
- •Содержание
- •Глава 1.Обзор литературы
- •Глава 2.Материалы и методы исследования
- •Глава 3. Результаты исследования и их обсуждение
- •Введение
- •Глава 1. Обзор литературы
- •1.1.Разнообразие белков семейства кальпаинов
- •1.2 Кальпаин / кальпастатиновая протеолитическая система.
- •1.3 Биохимические механизмы нейродегенеративных заболеваний
- •Глава 2.Материалы и методы исследования
- •2.1 Реагенты и приборы
- •2.2 Моделирование нейродегенерации у лабораторных животных
- •2.3 Анализ биохимических показателей
- •2.3.1 Экстракция белков из тканей
- •2.3.2 Определение активности кальпаинов
- •2.3.3 Зимография с козеином
- •2.3.4 Электрофорез белков в полиакриламидном геле
- •2.3.5 Вестерн-блот анализ
- •2.3.6 Другие методы
- •Глава 3. Результаты исследования и их обсуждение
- •3.1 Интактные животные.
- •3.2 Ложнооперированные животные.
- •3.3 Животные с экспериментальной нейродегенерацией.
- •3.4 Введение пептида Аβ – модель ба.
- •3.5 Введение глутамата – модель эксайтотоксичности.
- •3.6 Эстрогенная терапия индуцированной нд
- •Заключение
- •Список литературы
Глава 2.Материалы и методы исследования
2.1 Реагенты и приборы
В работе были использованы соли, химические реагенты, ингибиторы протеиназ, белковые субстраты, маркеры молекулярных масс, очищенный кальпаин 1 человека, красители, 17β-эстрадиол, L-глутаминовая кислота, нифедипин («Sigma-Aldrich», США), компоненты для вестерн-блот анализа («Bio-Rad», США), поликлональные антитела к кальпастатину sc-20779 и конъюгированные с пероксидазой антитела к IgG кролика sc-2004 («Santa Cruz Biotechnology», США). Предподготовка пептида Aβ1-40 («Sigma-Aldrich», США) включала его растворение в стерильном 0.9% NaCl до конечной концентрации 2.5 г/л и инкубацию раствора при 37 °С в течение недели для агрегации пептида.
В работе были использованы приборы: микроцентрифуга 5417R («Eppendorf», Германия), ультрацентрифуга Optima Beckman LE 80 («Beckman-Coulter», США), твердотельный термостат CH-100 («BioSan», Латвия), камера для электрофореза Mini Protean-3 Cell, камера для блот-переноса Trans-Blot SD Semi-Dry Electrophoretic Transfer Cell, система гель-документирования Gel Doc XR Plus («Bio-Rad», США), спектрофотометр СФ-2000 (ЗАО «ОКБ-Спектр», Россия).
2.2 Моделирование нейродегенерации у лабораторных животных
Исследование проведено на одно- (серии эксперимента I и II) и двухлетних (серия III) крысах Вистар, самцы массой 300 ± 30 г, самки – 250 ± 30 г. Животных содержали в стандартных виварных условиях при естественном световом режиме и свободном доступе к воде и пище. Способы воздействия на животных в трех сериях эксперимента обобщены в таблице 1.
В каждой серии эксперимента произвольно выделяли четыре группы животных (в каждой n = 7-10): 1) интактные; 2) контрольные – ложно-оперированные; 3) подвергнутые введению нейротоксичного агента; 4) подвергнутые введению нейротоксичного агента на фоне введения потенциального нейропротектора.
группа крыс, воздействие |
серия эксперимента | ||
|
I |
II |
III |
1. интактные |
+ |
+ |
+ |
2. ложно-оперированные |
NaCl |
NaCl |
NaCl |
3. нейротоксичный агент |
Аβ1-40 |
глутамат |
глутамат |
4. нейротоксичный агент + потенциальный нейропротектор |
Аβ1-40 + 17β-эстрадиол |
глутамат + 17β-эстрадиол |
глутамат + нифедипин |
Таблица 1. Схема экспериментов с лабораторными животными. Дозы, длительность и способ введения веществ приведены в тексте.
Ложнооперированные животные (группа животных 2), подвергались однократной инъекции 2 мкл 0.9% раствора NaCl в C1-область правого гиппокампа. Животные групп 3 и 4 подвергались однократной интрацеребральной (в ту же область мозга) инъекции агента, индуцирующего нейродегенеративные изменения: в I серии эксперимента – 2 мкл раствора, содержащего 5 мкг пептида Аβ1-40, во II и III – 2 мкл 1 мкМ раствора L-глутаминовой кислоты. Помимо инъекции нейротоксичного агента животным 4-й группы ежедневно в течение 14 дней с момента операции вводили 0.1 мг 17β-эстрадиола интраназально (I и II серии эксперимента) или 1 мг нифедипина per os (III серия). Интрацеребральная инъекция выполнялась в стерильных условиях под хлоралгидратным наркозом (400 мг/кг веса), забой проводили через две недели после операции декапитацией после аналогичной инъекции хлоралгидрата. Для оценки когнитивной функции крыс до и после оперативного вмешательства проводились поведенческие тесты в открытом лабиринте с параллельными ходами или в водном лабиринте Морриса.
Биохимические и гистоморфологические показатели оценивали в разных отделах головного мозга крыс: поврежденном инъекцией правом гиппокампе и в интактных левом гиппокампе и коре правого и левого больших полушарий.