
Режимы химической газовой стерилизации
Стерилизующее средство |
Температура, 0С |
Время стерилизации, мин |
Вид изделий, рекомендуемых к стерилизации данным методом |
Смесь ОБ (окись этилена + бромистый метил в соотношении 1:2,5) |
35
|
240 |
Оптика, кардиостимуляторы |
55 |
240 |
Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы), стекла, металлов | |
55 |
360 |
Пластмассовые магазины к сшивающим аппаратам | |
18 |
960 |
Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы), стекла, металлов | |
Окись этилена |
18 |
960 |
Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы), стекла, металлов |
Пары 40 % раствора формальдегида в этиловом спирте |
80 |
180 |
Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы) |
120 |
Изделия из металлов и стекла |
Стерилизацию газовым методом осуществляют в стационарных газовых стерилизаторах, разрешенных к применению в установленном порядке, а также в портативных аппаратах (микроанаэростаты).
Плюсом стерилизации газовым методом является возможность использования упаковки материалов, длительно сохраняющей стерильность. Так срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных в упаковке из полиэтиленовой пленки составляет 5 лет, в пергаменте или бумаге – 20 суток. Отрицательные стороны метода связаны с дороговизной оборудования, существенным временем экспозиции (несколько часов), необходимостью дегазации при помощи специальной аппаратуры, что дополнительно увеличивает длительность цикла стерилизации.
Озоном стерилизуют инструменты простой конфигурации из коррозионностойких сталей и сплавов, применяемые в хирургии и стоматологии (скальпели, пинцеты, зеркала цельнометаллические, гладилки, зонды, шпатели, боры стоматологические твердосплавные), в неупакованном виде. После стерилизации инструменты используют по назначению сразу (без дополнительного проветривания).
Существует современный, эффективный, но весьма дорогой метод стерилизации – плазменная очистка в низкотемпературных плазменных стерилизаторах SPS. Принцип работы этой аппаратуры основан на генерации плазмы непосредственно вокруг стерилизуемого материала. Стерилизующим агентом является 20%-ный пероксид водорода. Процесс происходит в любой части камеры. Контроль температуры осуществляется инфракрасными датчиками. Стерилизация в этом случае представляет собой сухой процесс при температуре от +35 до +500С, что гарантирует сохранность инструментов и оборудования, чувствительного к повышенной температуре и влажности. Время стерилизации – от 90 до 120 минут.
Стерилизация хирургических инструментов
Методом выбора для стерилизации металлических инструментов является стерилизации в суховоздушных стерилизаторах при t - 1800C в течение 60 минут.
Для стерилизации коррозионно-стойких инструментов может применяться автоклавирование при давлении в 2 атм (1320С.) в течение 20 минут.
Одноразовые инструменты (пинцеты, зажимы, зонды, скальпели) стерилизуются с помощью ионизирующего излучения в заводских условиях.
Изделия, применяемые в стоматологии (боры зубные, головки алмазные, дрильборы, а также рабочие части гладилок, экскаваторов, зондов и др.) стерилизуют в среде нагретых стеклянных шариков (гласперленовая стерилизация).
Методом выбора для стерилизации оптических инструментов (лапароскопия, торакоскопия), инструментов, содержащих термолабильные элементы, является газовая стерилизация (смесь ОБ) или замачивание в растворах химических средств (Бианол, Лизоформин-3000, Глутарал, Сайдекс, Стераниос и др.)
Стерилизация перевязочного материала и белья
Перевязочный материал и белье стерилизуют в автоклаве при давлении 2 атм. (1320С.) в течение 20 минут.
Белье и материал стерилизуются в стерилизационных коробках (биксах).
Существуют 3 вида укладки бикса:
Универсальная - в бикс или матерчатый комплект закладывают разный материал: шарики, салфетки, вату, халаты, тампоны и т. п. В этих случаях бикс делят на секторы, в каждом из которых находится тот или иной материал. Такая укладка применяется в хирургических отделениях с небольшим объемом работы.
Специализированная - в каждый из биксов укладывают один вид материала (халаты, салфетки и т.п.). Применяется в хирургических отделениях с большим объемом работы.
Целенаправленная - в бикс укладывается материал, который может потребоваться для определенного оперативного вмешательства.
Допустимый срок сохранения материала после стерилизации в биксах составляет 72 часа.
Стерилизация перчаток
В промышленных условиях для стерилизации перчаток применяется лучевая стерилизация.
Методом выбора в стационарных условиях является автоклавирование при давлении 1,1 атм. в течение 45 минут.
Резиновые перчатки перед стерилизацией пересыпают внутри и снаружи тальком для предохранения их от склеивания. Между перчатками прокладывают марлю или бумагу, каждую пару перчаток заворачивают отдельно в марлю или бумагу и в таком виде помещают в стерилизационную коробку или в другую упаковку.
Наряду с автоклавированием для стерилизации перчаток применяется газовая химическая стерилизация.
В экстренных случаях для стерилизации перчаток используется обработка в течение 5 минут тампоном, смоченным 96 % спиртом.
Для поддержания стерильности по ходу операции перчатки обрабатывают 2.4 % первомуром и протирают 96 % этанолом.
ОБРАБОТКА РУК ХИРУРГА
Одним из важнейших мероприятий по профилактике контактной инфекции является обработка рук хирурга.
Обработка рук хирурга перед операцией складывается из 3-х основных этапов: механической очистки рук, дезинфекции и дубления.
Механическая очистка рук проводятся посредством мытья рук под краном с мылом. Руки тщательно моются от кончиков пальцев до верхней трети предплечья.
Ранее применялось мытье рук с помощью щетки, что приводило к микротравматизации кожи рук хирурга. Применение современных способов допускает мытье рук без щеток.
Для механической обработки рук необходимо снять с рук все украшения, часы, поскольку они затрудняют удаление микроорганизмов. Руки намыливаются, затем ополаскиваются тёплой проточной водой и всё повторяется сначала. Считается, что при первом намыливании и ополаскивании тёплой водой микробы смываются с кожи рук. Под воздействием тёплой воды и самомассажа поры кожи открываются, поэтому при повторном намыливании и ополаскивании смываются микробы из раскрывшихся пор.
Тёплая вода способствует более эффективному воздействию антисептика или мыла, в то время как горячая вода удаляет с поверхности рук защитный жировой слой. В связи с этим следует избегать употребления слишком горячей воды для мытья рук.
В соответствии с Европейским стандартом обработки рук, EN-1500 целесообразно соблюдать необходимую последовательность движений:
Тереть одну ладонь о другую ладонь возвратно-поступательными движениями.
Правой ладонью растирать тыльную поверхность левой кисти, поменять руки.
Соединить пальцы одной руки в межпальцевых промежутках другой, тереть внутренние поверхности пальцев движениями вверх и вниз.
Соединить пальцы в «замок», тыльной стороной согнутых пальцев растирать ладонь другой руки.
Охватить основание большого пальца левой кисти между большим и указательным пальцами правой кисти, вращательное трение. Повторить на запястье. Поменять руки.
Круговым движением тереть ладонь левой кисти кончиками пальцев правой руки, поменять руки.
Каждое движение повторяется не менее 5 раз. Обработка рук осуществляется в течение 30 секунд - 1 минуты.
Очень важно соблюдать описанную технику мытья рук, поскольку специальные исследования показали, что при рутинном мытье рук определённые участки кожи (кончики пальцев и их внутренние поверхности) остаются загрязнёнными.
После последнего ополаскивания руки насухо вытираются салфеткой (15х15 см). Этой же салфеткой закрываются водопроводные краны. Салфетка сбрасывается в ёмкость с дезинфицирующим раствором для утилизации.
При отсутствии одноразовых салфеток возможно использование кусков чистой ткани, которые после каждого использования сбрасываются в специальные контейнеры и после дезинфекции отправляются в прачечную. Замена одноразовых салфеток на электрические сушилки нецелесообразна, т.к. при них не происходит растирания кожи, а значит не происходит удаление остатков моющего вещества и слущивания эпителия.
Дезинфекция рук достигается путем воздействия на кожные покровы растворов антисептических средств.
Используемые для обработки рук химические антисептики должны иметь следующие свойства:
обладать сильным антисептическим действием,
быть безвредными для кожи хирурга,
быть доступными и дешевыми (применяются в больших объемах).
Дубление необходимо для закрытия пор кожи с целью поддержания максимально длительной стерильности ее поверхности. Современные способы обработки рук не требуют специального дубления (используются пленкообразующие антисептики или антисептики с элементом дубления).
Классические методы обработки рук Спасокукоцкого - Кочергина, Альфельда, Фюрбрингера имеют лишь исторический интерес и в настоящее время не используются.
На современном этапе применяются следующие способы обработки рук хирурга:
Обработка рук первомуром (раствором С-4).
Раствор С-4 готовят следующим образом: отмеренное количество перекиси водорода 33% (171 мл.) и 85% муравьиной кислоты (81 мл.) сливают в стеклянную колбу (вначале вливают перекись водорода, а затем муравьиную кислоту), встряхивают и ставят в холодильник на 90 минут. Это время необходимо для образования антисептического реагента - надмуравьиной кислоты, вызывающей образование тончайшей пленки на поверхности кожи, закрывающей поры и исключающей необходимость дубления. После этого содержимое рабочей смеси разводят дистиллированной водой - 10 литров. Раствор используется для обработки рук, а также операционного поля и может применяться в течение 1 суток (позднее обеззараживающий эффект теряется).
Раствор наливают в тазик, обеззараженный путем обжигания или протирания первомуром эмалированный. Руки предварительно моют с мылом в проточной воде 1 минуту (без щеток), осушивают полотенцем, а затем моют в растворе первомура в течение 1 минуты: 30 сек. до локтя и затем 30 сек. только кисти, после чего осушивают стерильной салфеткой в той же последовательности, как по методу Спасокукоцкого - Кочергина. Обработка 96 % этанолом и йодом не рекомендуется из-за возможного раздражения кожи рук. В одном тазике, не меняя раствора, могут вымыть руки 10 - 11 человек. Недостатком метода является возможность развития дерматита на коже рук хирурга.
Обработка рук дегмином и дегмицидом. Эти антисептики относятся к четвертичным аммониевым соединениям. Раствор антисептика заливают в емкость, в которую помещают стерильные губки. Руки обрабатывают 2 –мя губками по 3 минуты каждой, после чего высушивают стерильной марлевой салфеткой. Обработка рук 96 % этиловым спиртом или спиртовой настойкой йода не производится в связи с возможным дерматитом.
Обработка рук хлоргексидином биглюконатом (гибитаном). Используется 0,5% спиртовый раствор хлоргексидина. После предварительного мытья рук в проточной воде с мылом руки обрабатывают в тазике с 0,5% спиртовым раствором хлоргексидина в течение 3 минут. После осушивания стерильной салфеткой одевают резиновые перчатки.
Обработка АХД, АХД-специаль, евросептом. Действующим началом этих комбинированных антисептиков являются этанол, эфир жирной кислоты, хлоргексидин. Препараты находятся в специальных флаконах, из которых при нажатии на специальный рычаг определенная их доза выливается на руки хирурга. После окончания этапа механической очистки на кисти рук наносится антисептик порциями по 3 мл и, не допуская высыхания, втирается в кожу, строго соблюдая последовательность движений схемы EN-1500. Процедура нанесения кожного антисептика повторяется не менее двух раз, общий расход антисептика — 10 мл, общее время процедуры — 5 минут.
Обработка рук хирурга ультразвуком. Для быстрой обработки рук в последние годы сконструированы специальные аппараты с ультразвуковыми ваннами, в которых мытье и дезинфекция рук происходят в течение 1 минуты. Мытье осуществляется погружением рук в 0,05% водный раствор хлоргексидина, через который пропускают ультразвуковые волны, обеспечивающие" эффект мытья".
Обработка рук церигелем. Церигель – пленкообразующий антисептик из группы детергентов. Методика: в течение 2-3-х минут церигель наносится на поверхность рук, при этом образуется пленка. Метод применяется в экстренных ситуациях, при выполнении кратковременных вмешательств и не требует одевания стерильных перчаток. В настоящее время применяется редко.
Обработка рук методом Бруна заключается в обработке 96 % этанолом в течение 10 минут. В настоящее время применяется только в военно-полевых условиях.
После обработки рук хирурга надеваются стерильный халат и перчатки. После снятия перчаток по завершению операции руки вновь протираются салфеткой, смоченной кожным антисептиком, затем моются с мылом и увлажняются смягчающим кремом.
До и после выполнения инвазивных процедур, малых хирургических манипуляций, при осуществлении ухода за раной, катерами, дренажами, выполнении перевязок проводится гигиеническая обработка рук.
Для гигиенической обработки рук используют спиртосодержащие кожные антисептики (70% раствор этилового спирта; 0,5% раствор хлоргексидина биглюконата в 70% этиловом спирте, АХД-2000 специаль, Стериллиум и др.)
После окончания этапа механической очистки (двукратное намыливание и ополаскивание) антисептик наносится на кисти рук в количестве не менее 3 мл и тщательно втирается в кожу до полного высыхания (вытирать руки не следует). Если руки не были загрязнены (например, отсутствовал контакт с пациентом), то первый этап пропускается и можно сразу наносить антисептик. Последовательность движений при обработке рук соответствует схеме EN-1500. Каждое движение повторяется не менее 5 раз. Обработка рук осуществляется в течение 30 секунд – 1 минуты.
ОДЕВАНИЕ ХАЛАТА И ПЕРЧАТОК НА ОПЕРАЦИЮ
После надевания стерильной маски и обработки рук (одним из методов) операционная сестра с помощью санитарки приступает к надеванию стерильного халата.
Последовательность действий:
Попросите санитарку открыть бикс. При наличии педали откройте бикс самостоятельно.
Проверьте вид индикатора на стерильность.
Разверните халат нижней (изнаночной) стороной, держа его на вытянутых руках и не касаясь им пола и себя.
Халат одевают на правую вытянутую руку.
Правой рукой, на которой уже надет стерильный халат, берется левый край ворота, халат одевают на левую расправленную руку (при этом правая кисть оказывается прикрыта халатом).
Обе руки вытягивают вперед и вверх, не касаясь краев халата.
Операционная сестра завязывает тесемки на рукавах.
Санитарка завязывает тесемки халата со стороны спины.
Пояс халата развертывают на уровне талии перед собой, не касаясь поясом халата. Кисти рук держат на расстоянии 25-30 см от халата и от концов пояса.
Санитарка, стоя за спиной операционной медсестры, должна взять концы пояса и завязать их сзади.
Стерильные перчатки операционная сестра надевает без посторонней помощи.
Последовательность действий:
Попросите санитарку открыть бикс. При наличии педали откройте бикс самостоятельно.
Проверьте вид индикатора.
Разверните упаковку с перчатками.
Возьмите перчатки за отворот левой руки так, чтобы пальцы не касались внутренней поверхности перчатки.
Сомкните пальцы правой руки и введите ее в перчатку.
Разомкните пальцы правой руки и натяните перчатку на пальцы, не нарушая ее отворота.
Аналогичным образом наденьте перчатку на левую руку.
Расправьте отворот вначале на левой перчатке, натянув ее на рукав, затем на правой с помощью II и III пальцев, подводя их под подвернутый край перчатки.
Перчатки протираются 96% этиловым спиртом для удаления остатков талька.
Последовательность действий при надевании стерильного халата на хирурга:
Обработать руки одним из методов, надеть стерильный халат и перчатки.
С помощью педали открыть бикс (в этом может помочь санитарка операционного блока).
Вынуть из бикса стерильный халат.
Развернуть халат на вытянутых руках, повернуть его внутренней стороной от себя.
Накинуть верхние концы халата на свои кисти рук, накрыть их при этом халатом.
Подать хирургу развернутый халат таким образом, чтобы он мог просунуть в рукава сразу обе руки.
После надевания на руки закинуть на плечи хирурга верхний край халата, который раньше был на ваших руках. Хирург самостоятельно или операционная сестра завязывает завязки на рукавах.
Санитарка, стоя за спиной хирурга, завязывает ленты воротника и пояс, который ей дает хирург.
Способ надевания стерильных перчаток на хирурга:
Сестра отворачивает края стерильных перчаток в виде манжеток.
Вводит под отвернутые края четыре пальца обеих рук (II— V), растягивает ими перчатки и надевает их на руки хирурга.
Хирург, надев перчатки, поднимает кисти вверх.
Сестра подает хирургу шарик, обильно смоченный спиртом, для обработки надетых перчаток.
ОБРАБОТКА ОПЕРАЦИОННОГО ПОЛЯ
На операционном столе операционное поле обрабатывается растворами химических антисептиков (йодонат, йодпирон, хлоргексидин, первомур, и др.).
При обработке операционного поля по Гроссиху-Филончикову должны соблюдаться следующие правила:
Проверить качество бритья операционного поля.
Дважды в широких пределах обработать операционное поле последовательно, раздельными стерильными марлевыми тампонами, обильно смоченными одним из антисептиков. Антисептик наносить на кожные покровы с растиранием операционного поля в течение 3-4 минут. Инъекционное поле обработать стерильным ватным тампоном.
Обработку операционного поля проводить в направлении от зоны предполагаемого разреза к периферии. При наличии раны или очага инфекции – от периферии к очагу. Очаг изолировать от линии разреза путем заклеивания, прижигания, наложением швов либо рану закрыть стерильной марлевой салфеткой.
После ограничения операционного поля стерильными простынями место операции дополнительно обработать тупфером, смоченным раствором антисептика.
После окончания операции, перед наложением узловых швов на кожу, ее края обработать антисептиком.
Обработать рану после наложения швов.
ИМПЛАНТАЦИОННАЯ ИНФЕКЦИЯ
Имплантация – внедрение, вживление в организм больного искусственных чужеродных материалов и приспособлений с определенной лечебной целью. Источниками имплантационной инфекции являются:
Шовный материал;
Дренажные трубки;
Катетеры;
Протезы клапанов сердца, сосудов, суставов и т.д.;
Специальные металлические приспособления (скобки и скрепки из сшивающих аппаратов, спицы, шурупы, пластины для остеосинтеза);
Кава-фильтры, спирали, стенты;
Трансплантированные органы.
Основным вероятным источником имплантационной инфекции является шовный материал, постоянно используемый хирургами.
Классификация шовного материала:
По происхождению:
а) естественного происхождения: шелк, кетгут (изготавливается из подслизистого слоя кишечника крупного рогатого скота);
б) искусственного (синтетического) происхождения: капрон, лавсан, дексон, викрил, полипропилен, ПДС и др. виды шовного материала.
По способности к биодеструкции.
А) рассасывающиеся:
кетгут;
коллаген;
материалы на основе целлюлозы: окцелон, кацелон;
на основе полигликолидов: полисорб, викрил, дексон, максон;
полидиоксанон: ПДС, ПДС –2;
монокрил;
капроаг;
полиуретан.
Б) медленно рассасывающиеся:
шелк;
полиамидные (капроновые) нити: капрон, этилон, нуролон, дермалон, монософ.
В) нерассасывающиеся:
полиэфиры: лавсан, суржидак, мерсилен, этибонд;
полиолефины; суржипро, пролен, полипропилен, суржилен;
фторполимеры: флексамид;
поливинилиден;
металлическая проволока;
нитинол.
Рассасывающиеся нити используются для сшивания быстро срастающихся тканей: мышц, подкожно-жировой клетчатки, при операциях на органах желудочно-кишечного тракта, желчных и мочевыводящих путях.
Медленно рассасывающиеся, нерассасывающиеся нити применяются для наложения швов на коду, подкожно-жировую клетчатку, ушивании разрезов грудной и брюшной стенки.
По структуре нити:
Мононить (монофиламентная)в сечении представляет единую структуру с абсолютно гладкой поверхностью.
Полинить (многофиламентная)в сечении состоит из множества нитей:
крученая нитьизготавливается путем скручивания нитей по оси;
плетеная нитьполучается путем плетения многих филамент по типу каната;
комплексная нить– это плетеная нить, пропитанная или покрытая полимерными материалами.
Монофиламентные нити применяются в микрохирургии, в косметической хирургии, при операциях на сердце и сосудах, в желудочно-кишечной хирургии.
Способы стерилизации шовного материала
В настоящее время основным способом стерилизации шовного материала является лучевая стерилизация в заводских условиях. Шовный материал стерилизуется и в упаковке поступает в лечебные учреждения.
В стационаре шовный материал стерилизуют паровым способом. Стерилизации подвергаются нити хирургические шелковые крученые, нити хирургические капроновые крученые, шнуры хирургические полиэфирные. Лигатурный шовный материал готовят к стерилизации в виде косичек, мотков, наматывая на катушки, стеклянные палочки и т.д. Подготовленный лигатурный шовный материал заворачивают в два слоя упаковочного материала (при размещении в стерилизационной коробке - в один слой упаковочного материала) в количестве, рассчитанном на одну операцию. На упаковке отмечают вид шовного материала и его номер. Стерилизация шовного материала проводится при давлении 1,1 атм в течение 45 минут.
Лигатурный шовный материал хранят в той же упаковке, в которой он был простерилизован, в специальных шкафах для стерильных изделий. Неиспользованный стерильный лигатурный шовный материал в случае нарушения условий или истечения срока хранения может быть повторно простерилизован только один раз.
СПОСОБЫ КОНТРОЛЯ СТЕРИЛЬНОСТИ
Методы контроля стерильности делятся на прямые и непрямые.
Прямым методом контроля стерильности является бактериологическое исследование. Его недостаток – длительность проведения исследования, результаты становятся известными через 3-5 дней, в то время как использовать инструменты целесообразно сразу после стерилизации. В связи с этим метод применяется для выборочного контроля стерильности хирургических материалов в плановом порядке, и по его результатам судят о методических погрешностях в работе медперсонала или дефектах используемого оборудования.
Контроль обсемененности разных объектов и воздуха в хирургических отделениях производится 1 раз в месяц. Выборочный контроль стерильности инструментов, перевязочного материала, рук хирурга, кожи, операционного белья и др. проводят 1 раз в 7дней, шовного материала – 1 раз в 10 дней.
Непрямые методы контроля используются при термических способах стерилизации и позволяют определить температуру, при которой производилась стерилизация, не давая ответ на вопрос о присутствии или отсутствии микрофлоры.
При автоклавировании в бикс кладут ампулы с веществом, имеющим температуру плавления 110 0С (резорцин, антипирин), 120 0С(бензойная кислота), 132 0С (никотинамид, мочевина, манноза). После стерилизации сестра обращает внимание на цвет ампул. Если вещество расплавилось, то материал стерильный, если нет – нагревание было недостаточным и пользоваться таким материалом нельзя – он нестерильный. Вместо ампулы в бикс можно положить термоиндикаторные полоски (ИС-120, ИС-132 и др.) или максимальный термометр, по которому определяют, достигалась ли во время стерилизации необходимая температура.
Для контроля стерилизации в сухожаровом шкафу используются вещества с более высокой точкой плавления (180-1900С): тиомочевина, кислота вина, гидрохион или термоиндикторные полоски (ИС-180 и др.)
ЭНДОГЕННАЯ ИНФЕКЦИЯ
Эндогенной называется инфекция, источник которой находится в организме больного. Источники эндогенной инфекции:
Кожные покровы больного;
Желудочно-кишечный тракт;
Ротовая полость;
Очаги «дремлющей» инфекции: кариозные зубы, воспалительные заболевания мочевыводящих путей, хронический тонзиллит, хронический бронхит и т.д.
Пути попадания микроорганизмов в рану:
по сосудам (гематогенный),
по лимфатическим сосудам (лимфогенный);
непосредственный (контактный)
Профилактика эндогенной инфекции включает выявление возможных очагов эндогенной инфекции перед выполнением операции. Обязательный минимум обследования перед плановой операцией включает:
Общий анализ крови;
Общий анализ мочи;
Биохимический анализ крови;
Флюорография грудной клетки;
ЭКГ;
Анализ крови на RW;
Кровь на антитела к ВИЧ;
Заключение стоматолога о санации полости рта;
Заключение гинеколога;
Осмотр терапевта.
Если при обследовании выявлен источник эндогенной инфекции (кариес, аднексит и др.), плановую операцию нельзя выполнять до ликвидации воспалительного процесса. После перенесенного инфекционного заболевания запрещается выполнение плановой операции в течение 2-х недель после полного выздоровления
ВНУТРИБОЛЬНИЧНАЯ (ГОСПИТАЛЬНАЯ) ИНФЕКЦИЯ
Внутрибольничная (госпитальная) инфекция – это любое клинически выраженное заболевание микробного происхождения, поражающее больного в результате его госпитализации или посещения лечебного учреждения с целью лечения, а также больничный персонал в силу осуществления им деятельности, независимо от того, проявляются или не проявляются симптомы этого заболевания во время нахождения данных лиц в стационаре.
Госпитальную инфекцию называют также нозокомиальной (noso – болезнь, komos – приобретение), тем самым подчеркивается, что развитие заболевания или его осложнений связано с пребыванием в стационаре в результате проведения лечебно-диагностических мероприятий.
Явление возможного инфицирования пациента во время нахождения его в стационаре обозначается как «эффект госпитализации».
Этиологическая природа ВБИ определяется широким кругом микроорганизмов (по современным данным более 300), включающим в себя как патогенную, так и условно-патогенную флору.
Основные возбудители ВБИ:
Бактерии
грамположительная кокковая флора: род стафилококков (St. aureus, St. epidermidis, St. saprophyticus); род стрептококков (Str. pyogenes, Str. pneumoniae и др.);
грамотрицательная палочковидная флора: род эшерихий (E. coli, E. blattae), род сальмонелла (S. typhimurium, S. enteritidis), род клебсиелла (Kl. pneumoniae, Kl. ozaenae и др.), род протей (Pr. vulgaris, Pr. mirabilis), Psudomonas (вид Ps. aeroginosa).
Вирусы: простого герпеса, аденовирусной инфекции, гриппа, парагриппа, риновирусы, энтеровирусы и др.
Грибы (условно-патогенные и патогенные) – более 120 видов.
Источники ВБИ
Пациенты (больные и бактерионосители) – особенно длительно находящиеся в стационаре.
Медперсонал (больные и бактерионосители) – особенно длительные носители и больные стертыми формами.
Роль посетителей стационаров, как источников ВБИ – незначительна!
Механизмы и пути передачи
Фекально-оральный.
Воздушно-капельный.
Трансмиссивный.
Контактный.
Факторы передачи:
Контаминированный инструментарий, дыхательная и другая медаппаратура, белье, постельные принадлежности, кровати, предметы ухода за больными, перевязочный и шовный материал, эндопротезы и дренажи, трансплантанты, спецодежда, обувь, волосы и руки персонала и больных.
«Влажные объекты» – краны, раковины, сливные трапы, инфузионные жидкости, питьевые р- ры, дистиллированная вода, контаминированные р-ры антисептиков, антибиотиков, дезинфектантов и др., кремы для рук, вода в вазах для цветов, увлажнители кондиционеров.
Классификация ВБИ
В зависимости от путей и факторов передачи ВБИ:
Воздушно-капельные (аэрозольные)
Вводно-алиментарные
Контактно-бытовые
Контактно-инструментальные: постинъекционные, постоперационные, послеродовые, посттрансфузионные, постэндоскопические, посттрансплантационные, постдиализные, постгемосорбционные
Посттравматические инфекции
Другие формы.
От характера и длительности течения: острые, хронические, подострые.
По степени тяжести: тяжелые, среднетяжелые, легкие формы клинического течения.
В зависимости от степени распространения инфекции:
Генерализованные инфекции: сепсис, тяжелый сепсис, септический шок.
Локализованные инфекции:
Инфекции кожи и подкожной клетчатки (ожоговых, операционных, травматический ран, постинъекционные абсцессы, омфалит, рожа, пиодермия, абсцесс и флегмона подкожной клетчатки, парапроктит, мастит, дерматомикозы и др.);
Респираторные инфекции (бронхит, пневмония, легочный абсцесс и гангрена, плеврит, эмпиема и др.);
Инфекции сердечно-сосудистой системы (инфекции артерий и вен, эндокардит, миокардит, перикардит, постоперационный медиастинит):
Инфекции пищеварительной системы (гастроэнтероколит, энтерит, колит, холецистит, гепатиты, перитонит, абсцессы брюшины и др.);
Урологические инфекции (бактериурия, пиелонефрит, цистит, уретрит, др.);
Инфекции половой системы (сальпингоофорит, эндометрит, др.);
Инфекции костей и суставов (остеомиелит, инфекция сустава или суставной сумки, инфекция межпозвоночных дисков);
Инфекции глаза (конъюнктивит, кератит, блефарит и др.);
ЛОР-инфекции (отиты, синуситы, ринит, мастоидит, ангина, ларингит, фарингит, эпиглоттит и др.);
Инфекции ЦНС (менингит, абсцесс мозга, вентрикулит и др.).
Причины, способствующие сохранению высокого уровня заболеваемости ВБИ:
Главная причина – изменение свойств микробов, обусловленное неадекватным использованием в лечебной сфере антимикробных факторов и создание в ЛПУ условий для селекции микроорганизмов с вторичной (приобретенной) устойчивостью (полирезистентностью).
Процесс развития вирулентной, устойчивой к антибактериальным препаратам инфекции называется суперинфекцией.
Микробы с приобретенной устойчивостью имеют преимущества перед другими представителями популяции, что приводит к их селекции и дальнейшему доминированию (формированию госпитального штамма).
Особенности госпитальных штаммов:
способность к длительному выживанию;
повышенная агрессивность;
повышенная устойчивость;
повышенная патогенность;
постоянная циркуляция среди больных и персонала.
Росту ВБИ способствуют:
недостаточное оснащение оборудованием, инструментарием, перевязочным материалом, лекарствами;
недостаточный набор и площади помещений;
нарушения в работе вентиляции;
аварийные ситуации на водо- и канализационных сетях, перебои в подаче хол. и гор. воды, нарушения в тепло- и энергоснабжении;
проведение ремонтных работ в стационаре;
кадровый дефицит в стационаре;
дефицит медсестер - выполнение врачами несвойственных им функций (врач не является специалистом в выполнении инвазивных мероприятий сестринского профиля);
дефицит санитарок - расширение сектора деятельности медсестер (уборка и т. д.), входящего в противоречие с противоэпидемическими правилами.
В связи с этим мероприятия основные мероприятия по борьбе с ВБИ включают в себя:
Использование современных архитектурно-планировочных решений при строительстве и реконструкции зданий и корпусов лечебных учреждений.
Разделение потоков больных, гнойных и чистых палат, отделений, операционных и оборудования.
Сокращение предоперационного койко-дня.
Сокращение длительности пребывания пациентов в стационаре.
Соблюдение личной гигиены медперсоналом и пациентами хирургического отделения.
Проведение предварительных и периодических медицинских осмотров.
Стерилизация и использование стерильных предметов.
Дезинфекция предметов медицинского назначения.
Оптимизация назначения антибактериальных препаратов (выбор показаний, доза, кратность, путь введения), мониторинг их применения антибиотиков, оценка результатов.
Осуществление и реализация программ инфекционного контроля в стационаре.
Согласно приказу МЗ № 720 во всех стационарах создаются комиссии по борьбе с внутрибольничной инфекцией, которые собираются 1 раз в квартал и по мере необходимости при развитии госпитальной инфекции. Комиссии анализируют информацию о возможных источниках инфекций и путях их распространения, разрабатывают стратегию, направленную на предотвращение распространения инфекций в стационаре.
Контроль обсемененности разных объектов и воздуха в хирургических отделениях осуществляется 1 раз в месяц. Выборочный контроль стерильности инструментов, перевязочного материала, рук хирурга, кожи, операционного белья и др. проводят 1 раз в неделю.
Список литературы:
Гостищев В.К. Общая хирургия: учебник. - 5-е изд., перераб. и доп. / В.К. Гостищев – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2012.
Кушнарева Г.А. Дезинфекция, предстерилизационная очистка, стерилизация изделий медицинского назначения / Г.А. Кушнарева // Санэпидемконтроль. – 2009. – № 1.
Методические указания МУ-287-113 по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения (утв. Департаментом Госсанэпиднадзора Минздрава РФ 30 декабря 1998 г.).
Петров С.В. Общая хирургия: учебник / Петров С.В. – 3-е изд., перераб. и доп. – М. : ГЭОТАР-Медиа, 2010. – 768 с.
Руководство по инфекционному контролю в стационаре. Пер. с англ./ Под ред. Р. Венцеля, Т. Бревера, Ж-П. Бутцлера. – Смоленск: МАКМАХ, 2003. – http://www.antibiotic.ru.
Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы СанПиН 2.1.3.2630-10 "Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность" (утв. постановлением Главного государственного санитарного врача РФ от 18 мая 2010 г. № 58).
Приложение № 1