Научные стремления 2011-1

Строение полученных имидов (3а–д) подтверждено данными элементного анализа, спектров ИК и ЯМР 1Н и 13С, масс-спектрометрией. По данным спектроскопии ЯМР 1Н, чистота полученных соединений 98±1%. Выходы имидов (3а–д) составили 35–43 % в расчете на канифольномалеиновый аддукт.

Полученные ароматические имиды (3а–д) являются термически стабильными соединениями с температурой начала разложения 300–325ºС, что на 25–50ºС выше температуры разложения кислоты (1). Они могут быть использованы в качестве оптически активных добавок, модифицирующих добавок к полимерам, а аминоимиды (3г, д) – для синтеза полиамидоимидных полимеров и сополимеров [5]. Остаток от канифольномалеинового аддукта, представляющий собой, в основном, смесь не вступивших в реакцию с малеиновым ангидридом смоляных кислот (де-, дигидроабиетиновой, пимаровой, изо-пимаровой), после удаления растворителя может быть использован как модифицирующая добавка к полиолефинам [7].

Экспериментальная часть. ИК спектры соединений записаны на ИКФурье спектрометре Brucker Tensor 27 в таблетках KBr. Спектры ЯМР 1Н и 13С сняты на спектрометре AVANCE 500 (500 МГц для 1Н, 125 МГц для 13С) для растворов в ДМСО-d6. Химические сдвиги определяли относительно внутреннего стандарта – ТМС. Масс-спектры получены на масс-спектрометре Accela с масс-детектором LCQ Fleet в режиме химической ионизации (APCI) с детектированием положительных ионов.

Канифольномалеиновый аддукт, модифицированный олеиновой кислотой, получен на опытной установке Института химии новых материалов, температура размягчения аддукта 88–93ºС, кислотное число 251 мгКОН/г, остаточное содержание малеинового ангидрида 0.5%.

Ароматические имиды малеопимаровой кислоты (3а–д) (общая методика). Раствор 10 г модифицированного канифольномалеинового аддукта и 0.025 моль ароматического амина (2а–д) в 30 мл толуола кипятили с обратным холодильником 24 ч. По окончании реакции смесь охлаждали до 18–20ºС и оставляли при этой температуре на 48 ч. Выпавший осадок отфильтровывали, промывали 2×10 мл толуола, высушивали на воздухе и 10 мин при 125ºС. Имиды (3а–д) получили с выходами 35–43 % в расчете на массу аддукта канифоли и малеинового ангидрида.

Физико-химические характеристики имидов (3а–д), полученных из канифольномалеинового аддукта, соответствуют имидам, синтезированным из индивидуальной малеопимаровой кислоты [6, 8]:

(3а), выход 38.1% (3.81 г), т. пл. 305–307ºС. ИК (υ, см-1, KBr): 2550 (О−Н),

1770, 1700 [(C=O)N], 1500 (C=Cаром), 1390 (C−N). Масс-спектр, m/z: 477 [М++1].

Найдено, %: С 75.20; Н 7.67; N 2.63. C30H37NO4. Вычислено, %: C 75.76; H 7.84;

N 2.94.

(3б), выход 39.9 % (3.99 г), т. пл. 302−304ºС. ИК (υ, см-1, KBr): 2550

(О−Н), 1770, 1700 [(C=O)N], 1510 (C=Cаром), 1400 (C−N). Масс-спектр, m/z: 491

791

[М++1]. Найдено, %: С 75.61; Н 7.70; N 2.99. C31H39NO4. Вычислено, %: C 76.04;

H 8.03; N 2.86.

(3в), выход 35.0% (3.50 г), т. пл. 275–278ºС. ИК (υ, см-1, KBr): 2570 (О−Н),

1770, 1710 [(C=O)N], 1490 (C=Cаром), 1390 (C−N). Масс-спектр, m/z: 556 [М++1].

Найдено, %: С 64.75; Н 6.75; N 2.62, Br 14.56. С30H36BrNO6. Вычислено, %: C

64.98; H 6.54; N 2.53, Br 14.41.

(3г), выход 42.8% (4.28 г), т. пл. 309–310ºС. ИК (υ, см-1, KBr): 2570 (О−Н),

1770, 1705 [(C=O)N], 1485 (C=Cаром), 1400 (C−N). Масс-спектр, m/z: 492 [М++1].

Найдено, %: С 73.12; Н 8.23; N 6.05. C30H38N2O4. Вычислено, %: C 73.44; H 7.81;

N 5.71.

(3д), выход 43.4% (4.34 г), т. пл 278–279ºС. ИК спектр (υ, см-1, KBr):

2550–2600 OH; 1770, 1700 [(C=O)N], 1510 (С=Саром). Масс-спектр, m/z: 492 [М++1]. Найдено, %: С 73.75; Н 8.11; N 5.39. C30H38N2O4. Вычислено, %: C

73.44; H 7.81; N 5.71.

Литературные источники

1.Corma A., Iborra S., Velty A. // Chem. Rev. 2007. Vol. 107. N 6. P. 2411.

2.Fahrenkamp-Uppenbrink J. // Science. 2002. Vol. 297. P. 798.

3.Зандерманн В. Природные смолы, скипидары, талловое масло. М.: Лесная промышленность, 1964. С. 313.

4.Свикле Д.Я., Прикуле А.Я., Шустер Я.Я., Веселов И.А. // Хим.-фарм. журнал. 1978. Т. 12, N 5. С. 70−73.

5.Ray S.S., Kundu A.K., Maiti S. // J. Appl. Polym. Sci. 1986. Vol. 36, N 6. P.

1283−1293.

6.Бей М.П., Ювченко А.П. // Весцi АН Беларусi. Cер. хiм. н. 2010. № 1. С. 78–82.

7.Бей М.П., Петрушеня А.Ф., Яценко В.В., Ювченко А.П. Модифицирование полиэтилена продуктами на основе малеинизированной канифоли // Тезисы докладов XXIII Международной научно-технической конференции: «Реактив-2010», г. Минск, 27–29 октября 2010 г. С. 83.

8.Бей М.П., Ювченко А.П., Дикусар Е.А., Поткин В.И. // Журнал общей химии.

2011. Т. 11. Вып. 3. С. 467–470.

M.P. Bei, A.P. Yuvchenko, S.A. Makhnach

THE EFFECTIVE SYNTHESIS OF AROMATIC IMIDES OF MALEOPIMARIC ACID FROM MALEATED ROSIN

Institute of Chemistry of New Materials, National Academy of Science of Belarus, Minsk

Summary

The method of synthesis of individual aromatic imides of maleopimaric acid from maleated rosin without intermediate isolation of maleopimaric acid has been developed. Yields of pure aromatic imides of maleopimaric acid vary from 35% to 43% referred to maleated rosin.

792

УДК 663.5

А.А. Бильдюкевич, Н.Н. Якимович, В.Н. Гринько, И.В. Якимович, А.А. Шункевич

ИССЛЕДОВАНИЕ ВЛИЯНИЯ ОСНОВНЫХ ФИЗИКОХИМИЧЕСКИХ ПАРАМЕТРОВ НА ПРОЦЕСС СПИРТОВОГО БРОЖЕНИЯ ДРОЖЖАМИ SACCHAROMYCES CEREVISIAE ANGEL

ГНУ «Институт физико-органической химии НАН Беларуси»

Актуальность. В последние годы в мире наблюдается повышение интереса к этанолу, как добавке к бензину с целью экономии нефти, ресурсы которой ограничены. Большинство стран мира разработали национальные программы с целью довести в ближайшем будущем долю этанола в бензине до 20 %. Республика Беларусь не является исключением, и потребность в этаноле с каждым годом будет значительно возрастать.

Для удовлетворения взрастающей потребности в этиловом спирте наряду со строительством новых заводов, важное значение приобретает интенсификация технологических процессов получения этанола на существующих предприятиях.

Повышение рентабельности производства и улучшение качества готовой продукции при переработке концентрированных замесов из крахмалсодержащего сырья может быть достигнуто различными путями, среди которых необходимо выделить наиболее весомые: исследование и внедрение в производство осмо- и термофильных рас дрожжей, использование новых комплексов ферментных препаратов, позволяющих проводить более полную и качественную обработку исходного сырья, а также ведение разбраживания и главного брожения при оптимальных значениях важных физико-химических параметров. Вышеперечисленные подходы в совокупности позволяют значительно улучшить экономические показатели производства этилового спирта.

Цель настоящего исследования заключается в изучении влияния основных физико-химических параметров, таких как температура, активная кислотность (рН), концентрация растворенного кислорода в ферментационной среде на процесс спиртового брожения дрожжами Saccharomyces cerevisiae

Angel.

Материалы и методы. Работы по приготовлению зернового сусла проводили на лабораторной ферментационной установке EDF 5.2 производства фирмы ―Biotechnikais centrs‖ (Латвия). Зерно ржи подвергали измельчению и отбирали фракцию, имеющую не менее 90% прохода через сито диаметром 1 мм. В лабораторный ферментатор вносили водопроводную воду и нагревали ее до температуры 45 – 50 °С. В подогретую до указанной температуры воду медленно задавали отобранную фракцию измельченного зерна ржи в количестве, чтобы гидромодуль смеси имел значение, равное 3,5-м (1 часть измельченного зерна и 2,5 части воды). Полученную смесь тщательно перемешивали с помощью мешалки ферментатора и обрабатывали ферментными препаратами Термамил СЦ, при расходе 0,4 ед АС/г усл.

793

крахмала и Вискоферм при расходе 0,2 дм3/т сухих веществ сырья. Полученную смесь выдерживали в течение 30 минут, доводили температуру смеси до 85 °С и выдерживали при этой температуре в течение 180 минут. Все процессы проводили при постоянно работающей мешалке ферментатора. По истечение 3- х часов температуру смеси снижали до 58-60 °С путем подачи водопроводной воды в змеевик ферментатора. В ферментатор задавали ферментный препарат Сан Экстра Л в количестве 7,5 ед ГлС/г усл. крахмала сырья. Проводили осахаривание массы при перемешиании в течение 30 минут. После чего задавали в ферментационную смесь асептический препарат Фрикон в количестве 1 г на 1 м3 среды.

Определение общего количества редуцирующих веществ (РВ) проводили способом Бертрана в модификации Шорля [1].

Содержания спирта в культуральной жидкости определяли методом газожидкостной хроматографии [2]; количество дрожжевых клеток – подсчетом в камере Горяева [3].

Результаты и обсуждение. В таблице 1 приведены результаты исследований по влиянию температуры культивирования и рН среды на процесс биосинтеза этилового спирта дрожжами Saccharomyces cerevisiae Angel

Таблица 1 Влияние температуры культивирования и рН среды на процесс биосинтез этилового спирта дрожжами Saccharomyces cerevisiae Angel

Данные, приведенные в таблице 1, показывают, что оптимальной температурой развития Saccharomyces cerevisiae Angel является 28–32ºС. Так, например, при температуре 25оС продуктивность дрожжей (по сравнению с оптимальной температурой) снижалась более чем на 15%. При относительно высоких температурах (40оС) культивирования продуктивность культуры снижается более чем на 50%.

Снижение продуктивности дрожжей при пониженных температурах, повидимому, связано с изменением интенсивности дыхания и обменных процессов, следствием чего является неэкономное расходование источников углерода, о чем свидетельствует высокое содержание несброженных углеводов в зрелой бражке.

Исследования по влиянию рН среды на рост и биосинтетическую активность Saccharomyces cerevisiae Angel проводили в диапазоне рН 3,0-7,0. Постоянную величину рН поддерживали в процессе роста дрожжей за счет

794

введения в ферментационную среду стерильных 20%-ных растворов едкого натра или серной кислоты. Указанные нейтрализующие агенты были выбраны таким образом, чтобы при внесении в ферментационные среды, они не являлись питательной составляющей для дрожжевой клетки.

Высокая продуктивность дрожжей наблюдается в пределах рН от 4,0 до 6,0. При активной кислотности ферментационной среды выше и ниже указанного диапазона наблюдается снижение продуктивности процесса брожения приблизительно на 10-12%.

Внаших исследованиях, связанных с изучением влияния концентрации растворенного кислорода воздуха на биосинтез биомассы продуцентом содержание кислорода поддерживали на уровнях (±3%): 5, 10, 15, 25, 30, 40, 45% от максимального насыщения (100%). С этой целью скорость вращения мешалки ферментатора при перемешивании среды изменяли от 400 до 900 об/мин, расход воздуха на аэрацию составлял от одного до двух объемов на объем ферментационного раствора в минуту.

Втаблице 2 приведены результаты исследований по влиянию аэрации на процесс культивирования продуцента этилового спирта Saccharomyces cerevisiae Angel.

Таблица 2 - Влияние аэрации на процесс выращивания дрожжей Saccharomyces cerevisiae Angel

Результаты экспериментальных данных, представленных в таблице 2 свидетельствуют о том, что оптимальная концентрация растворенного в ферментационной среде кислорода воздуха при выращивании продуцента этанола Saccharomyces cerevisiae Angel находится в интервале 30-40% от максимального насыщения среды. Как видно из данных таблицы 2 в указанном интервале концентраций растворенного кислорода количество клеток продуцента этанола имеет максимальное значение. При этом количество несброженных сахаров, а также время выращивания продуцента являются наиболее технологически выгодными по сравнению с показателями, полученными при более низкой концентрации кислорода в ферментационной среде.

Выводы. Таким образом, на основании полученных экспериментальных данных можно заключить, что оптимальные значения важнейших физикохимических параметров в процессе биосинтеза этилового спирта штаммом-

795

продуцентом Saccharomyces cerevisiae Angel необходимо поддерживать на уровне: рН=4,0 – 5,0, температура – 2832 оС, уровень концентрации кислорода в среде в пределах 30-40% от максимального насыщения.

Литературные источники

1.Практикум по микробиологии. - М.: Изд-во МГУ, 1976. – 176 с.

2.Биологически активная добавка «Флоравит Э» в гастроэнтерологии. Методические рекомендации / Погорельская Л.В. и [др.]. - М.: МЗРФ РМАПО, 2005. -68с.

3.Микробиологический контроль гидролизно-дрожжевого производства. - М.:

Экология, 1991. – 150 с.

A.A.Bildyukevich, N.N. Yakimovich, V.N. Hryn’ko, I.V. Yakimovich, A.A. Shunkeevich

INVESTIGATION OF THE INFLUENCE OF THE BASIC PHYSICAL CHEMICAL PARAMETERS ON THE PROCESS OF ALCOHOLIC FERMENTATION BY

YEAST SACCHAROMYCES CEREVISIAE ANGEL

Institute of Physical organic chemistry, National Academy of Sciences, Minsk

Summary

It was done the study of the effect of temperature, pH and dissolved oxygen in the fermentation medium on the process of growing yeast Saccharomyces cerevisiae Angel and the biosynthesis of ethanol with the use of fermentation laboratory setting EDF 5.2. It was determined the optimal ranges of the above mentioned parameters, allowing to achieve the highest productivity of the fermentation process.

796

УДК 547.953

А.И. Василькевич 1, О.Л. Шарко 1, Л.Л. Биричевская 2

ПОЛУЧЕНИЕ ФОСФАТИДИЛСЕРИНА ИЗ ФОСФОЛИПИДОВ СОЕВЫХ БОБОВ ПО РЕАКЦИИ ТРАНСФОСФАТИДИЛИРОВАНИЯ

1Институт биоорганической химии НАН Беларуси, Минск

2Институт микробиологии НАН Беларуси, Минск

Актуальность работы. Одной из актуальных геронтологических проблем, стоящих перед Беларусью, строящей социально-ориентированное общество, является профилактика снижения качества жизни людей среднего и пожилого возраста, обусловленного ухудшением памяти.

Известно, что до 50% людей старше 65 лет заметно теряют свои умственные способности, что проявляется при решении таких повседневных задач, как употребление слов, запоминание имѐн, поддержание активной умственной деятельности. Имеющиеся на сегодняшний день экспериментальные данные, с одной стороны, свидетельствуют, что возрастное снижение умственных функций происходит параллельно с уменьшением в мозге содержания фосфатидилсерина [1–3] – вещества, относящегося к классу фосфолипидов, из которых на 60% состоит мозг. С другой стороны, клинические исследования за рубежом показали, что применение фосфатидилсерина здоровыми взрослыми и пожилыми людьми приводит к значительным сдвигам в запоминании информации, объѐме памяти, в том числе зрительной, поднятии угнетѐнного настроения. Он восстанавливает познавательные, эмоциональные, поведенческие симптомы, улучшает краткосрочную память, концентрацию внимания, снимает депрессивные симптомы, уменьшает апатию и отход от активного образа жизни [4, 5].

Перспективным направлением исследования является разработка технологии получения фосфатидилсерина в целях дальнейшего использования его как компонента пищевых добавок и лекарственных средств против ухудшения памяти.

В настоящее время существует ряд полусинтетических способов получения фосфатидилсерина из соевого лецитина по реакции трансфосфатидилирования [6, 7]. Ферментом в данной реакции выступает фосфолипаза D.

Цель исследования. Целью данного исследования является получение фосфатидилсерина из фосфолипидов соевых бобов по реакции трансфосфатидилирования с применением фосфолипазы D.

Материалы и методы исследования. Методика получения фосфатидилсерина состоит из двух основных этапов: выделение фосфолипидной фракции из соевого жмыха и дальнейшее использование ее для проведения реакции трансфосфатидилирования.

К 10 г соевого жмыха добавляли 50 мл этанола и перемешивали в течение 30 мин при температуре 40°С на магнитной мешалке. После экстракции смесь охлаждали и отфильтровывали, этанол упаривали на роторном испарителе.

797

Полученную смесь фосфолипидов использовали для синтеза фосфатидилсерина.

Синтез фосфатидилсерина в водно-буферной среде осуществляли путем инкубирования при 37°С реакционной смеси. Реакционная смесь объемом 5 мл содержала 375 мМ L-серин, 15 мМ смесь фосфолипидов по фосфору, адсорбированных на силикагеле, 0,2 М натрий-ацетатный буфер (pH 6,0), 0,1 М CaCl2, 2,5 мл фильтрата культуральной жидкости Streptomyces. Сорбцию фосфатидилхолина на силикагель осуществляли, прибавляя навеску 135 мг сорбента Silicagel 60 к раствору фосфатидилхолина в 1-2 мл этанола. После перемешивания в течение 10 мин растворитель удаляли при 40°С на роторном испарителе. Чистый фосфатидилсерин экстрагировали с поверхности сорбента этанолом.

Качественный анализ экстракта и реакционной смеси после окончания реакции проводился с помощью метода тонкослойной хроматографии в системе растворителей хлороформ-метанол-вода 65:25:4 [8]. Количественное содержание фосфолипидов определяли спектрофотометрически с помощью молибдатного метода [9].

Результаты и обсуждение результатов исследования. Выбор соевого жмыха в качестве сырья для экстракции обусловлен тем, что из него уже удалено основное количество триглицеридов методом прессования, а, следовательно, в дальнейшем потребуется меньшее число операций по удалению нейтральных липидов. Фосфолипидную фракцию выделяли методом экстракции этиловым спиртом. Выбор этанола вызван тем, что рассматривается потенциал использования нетоксичных и невзрывоопасных экстрагентов для выделения. Традиционно экстракцию фосфолипидов из растительного сырья осуществляют с помощью метода Блайя-Дайера [10], однако используемые в данном методе хлороформ и метанол слишком токсичны для получения веществ, которые в дальнейшем будут входить в состав лекарственных препаратов. Кроме того, потребуется ряд дополнительных стадий для получения фосфатидилсерина.

Качественный анализ показал, что в экстракционной смеси содержатся два основных компонента: фосфатидилхолин и фосфатидилэтаноламин. Как видно из таблицы 1, основным фосфолипидом в экстракте является фосфатидилхолин.

Таблица 1 – Количественный анализ фосфолипидов в спиртовом экстракте

Получение фосфатидилсерина осуществляли путем переноса фосфатидильного остатка с молекул фосфолипидов сои на гидроксильную группу L-серина. В качестве источника фермента использовали культуральную жидкость Streptomyces netropsis [11]. Как известно, фосфатидилхолин является

798

предпочтительным субстратом для фосфалипазы D, и, следовательно, легко вступает в реакцию трансфосфатидилирования экстракционной смеси с L- серином [12]. Однако было обнаружено, что в условиях избытка серина в реакцию вступает и фосфатидилэтаноламин, а это означает, в свою очередь, что для получения фосфатидилсерина не требуется выделение чистого фосфатидилхолина. Реакция трансфосфатидилирования протекала на сорбенте, такой вывод был сделан по результатам качественного анализа реакционной смеси и спиртового экстракта фосфолипидов с поверхности силикагеля. Кроме того, было обнаружено, что реакция протекает полностью, фосфатидилхолина после ее окончания определено не было. Опыты показали, что выход реакции составляет 64% ввиду неполной экстракции фосфатидилсерина с силикагеля либо перехода части продукта в водно-буферную среду во время реакции.

Выводы. Полученные в результате исследования данные позволяют говорить о том, что для проведения реакции трансфосфатидилирования не требуется выделять чистую фракцию лецитина. В условиях избытка L-серина в реакцию также вступает фосфатидилэтаноламин. Кроме того показано, что этанол является доступным и дешевым экстрагентом фосфолипидов из сои. Использование этилового спирта на всех стадиях позволяет упростить технологию получения фосфатидилсерина.

Литературные источники

1.Crook T.H., Tinklenberg J., Yesavage J., Petrie W., Nunzi M.G., Massari D.C. Effects of phosphatidylserine in age-associated memory impairment // Neurol. 1991. V. 41, No 5. P. 644-649.

2.Khalsa D.S. Integrated medicine and the prevention and reversal of memory loss. // Altern. Ther. Health Med. 1998. V. 4, No 6. P. 38-43.

3.Villardita C. et al. Multicentre clinical trial of brain phosphatidylserine in elderly subjects with mental deterioration // Clin. Trials J. 1987. V. 24. P. 84-93.

4.McDaniel M.A., Maier S.F., Einstein G.O. ―Brain-specific‖ nutrients: a memory cure? // Nutrion. 2003. V. 19, No 11-12. P. 957-975.

5.Schreiber S., Kampf-Sherf O., Gorfine M., Kelly D., Oppenheim Y., Lerer B. An open trial of plant-source derived phosphatydilserine for treatment of age-related cognitive decline

//Isr. J. Psychiatry Relat. Sci. 2000. V. 37, No 4. P. 302-307.

6.Method of producing phosphatidylserine: Patent United States, 7049107 C12P13/04; C12N1/20; C12P7/64; C12P13/06; C12P13/00; C12N1/20; C12P7/64 Meyer Application Number: 10/670006 Publication Date: 05/23/2006 Filing Date: 09/24/2003 Publisher: McKee, Voorhees & Sease, P.L.C.

7.Process for producing phosphatidylserines having long chain unsaturated fatty acid as side chain Patent 5965413 : United States A23D9/00; A61K38/00; A61P25/28; C07F9/10; C11B11/00; C11C3/00; C12P7/64; C12P9/00; C12P13/04; A23D9/00; A61K38/00; A61P25/00; C07F9/00; C11B11/00; C11C3/00; C12P7/64; C12P9/00; C12P13/00; (IPC1-7): C12P13/04; A61K38/00; C12P7/64; C12P13/06 Sakai Masashi, Yamatoya Hideyuki, Kudo Satoshi, Application Number: 08/860739 Publication Date: 10/12/1999 Filing Date: 07/03/1997 Publisher: Frishauf, Holtz, Goodman, Langer & Chick, P.C.

8.Березкин В. Г., Бочков А. С., Количественная тонкослойная хроматография. Инструментальные методы, М., 1980.

9.Vaskovsky V.E., Kostetsky E.Y., Vasendin I.M. A universal reagent for phospholipids analysis // J. Chromatogr. 1975. V. 114. P. 130-141.

799

10. Bligh E.G., Dyer W.J. A rapid method of total lipid extraction and purification

//Can. J. Biochem. Physiol. 1959. V. 37. P. 911-917.

11.Биричевская Л.Л., Титович О.И., Кисель М.А., Зинченко А.И. Использование фосфолипазы D Streptomyces netropsis при биокаталитическом синтезе фосфатидилсерина // Изв. НАН Беларуси, сер. биол. наук. 2008. №4. С. 86-90.

12.Кейтс М. Техника липидологии / Пер. с англ. Под ред. В.А. Вавера. М.: Мир,

1975. 322 с.

A.I. Vasilkevich 1, O.L. Sharko 1, L.L. Birichevskaya 2

SYNTHESIS OF PHOSPHATIDYLSERINE FROM SOYBEAN PHOSPHOLIPIDS BY THE

TRANSPHOSPHATIDYLATION REACTION

1Institute of Bioorganic Chemistry, National Academy of Sciences, Minsk

2Institute of Microbiology, National Academy of Sciences of Belarus, Minsk

Summary

The method of phosphatidylserine obtaining from soybean phospholipids is described. The process includes extraction of phospholipids using ethanol and then transphosphatudylation reaction with L-serine. Streptomyces netropsis phospholipase D is used as the biocatalyst.

800