитах. Более точно момент измерения находят на основании результатов предыдущего опыта. Опыт следует выполнять тогда, когда гемолиз в пробе, облученной в течение 10 мин, достигает 80 – 90% максимальной величины. Результаты представляют в виде графика зависимости пропускания (Т) от времени облучения, на который наносят кривую для контрольных проб (эритроциты без красителя).